Optymalizacja ekstrakcji polifenoli z Mentha spicata różnymi rozpuszczalnikami

• Autorzy: Najda Agnieszka , Klimek Kamila , Balant Sebastian , Wrzesińska-Jędrusiak Edyta , Piekarski Wiesław

Identyfikatory

DOI

10.15199/62.2019.8.16

Warianty tytułu

EN

Optimization of the process of polyphenol extraction from Mentha spicata with various solvents

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Mięta zielona jest znaną rośliną przyprawową i leczniczą o potwierdzonej obecności substancji biologicznie aktywnych. Procesy ekstrakcji związków aktywnych z matrycy roślinnej zależą od zastosowanej techniki, surowca i rozpuszczalnika. Wysokiej jakości ekstrakty roślinne są podstawą do produkcji preparatów ziołowych i wyodrębniania składników bioaktywnych. Tendencja do zastępowania syntetycznych przeciwutleniaczy, ze względu na ich toksyczne i potencjalnie nowotworowe działanie, naturalnymi przeciwutleniaczami skłania do zintensyfikowania badań nad antyoksydacyjnym i biologicznym działaniem ekstraktów roślinnych, a także wpływem warunków ekstrakcji na te efekty i na wydajność ekstrakcji. Jako rozpuszczalnik do ekstrakcji mięty zielonej zastosowano wodę, metanol, etanol, acetonitryl i aceton oraz ich 50-proc. roztwory wodne. Określono całkowitą zawartość polifenoli (TPC) i sumę flawonoidów w liofilizowanych ekstraktach. Stwierdzono, że rodzaj rozpuszczalników znacząco wpływa na wydajność odzyskiwania związków bioaktywnych z surowca (liść mięty). Zastosowanie 50-proc. (obj.) wodnych roztworów rozpuszczalników organicznych dało najlepszą wydajność TPC i flawonoidów. W dalszej kolejności znalazł się absolutny metanol i woda. Stosując jako ekstrahenty etanol absolutny, acetonitryl i aceton uzyskano najmniejszą wydajność tych związków. Badania wskazały, że do odzyskiwania TPC i kwasów fenolowych z Mentha spicata korzystne jest stosowanie 50-proc. roztworu acetonu, a do ekstrakcji flawonoidów z tego surowca stosowanie 50-proc. roztworu etanolu.

EN

The dried Mentha spicata leaves were ground in a mill and extd. with H2O, anhyd. organic solvents (MeOH, EtOH, (Me)2CO and CH3CN) and their 50% aq. solns. The extn. was carried out at 35°C for 40 min in the presence of ultrasounds. The extracts contained 3.90–168.0 mg/100 g (in gallic acid equiv.) of phenolic coupds. and 21.3–326.2 mg/100 g (in rutin equiv.) of flavonoids. The highest yield of extn. of phenolic compds. and flavonoids was obtained in the presence of 50% aq. solns. of EtOH and Me2CO. The exts. showed an antioxidant activity as detd. with 1,1-diphenyl- 2-picrylhydrazyl radical.

Słowa kluczowe

PL

ekstrakty roślinne; przeciwutleniacze; ekstrakcja flawonoidów; TPC; mięta zielona

EN

plant extracts; antioxidants; flavonoid extraction; mentha spicata

• Wydawca: Wydawnictwo SIGMA-NOT
• Czasopismo: Przemysł Chemiczny
• Rocznik: 2019
• Tom: T. 98, nr 8
• Strony: 1286--1289
• Opis fizyczny: Bibliogr. 22 poz., rys., tab.

Twórcy

autor

Najda Agnieszka

• Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie

autor

Klimek Kamila

• Katedra Zastosowań Matematyki i Informatyki, Wydział Inżynierii Produkcji, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Głęboka 28, 20-612 Lublin

autor

Balant Sebastian

• Katedra Warzywnictwa i Zielarstwa, Wydział Ogrodnictwa i Architektury Krajobrazu, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 13, 20-068 Lublin

autor

Wrzesińska-Jędrusiak Edyta

• Instytut Technologiczno Przyrodniczy O/Poznań

autor

Piekarski Wiesław

• Państwowa Wyższa Szkoła Wschodnioeuropejska w Przemyślu

Bibliografia

• [1] B.K. Tiwari, V.P. Valdramidis, C.P. O’Donnell, K. Muthukumarappan, P. Bourke, P.J Cullen, J. Agric. Food Chem. 2009, 57, 5987.
• [2] T. Hintz, K.K. Matthews, R. Di, R. BioMed Res. Int. 2015, 4, nr 1-12, 246264.
• [3] J.B. Harborne, [w:] Chemicals from plants. Perspectives on plant secondary products (red. J.N. Walton, D.E. Brown), Imperial College Press, London 1999, 1.
• [4] A. Najda, Zmienność ontogenetyczna mięty (Mentha species) czynnikiem warunkującym zawartość składników bioaktywnych w surowcu, Wyd. Uniwersytetu Przyrodniczego w Lublinie, Rozprawy naukowe, 2017.
• [5] El. K. Bairi, M. Ouzir, A. Najda, L. Khalki, R. Karaman, Biomed. Pharmacother. 2017, 90, 479.
• [6] A. King, G. Young, J. Am. Diet. Assoc. 1999, 99, 213.
• [7] A. Najda, Post. Fitoter. 2017, 18, nr 4, 252.
• [8] M. Naczk, F. Shahidi, J. Chromatogr. A. 2004, 1054, 95.
• [9] P. Garcia-Salas, A. Morales-Soto, A. Segura-Carretero, A. Fernandez- Gutierrez, Molecules 2010, 15, 8813.
• [10] H. Zielinski, H. Kozłowska, J. Agric. Food Chem. 2000, 48, 2008.
• [11] FDA (2012), Guidance for industry, dostęp zagadnienia 2018, http:// www.fda.gov/downloads/drugs/ guidancecomplianceregulatoryinformation/ guidances/ucm073395.pdf.
• [12] T. Swain, W.E. Hillis, J. Sci. Food Agric. 1959, 10, 63.
• [13] Farmakopea Polska VI, Wyd. PTFarm, Warszawa 2002.
• [14] C.D. Stalikas, J. Sep. Sci. 2007, 30, 3268.
• [15] S. Balant, S. Górski, A. Najda, M. Walasek, Agronomy Sci. 2018, 73, nr 4, 37.
• [16] A. Dailey, Q.V. Vuong, Cogent Food Agr. 2015, 1, 1115646.
• [17] Z.R. Addai, A. Abdullah, S.A.Mutalib, J. Med. Plants Res. 2013, 7, 3354.
• [18] I. Bettaieb Rebey, S. Bourgou, I. Ben Slimen Debez, I. Jabri Karoui, I. Hamrouni Sellami, K. Msaada, B. Marzouk, Food Bioprocess Technol. 2012, 5, 2827.
• [19] J.A. Michiels, C. Kevers, J. Pincemail, J.O. Defraigne, J. Dommes, Food Chem. 2012, 130, 986.
• [20] L. Tomsone, Z. Kruma, R.Galoburda, World Acad. Sci. Eng. Technol. 2012, 64, 903.
• [21] C. Pieszko, A. Zaremba, Bromat. Chem. Toksykol. 2013, 46, nr 4, 434.
• [22] J. Pluta, D. Haznar-Garbacz, B. Karolewicz, M. Fast, Preparaty galenowe, MedPharm Polska, Wrocław 2010, 66.

Uwagi

Opracowanie rekordu w ramach umowy 509/P-DUN/2018 ze środków MNiSW przeznaczonych na działalność upowszechniającą naukę (2019).