Oporność na antybiotyki patogenów izolowanych z przypadków mastitis u krów

• Autorzy: Piech T. , Wawron W. , Bochniarz M. , Krakowski L. , Brodzki P.

Warianty tytułu

EN

Antibiotic resistance of pathogens isolated from bovine mastitis case

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

EN

The studies on resistance to selected antibiotics were conducted on a total of 5154 isolates, including 2661 Staphylococcus sp., 2349 Streptococcus sp. and 144 E. coli, obtained from clinical and subclinical cases of bovine mastitis. Milk came from dairy farms in the Lubelskie Voivodeship. During the five-year research period (2007-2011), the isolated bacteria proved susceptible to the following antibiotic medications: penicillin, streptomycin, tetracycline, neomycin, ampicillin, amoxicillin and clavulanic acid, cephalexin, cephoperason and lincomycin. Throughout the study period, the highest percentage of staphylococcus were resistant to tetracycline (23.8-38.5%) and lincomycin (16.4-33%), whereas the lowest number of staphylococcus isolates were resistant to cefoperazone (7.2% on average). With regard to streptococci, the least amount of isolates were resistant to amoxicillin (6% on average), whereas the highest rate of resistance was observed for streptomycin (49.4- -70.8%), followed by neomycin (51.6% on average). Relatively low sensitivity to the antibiotics was displayed by E. coli isolates. Nearly 100% of the isolates showed resistance to penicillin. A high percentage of isolates (89.2% on average) proved resistant to lincomycin, as well. In total, the lowest number of isolates were resistant to cefoperazone (7.3% on average) and neomycin (14.9% on average). In the study period, no substantial deviations were observed in the percentage of isolates of each bacteria type resistant to a given antibiotic.

Słowa kluczowe

PL

bydlo; krowy; zapalenie gruczolu mlekowego; zwierzeta chore; mleko; badania bakteriologiczne; czynniki chorobotworcze; izolacja; bakterie; gronkowce; paciorkowce; Escherichia coli; antybiotyki; opornosc na antybiotyki; wrazliwosc na antybiotyki

• Wydawca: -
• Czasopismo: Medycyna Weterynaryjna
• Rocznik: 2015
• Tom: 71
• Numer: 02
• Opis fizyczny: s.114-117,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Piech T.

• Zakład Andrologii i Biotechnologii Rozrodu, Katedra i Klinika Rozrodu Zwierząt, Wydział Medycyny Weterynaryjnej, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul.Głęboka 30, 20-612 Lublin

autor

Wawron W.

• Zakład Andrologii i Biotechnologii Rozrodu, Katedra i Klinika Rozrodu Zwierząt, Wydział Medycyny Weterynaryjnej, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul.Głęboka 30, 20-612 Lublin

autor

Bochniarz M.

• Zakład Andrologii i Biotechnologii Rozrodu, Katedra i Klinika Rozrodu Zwierząt, Wydział Medycyny Weterynaryjnej, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul.Głęboka 30, 20-612 Lublin

autor

Krakowski L.

• Zakład Andrologii i Biotechnologii Rozrodu, Katedra i Klinika Rozrodu Zwierząt, Wydział Medycyny Weterynaryjnej, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul.Głęboka 30, 20-612 Lublin

autor

Brodzki P.

• Zakład Andrologii i Biotechnologii Rozrodu, Katedra i Klinika Rozrodu Zwierząt, Wydział Medycyny Weterynaryjnej, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul.Głęboka 30, 20-612 Lublin

Bibliografia

• 1. Anakalo S., Gathoni K.: Assessment of the California mastitis test usage in smallholder dairy herds and risk of violative antimicrobial residues. J. Vet. Sci. 2004, 5, 5-9.
• 2. Bartoszewicz-Potyrała M., Przondo-Mordarska A.: Cechy gronkowców koagulazo-ujemnych warunkujące ich chorobotwórczość. Postępy Mikrobiologii2002, 41, 351-366.
• 3. Bush K., Jackoby G. A., Mendeiros A. A.: A functional classification scheme for β-lactamasesand its correlation with molecular structure. Antimicrob. AgentsChemother. 1995, 39, 1211-1233.
• 4. Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance Standards for Antimicrobial Disk and Dilution Susceptibility Test for Bacteria Isolated from Animals. Approved Standard M31-A3. CLSI, Wayne, USA 2008.
• 5. Erskine R. J., Walter R. D., Bolin C. A., Bartlett P. C., White D. G.: Trends in Antibacterial Susceptibility of Mastitis Pathogens During a Seven-Year Period.J. Dairy Sci. 2002, 85, 1111-1118.
• 6. Gentilini E., Denamiel G., Betancor A., Rebuelto M., Rodriguez M., De Torrest R. A.: Antimicrobial susceptibility of coagulase-negative staphylococci isolated from bovine mastitis in Argentina. J. Dairy Sci. 2002, 85, 1913-1917.
• 7. Guardabassi L., Jansen L. B., Kruse H. Ed.: Guide to Antimicrobial use in Animals. Blackwell Publishing 2008, 1-223.
• 8. Jacoby G. A.: Mechanisms of resistance to quinolones. Clin. Infect. Dis. 2005, 41, 120-126.
• 9.Joint Opinion on antimicrobial resistance (AMR) focused on zoonotic infections. EFSA Journal 2009, 7, 1372.
• 10. Kowalska-Krochmal B.: Mechanisms of bacterial resistance to antimicrobial drugs. Adv. Clin. Exp. Med. 2000, 9, 309-322.
• 11. Lassa H., Kubiak J., Małkińska-Horodyska M.: Bakterie najczęściej izolowane z klinicznych postaci mastitis u krów oraz ich wrażliwość na antybiotyki.Życie Wet. 2013, 88, 651-653.
• 12. Łopaciuk U., Dzierżanowska D.: Gronkowce metycylinooporne: mechanizmy oporności, czynniki zjadliwości oraz metody genotypowania. PostępyMikrobiologii 2002, 41, 401-418.
• 13. Malinowski E., Kłossowska A.: Diagnostyka zakażeń i zapaleń wymienia. PIW Puławy 2002, s. 42.
• 14. Malinowski E., Kłossowska A., Kaczmarowski M., Lassa H., Kuźma K.: Antimicrobial susceptibility of staphylococci isolated from affected withmastitis cows. Bull. Vet. Inst. Pulawy 2002, 46, 289-294.
• 15. Moon J. S., Lee A. R., Kang H. M., Lee E. S., Joo Y. S., Park Y. H., Kim M. N., Paik Y. H., Koo H. C.: Phenotypic and genetic antibiogram of methicillin--resistant staphylococci isolated from bovine mastitis in Korea. J. Dairy Sci.2007, 90, 1176-1185.
• 16. Myllys V., Asplund K., Brofeldt E., Hirvela-Koski V., Honkanen-Buzalski T., Junttila J., Kulkas L., Myllykangas O., Niskanen H., Saloniemi H., Sandholm M., Saranpaa T.: Bovine mastitis in Finland in 1988 and 1995 – changes in prevalence and antimicrobial resistance. Acta Vet. Scand. 1998,39, 119-126.
• 17. Oliveira L., Langoni H., Hulland C., Ruegg P. L.: Minimum inhibitory concentrations of Staphylococcus aureus recovered from clinical and subclinicalcases of bovine mastitis. J. Dairy Sci. 2012, 95, 1913-1920.
• 18. Persson Waller K., Aspan A., Nyman A., Persson Y., Grönlund Andersson U.: CNS species and antimicrobial resistance in clinical and subclinical bovinemastitis. Vet. Microbiol. 2011, 152, 112-116.
• 19. Pitkälä A., Haveri M., Pyörälä S., Myllys V., Honkanen-Buzalski T.: Bovine mastitis in Finland 2001 – prevalence, distribution of bacteria, and antimicrobialresistance. J. Dairy Sci. 2004, 87, 2433-2441.
• 20. Sawant A. A., Gillespie B. E., Oliver S. P.: Antimicrobial susceptibility of coagulase-negative Staphylococcus species isolated from bovine milk. Vet.Microbiol. 2009, 134, 73-81.
• 21. Seegers H., Fourichon C., Beaudeau F.: Production effects related to mastitis and mastitis economics in dairy cattle herds. Vet. Res. 2003, 34, 475-491.
• 22. Sol J., Sampimon O. C., Hartam E., Barkema H. W.: Effect of preculture freezing and incubation on bacteriological isolation from subclinical mastitissamples. Vet. Microbiol. 2002, 85, 241-249.
• 23. Wawron W., Piech T., Bochniarz M.: Wrażliwość na antybiotyki patogenów izolowanych z przypadków mastitis u krów. Med. Weter. 2008, 64, 1132-1135.