Nowa wersja platformy, zawierająca wyłącznie zasoby pełnotekstowe, jest już dostępna.
Przejdź na https://bibliotekanauki.pl

PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2010 | 25 | 3 |
Tytuł artykułu

Effects of temperature on survival, deformations rate and selected parameters of newly hatched larvae of three rheophilic cyprinids (genus Leuciscus)

Warianty tytułu
PL
Wpływ temperatury wody na przeżywalność, odsetek deformacji rozwojowych oraz wybrane parametry larw trzech gatunków karpiowatych ryb reofilnych z rodzaju Leuciscus
Języki publikacji
EN
Abstrakty
EN
Experiments were conducted to determine full range of tolerated and optimal water condition for eggs incubation of three species from genus Leuciscus i.e: dace Leuciscus leuciscus (L.), ide Leuciscus idus (L.), and chub Leuciscus cephalus (L.). Spawners were caught from rivers of the northern (Pasleka River drainage) and central (Pilica River drainage) parts of Poland. Fertilized eggs were incubated under controlled conditions at ten different constant temperatures ranging from 4.5 to 29.0℃. The optimal temperature ranges for the incubation of dace, ide and chub eggs were 7.5 to 12.3℃; 15.7℃ and 19.0 to 23.0℃, respectively (considering hatching percentage, incidence of abnormalities and size of hatched larvae), which are close to the water temperature during spawning season. This study also reveals that embryos of studied species can adapt to increasing water temperature due to global warming up to 23.0℃ (dace and ide) and 27.5℃ (chub). Besides, some inter-population differences in the response to temperature were observed.
PL
Przeprowadzono badania określające zakres temperatur tolerowanych i optymalnych dla inkubacji ikry trzech gatunków należących do rodzaju Leuciscus: jelca Leuciscus idus (L.), jazia Leuciscus idus (L.) i klenia Leuciscus cephalus (L.). Tarlaki pozyskano z Polski północnej (rzek dorzecza Pasłęki) oraz centralnej (rzek dorzecza Pilicy). Zapłodnioną ikrę inkubowano w warunkach kontrolowanych, w szerokim zakresie stałych temperatur wynoszącym od 4,5 do 29.0℃. Biorąc pod uwagę procent wyklucia, odsetek zdeformowanych larw oraz ich rozmiar optymalnymi warunkami inkubacji dla ikry jelca i klenia okazały się zakresy odpowiednio 7.5–12.3℃ i 19.0–23.0℃. Dla jazia była to temperatura 15.7℃. Uzyskane wartości temperatur optymalnych są zbliżone do temperatur występujących podczas tarła. Przeprowadzone badania ujawniają również, że rozwijające się embriony badanych gatunków są w stanie tolerować temperaturę wody sięgającą 23.0℃ (jelec, jaź) oraz 27.5℃ (kleń). W trakcie doświadczenia zaobserwowano również pewne międzypopulacyjne różnice w badanych parametrach.
Wydawca
-
Rocznik
Tom
25
Numer
3
Opis fizyczny
p.299-312, fig.,ref.
Twórcy
autor
  • Department of Lake and River Fisheries, University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Oczapowskiego 5, 10-957 Olsztyn, Poland
autor
Bibliografia
  • BERMUDES A., RITAR A. J. 1999. Effects of temperature on the embryonic development of the striped trumpeter (Latris lineata Bloch and Schneider, 1801) Aquaculture, 176: 245–255.
  • BLAXTER J.H.S. 1969. Development: eggs and larvae. Fish physiol. 3. (Reproduction and Growth), 177–252.
  • BLAXTER J.H.S., HEMPEL G. 1963. The influence of egg size on herring larvae (Clupea harengus). J. Con. – Cons. perm. int. explor. mer., 28: 211–240.
  • CALTA M. 2000. Morphological development and growth of chub (Leuciscus cephalus L.) larvae. J. Appl. Ichthyol., 16: 83–85.
  • CEJKO B.I., KOWALSKI R.K., KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., KREJSZEFF S., ŻARSKI D., GLOGOWSKI J. 2010. Influence of the length of time after hormonal stimulation on selected parameters of milt of ide Leuciscus idus L. Aquacult. Res., 41: 804–813.
  • COSSINS A.R., BOWLER K., 1987. Temperature Biology of Animals. Chapman and Hall, London. DAS T., PAL A.K., CHAKRABORTY S.K., MANUSH S.M., DALVI R.S., SARMA K., MUKHERJEE S.C. 2008. Thermal dependence of embryonic development and hatching rate in Labeo rohita (Hamilton, 1822). Aquaculture, 255: 536–541.
  • DAUFRESNE M., BOË T P. 2007. Climate change impacts on structure and diversity of fish communities in rivers. Glob. Chan. Biol., 13: 2467–2478.
  • ECONOMOU A.N., DAOULAS C., PSARRAS T. 1991. Growth and morphological development of chub, Leuciscus cephalus L. during the first year of life. J. Fish Biol., 39: 398–408.
  • ELLIOTT J.M. 1981. Some aspects of thermal stress on freshwater teleosts. [In:] Stress and Fish. Ed. Pickering A.D. 209–245.
  • FLOREZ F. 1972. The effect of temperature on incubation time, growth and lethality of embryos, larvae and juveniles of the ide, Idus idus (L.). Rep. Instit. Freshw. Res., Drottningholm, 52: 50–64.
  • HAKUĆ-BŁAŻOWSKA A., KUPREN K., TURKOWSKI K., TARGOŃSKA K., JAMRÓZ M., KREJSZEFF S., KWIATKOWSKI M., ŻARSKI D., KUCHARCZYK D. 2009. Comparison of economic effectiveness of applying different hormonal preparations for reophile cyprinid fish reproduction stimulation based on the example of asp Aspius aspius (L.) and ide Leuciscus idus (L.). Pol. J. Natur. Sc., 24(4): 224–234.
  • HERZIGx A., WINKLER H. 1986. The influence of temperature on the embryonic development of tree cyprinid fishes, Abramis brama, Chalcalburnus chalcoides and Vimba vimba. J. Fish Biol., 28: 171–181.
  • HORVATH L., SZABO T., BURKE J. 1997. Hatchery testing of GnRH analogue-containing pellets on ovulation in four cyprinid species. Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 221–226.
  • KAMLER E. 1992. Early life history of fish: an energetics approach. Chapman & Hall, London.
  • KENNEDY M., 1969. Spawning and early development of the dace Leuciscus leuciscus (L.). J. Fish. Biol., 1: 249–259.
  • KOKUREWICZ B. 1969. The influence of temperature on the embryonic development of the perches (Perca fluviatilis L. and Lucioperca lucioperca L.). Zool. Pol., 19(1): 47–67.
  • KOKUREWICZ B. 1971. Thermal conditions vs reproduction and development of some fish species. Broszura IRŚ, Wrocław, Żabieniec, 47: 1–18 (in Polish).
  • KORWIN-KOSSAKOWSKI M. 2008. The influence of temperature during the embryonic period on larval growth and development in carp, Cyprinus carpio L., and grass carp, Ctenopharyngodon idella (Val.): Theoretical and practical aspects. Arch. Pol. Fish., 16: 231–314.
  • KREJSZEFF S., KUCHARCZYK D., KUPREN K., TARGOŃSKA K., MAMCARZ A., KUJAWA R., KACZKOWSKI Z., RATAJSKI S. 2008. Reproduction of chub, Leuciscus cephalus (L.), under controlled conditions. Aquacult. Res., 39: 907–912.
  • KREJSZEFF S., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., KUCHARCZYK D. 2009. Domestication affects spawning of the ide (Leuciscus idus) – preliminary study. Aquaculture, 295: 145–147.
  • KREJSZEFF S., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., KUCHARCZYK D. 2010. Comparison of artificial reproduction of different spawn-form of chub. Rep. Biol., 10: 67–74.
  • KUCHARCZYK D. 2002. Artificial reproduction and androgenesis of some cyprinids. Rozprawy i Monografie, 63: 1–81 (in Polish with English summary).
  • KUCHARCZYK D., ŁUCZYŃSKI M., KUJAWA R., CZERKIES P. 1997. Effect of temperature on embryonic and larval development of bream (Abramis brama L.). Aquat. Sci., 59: 214–221.
  • KUCHARCZYK D., ŁUCZYNSKI M., KUJAWA R., KAMIŃSKI R., ULIKOWSKI D., BRZUZAN P. 1998. Influences of temperature and food on early development of bream (Abramis brama L.). Arch. Hydrobiol., 141: 243–256.
  • KUCHARCZYK D., PERKOWSKA J., KUJAWA R., MAMCARZ A. 2002. Optimum termiczne inkubacji ikry w zależności od pochodzenia tarlaków na przykładzie jelca. In: Wylęgarnia. Wydawnictwo IRS, 69–74.
  • KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., TARGONSKA-DIETRICH K., WYSZOMIRSKA E., GLOGOWSKI J., BABIAK I., SZABO T. 2005. Induced spawning in bream (Abramis brama L.) using pellets containing GnRH. Czech J. Anim. Sci., 50(3): 89–95.
  • KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., KUJAWA R. MAMARZ A. 2008. A review of the reproduction biotechnology for fish from the genus Leuciscus. Arch. Pol. Fish., 16(4): 319–340.
  • KUJAWA R. 2004. Biological background for rearing reophylic cyprinid larvae under controlled conditions). Rozprawy i monografie, 1–88. WydawnictwoUWM (in Polish with English summary).
  • KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. 1999. A model system for keeping spawners of wild and domestic fish before artificial spawning. Aquacult. Eng., 20: 85–89.
  • KUJAWA R., MAMCARZ A., KUCHARCZYK D. 1997. Effect of temperature on embryonic development of asp (Aspius aspius L.). Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 139–143.
  • KUPREN K., MAMCARZ A., KUCHARCZYK D., PRUSIŃSKA M., KREJSZEFF S. 2008. Influence of water temperature on eggs incubation time and embryonic development of fish from genus Leuciscus. Pol. J. Natur. Sc., 23(2): 461–481.
  • KUPREN K., MAMCARZ A., KUCHARCZYK D., PRUSIŃSKA M. 2008b. Changes in morphomet-ric parameters in selected early stages of three fish species from the genus Leuciscus (Teleo-stei, Cyprinidae). Arch. Pol. Fish., 16(4): 421–436.
  • MANN R.H.K. 1996. Environmental requirements of European non-salmonid fish in rivers. Hydrobiol., 323: 223–235.
  • MILLS C.A. 1980. Spawning and rearing eggs of the dace Leuciscus leuciscus (L.). Fish. Mgmt., 1: 67–72.
  • PENAZ M. 1968. Development of the chub, Leuciscus cephalus (Linnaeus, 1758) in the post-hatching period. Zool. Listy., 17: 269–278.
  • PENAZ M., STERBA O. 1969. Notes to the incubation period, growth and mortality of the chub, Leuciscus cephalus (Linne, 1758), in the early life-history stages. Vest. Cesk. Spol. Zool., 33: 56–70.
  • PENCZAK T., GALICKA W., GŁOWACKI Ł., KOSZALIŃSKI H., KRUK A., ZIĘBA G., KOSTRZEWA J., MARSZAŁ L. 2004. Fish assemblage changes relative to environmental factors and time in the Warta River, Poland, and its oxbow lakes. J. Fish. Biol., 64: 483–501.
  • RECHULICZ J., OSTASZEWSKA T., WOJDA R. 2002. Water temperature effects on incubation of ide (Leuciscus idus L.) eggs and selected parameters of the larvae. Acta Sci. Pol. Piscaria., 1: 35–46.
  • REDDY P.K., LAM T.J. 1991. Effect of thyroid hormones on hatching in the tilapia, Oreochromis mossambicus. Gen. Comp. Endocrinol., 81: 489–491.
  • SAUNDERS D.L., MEEUWIG J.J., VINCENT A.C. 2002. Freshwater protected areas: strategies for conservation. Conservat. Biol., 16, 30–41.
  • SHIRI HARZEVILI A., VUGHT I., AUWERX J., CHARLEROY D. DE. 2004. Larval rearing of ide, Leuciscus idus (L.), using decapsuled Artemia. Arch. Pol. Fish., 12(2): 191–195.
  • SHIRI HARZEVILI A.S., CHARLEROY D. DE, AUVERX J., VUGHT I., SLYCKEN J. VAN. 2003. Larval rearing of chub, Leuciscus cephalus (L.) using decapsulated Artemia as direct food. J. Appl. Ichthyol., 19: 123–125.
  • SOKAL R.R., ROHLF F.J. 1969. Biometry. The principles and practice of statistics in biological research. H.F. Freeman and Co., San Francisco.
  • TARGOŃSKA K., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. GLOGOWSKI J., KREJSZEFF S., PRUSIŃSKA M., KUPREN K. 2008. Influence of individual variability in the percentage of motile spermatozoa and motility time on the survival of embryos of chosen fish species. Pol. J. Natur. Sc., 23(1): 178–187.
  • TARGOŃSKA K., KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., ŻARSKI D. 2010. Controlled reproduction of asp, Aspius aspius (L.) using luteinizing hormone releasing hormone (LHRH) analogues with dopamine inhibitors. Aquaculture, 306: 407–410.
  • WITKOWSKI A., KOTUSZ J., PRZYBYLSKI M., MARSZAŁ L., HEESE T., AMIROWICZ A., BURAS P., KUKUŁA K. 2004. Origin, species compositions and present degree of threat to fish fauna in the Vistula and Oder River system. Arch. Pol. Fish., 12(2): 7–20.
  • ŻARSKI D., KUCHARZCZYK D., KWIATKOWSKI M., TARGOŃSKA K., KUPREN K., KREJSZEFF S., JAMRÓZ M., HAKUĆ-BŁAZOWSKA A., KUJAWA R., MAMCARZ A. 2008. The effect of stocking density on the growth and survival of larval asp, Aspius aspius (L.), and European chub, Leuciscus cephalus (L.), during rearing under controlled conditions. Arch. Pol. Fish., 16(2): 371–382.
  • ŻARSKI D., KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K, JAMRÓZ M., KREJSZEFF S., MAMCARZ A. 2009. Application of Ovopel, Ovaprim and their combination in artificial reproduction of two rheophilic cyprinid fishes. Pol. J. Natur. Sc., 24(4): 235–244.
  • ŻARSKI D., KUCHARCZYK D., SASINOWSKI W., TARGOŃSKA K., MAMCARZ A. 2010. The influence of temperature on successful reproductions of burbot Lota lota L. under the hatchery conditions. Pol. J. Nat. Sc., 25: 106–113.
Typ dokumentu
Bibliografia
Identyfikatory
Identyfikator YADDA
bwmeta1.element.dl-catalog-25abdb85-01f0-42aa-9d7b-2aa7e23247ba
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.