Zastosowanie modelu przewodu pokarmowego 'in vitro' w monitorowaniu zmian wybranych składników żywności

• Autorzy: Gumienna, M. , Goderska, K. , Czarnecki, Z.

Warianty tytułu

EN

The use of in vitro digestion tract model in monitoring of selected food components changes

• Konferencja: Rozwój aparatury i prac naukowo-badawczych w przetwórstwie rolno-spożywczym, gospodarce rolnej i leśnej w zakresie automatyzacji procesów i w analityce : V seminarium : Poznań, 15-17 listopada 2005 r., Cz. 2
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Do śledzenia zmian ilościowych wybranych składników żywności w produktach otrzymanych z nasion roślin strączkowych po obróbce biotechnologicznej wykorzystano skonstruowany model przewodu pokarmowego "in vitro" . Na podstawie uzyskanych wyników stwierdzono, że skonstruowany model przewodu pokarmowego pozwoli na określenie poziomu, zmian ilościowych polifenoli, ich aktywności antyoksydacyjnej oraz azotu rozpuszczalnego i sacharydów w badanych produktach na poszczególnych etapach symulowanego procesu trawienia.

EN

The digestion tract model "in vitro" was used for investigation of quantitative selected food components changes in obtained products with legume seeds after biotechnological process. On the basis of obtained results it was stated that the digestion tract model let define the level phenols quantitative changes, their antioxidant activity and soluble nitrogen and carbohydrates in obtained products on selected stages of digestion process.

Słowa kluczowe

PL

model przewodu pokarmowego

EN

digestion tract model

• Czasopismo: Aparatura Badawcza i Dydaktyczna
• Rocznik: 2006
• Tom: T. 11, nr 2
• Strony: 121-127
• Opis fizyczny: Bibliogr. 15 poz., rys., wykr.

Twórcy

autor

Gumienna, M.

autor

Goderska, K.

autor

Czarnecki, Z.

• Akademia Rolnicza im. A.Cieszkowskiego w Poznaniu, Wydział Nauk o Żywności i Żywieniu, Instytut Technologii Żywności Pochodzenia Roślinnego, Zakład Fermentacji i Biosyntezy

Bibliografia

• 1. A. M. Aura, H. Harkonen, M. Fabritius, K. Poutanen: Development of in vitro enzymatic digestion method for removal of starch and protein and assessment of its performance using rye and wheat breads. J. Cereal Sci., 29, 1999, 139—152
• 2. M. Czarnecka, Z. Czarnecki, J. Nowak, H. Roszyk: Effect of lactic fermentation and extrusion of beam and pea seeds on nutrional and functional properties. Nuhrung, 42, 1998, 7—11
• 3. C. Ekmekcioglu: A physiological approach for preparing and conducting intestinal bioavailability studies using experimental system. Food Chem., 76, 2002, 225—230
• 4. J. Frias, M. Miranda, R. Doblado, C. Vidal-Valverde: Effect of germination and on the antioxidant vitamin content and antioxidant capacity of Lupinus albus L.var. Multolupa. Food Chem., 92, 2005, 211—220
• 5. W. Grajek: Zmiany potencjału przeciwutleniającego surowców roślinnych w procesach przetwórczych i w czasie trwania. Żywność Nauka Technologia Jakość, 4 (37), 2003, 26—35
• 6. M. E. El. Hag, A. H. El. Tinay, N. E. Yousif: Effect of fermentation and dehulling on starch, total polyphenols, phytic acid content and in vitro protein digestibility of pearl millet. Food Chem., 77, 2002, 193—196
• 7. J. J. Kim, S. H. Kim, S. J. Hahn, I. M. Chung: Changing soybean isoflavone composition and concentrations two different storage conditions over three years. Food Research International, 38, 2005, 435—444
• 8. M. G. Lindley: The impact of food processing on antioxidants in vegetable oils, fruits and vegetables. Trends Food Sci. Technol., 9, 1998, 336—340
• 9. O. H. Lowry: Protein measurement with the Folin phenol reagebt. J. Biol. Chem., 193, 1951, 265—275
• 10. M. N. Maillard, M. H. Soun, C. Bereset, P. Bovini: Antioxidant activity of bearley and malt: relationship with phenolic content. Lebensm. Wiss. Technol., 35, 1996, 158—164
• 11. L. Manzacco, S. Calligaris, D. Mastrocla, M. C. Nicoli, C. R. Lerici: River of non-enzimatic browning and antioxidant capacity in processed food. Trends Food Sci. Technol., 11, 2001, 340—346
• 12. G. L. Miller: Use of dinitrosalisylic acid (DNS) for determination of reducing sugars. Anal. Chem., 31 (3), 1959, 426—428
• 13. R. Re, N. Pellegrini, A. Protegente, A. Pannala, M.Yang, C. Rice-Evans: Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolonization assay. Free Radical. Biol. Medicine, 26 (9/10), 1999, 1231—1237
• 14. H. Sakakibara, Y. Honda, S. Nakagawa, H. Ashida, K.Kanazawa: Simultaneous determination of all polyphenols in vegetables, fruits and teas. J. Agric. Food Chem., 51, 2003, 571—581
• 15. V. L. Singelton, J. A. Rossi: Colorymetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. Am. J. Enol. Vitic., 1965, 16; 144—158