Enzymatyczna hydroliza bialek miesniowych kregoslupow dorsza baltyckiego

• Autorzy: Skierka E , Sadowska M. , Mankowska J. , Lipinska-Beyer A.

Warianty tytułu

EN

Enzymatic hydrolysis of muscle protein of Baltic cod backbones

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

EN

Enzymatic hydrolysis was conducted to recover the potentially addible high protein hydrolysate from cod backbones. The commercially available alcalase and trypsyne was used for hydrolysis at enzyme concentrations of 2.5; 5; 10; 15; 20; 30 and 40 mg/g backbones. The enzymatic deproteinization was conducted for 24 and 48 h. All procedures were performed at pH 7.0 and 4°C. The yield of enzymatic hydrolysis increases with the growth of trypsine and alcalase concentration up to 20 and 10 mg/g backbone, respectively. The increase of these values did not influence the yield of enzymatic deproteinization. After the treatment by trypsyne, maximum recovery of protein from cod backbone was 60%, while by alcalase it was 55%. The yield of enzymatic hydrolysis was the same after 24 and 48 h. Collagen losses did not exceed 0.2%.

Słowa kluczowe

PL

przemysl rybny; ryby; dorsz baltycki; produkty uboczne; kregoslup; bialka miesniowe; ekstrakcja; hydroliza enzymatyczna

• Wydawca: -
• Czasopismo: Medycyna Weterynaryjna
• Rocznik: 2008
• Tom: 64
• Numer: 05
• Strony: 677-680
• Opis fizyczny: s.677-680,rys.,fot.,bibliogr.

Twórcy

autor

Skierka E

• Politechnika Gdanska, ul.Narutowicza 11/12, 80-952 Gdansk

autor

Sadowska M.

autor

Mankowska J.

autor

Lipinska-Beyer A.

Bibliografia

• 1. Anon.: Meat and meat products - determination of L - hydroxyproline content. Reference method. International Standard, ISO 3496 - 1978 (E).
• 2. AOAC (1990). Official method of analysis. Virginia: Association of Official Analytical Chemists.
• 3. Aspmo S. I., Horn S. J., Eijsink V. G. H.: Enzymatic hydrolysis of Atlantic cod (Gadus morhua L.) viscera. Proc. Biochem. 2005, 40, 1957-1966.
• 4. Bhaskar N., Modi V. K., Govindaraju K., Radha C., Lalitha R. G.: Utilization of meat industry by products: Protein hydrolysate from sheep visceral mass. Biores. Technol. 2007, 98, 388-394.
• 5. Bollag D. M., Edestein S. J.: Protein Methods. Wiley - Liss, A John Wiley and Sons, Inc., Publication, New York 1991, 95-139.
• 6. Clemente A.: Enzymatic protein hydrolysates in human nutrition. Trends Food Sci. Technol. 2000, 11, 254-262.
• 7. Gildberg A., Arnesen J. A., Carlehög M.: Utilization of cod backbone by biochemical fractionation. Proc. Biochem. 2002, 38, 475-480.
• 8. Gildberg A., Stenberg E.: A new process for advanced utilization of shrimp waste. Proc. Biochem. 2001, 36, 809-812.
• 9. Guérard F., Dufossé L., De La Broise D., Binet A.: Eznymatic hydrolysis of proteins from yellowfin tuna (Thunnus albacares) wastes using Alcalase. J. Molec. Catal. B. 2001, 11, 1051-1059.
• 10.Guérard F., Guimas L., Binet A.: Production of tuna waste hydrolysates by a commercial neutral protease preparation. J. Molec. Catal. B. 2002, 19-20, 489-498.
• 11. Je J. Y., Park P. J., Kim S. K.: Antioxidant activity of a peptide isolated from Alaska pollack (Theragra chalcogramma) frame protein hydrolysate. Food Res. International 2005, 38, 45-50.
• 12. Jun S. Y., Park P. J., Jung W. K., Kim S. K.: Purification and characterization of an antioxidative peptide from enzymatic hydrolysate of yellowfin sole (Limanda aspera) frame protein. Eur. Food Res. Technol. 2004, 219, 20-26.
• 13. Kołodziej K., Kołodziejski W.: Ilościowa i jakościowa charakterystyka surowców ubocznych przemysłu rybnego, jako potencjalnej bazy surowcowej do uzyskiwania kolagenu i żelatyny. Sprawozdanie z realizacji I etapu pracy pt.: Wytwarzanie biodegradowalnych materiałów opakowaniowych. Maszynopis, Politechnika Gdańska, Gdañsk 2005.
• 14. Kołodziejska I.: Enzymatyczne i funkcjonalne właściwości białek kalmarów. Charakterystyka i możliwości wykorzystania. Zesz. Nauk. Politechniki Gdańskiej, Chemia, 44, Wydawnictwo Politechniki Gdańskiej 1999.
• 15. Lowry O. H., Rosebrough H. I., Farr A. L., Randall R. I.: Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem. 1951, 193, 265-275.
• 16. Picot L., Bordenave S., Didelot S., Fruitier-Arnaudin I., Sannier F., Thorkelsson G., Bergé J. P., Guérard F., Chabeaud A., Piot J. M.: Antiproliferative activity of fish protein hydrolysates on human breast cancer cell lines. Proc. Biochem. 2006, 41, 1217-1222.
• 17. PN - 75/A - 04018. Oznaczanie azotu metodą Kjeldahla i przeliczanie na białko.
• 18. Shahidi F., Han X., Synowiecki J.: Production and characteristics of protein hydrolysates from capelin (Mallotus villosus). Food Chem. 1995, 53, 285-293.
• 19. Shang-gui D., Zhi-ying P., Fang C., Ping Y., Tie W.: Amino acid composition and anti-anaemia action of hydrolyzed offal protein from Harengula Zunasi Bleeker. Food Chem. 2004, 87, 97-102.
• 20. Silva M. E. M. P. E., Mazzilli R. N., Cusin F.: Composition of hydrolysates from meat. J. Food Compos. Anal. 1999, 12, 219-225.
• 21. Simpson B. K., Nayeri G., Yaylayan V., Ashie I. N. A.: Enzymatic hydrolysis of shrimp meat. Food Chem. 1998, 61, 131-138.
• 22. Sikorski Z. E.: Morskie surowce żywnościowe: dostępność, właściwości i przechowywanie chłodnicze. WNT, Warszawa 1992.
• 23. Sikorski Z. E.: Ryby i bezkręgowce morskie - pozyskiwanie. WNT, Warszawa 2004.
• 24. Skierka E., Sadowska M., Majewska J.: Optymalizacja odzyskiwania białek mięśniowych z kręgosłupów dorsza bałtyckiego. Medycyna Wet. 2005, 62, 579-582.
• 25. Šližyte R., Daukšas E., Falch E., Storrř I., Rustad T.: Yield and composition of different fractions obtained after enzymatic hydrolysis of cod (Gadus morhua) by-products. Proc. Biochem. 2005, 40, 1415-1424.
• 26. Synowiecki J., Jagiełka R., Shahidi F.: Preparation of hydrolysates from bovine red blood cells and their debittering following plastein reaction. Food Chem. 1996, 57, 435-439.
• 27. Synowiecki J., Sikorska-Wiśniewska G.: Funkcjonalne właściwości i żywieniowe zastosowanie hydrolizatów białkowych. Żywn. Technol. Jakość. 1997, 3, 20-26.
• 28. Synowiecki J., Al-Khateeb N. A. A. Q.: The recovery of protein hydrolysate during enzymatic isolation of chitin from shrimp Crangon crangon processing discards. Food Chem. 2000, 68, 147-152.
• 29. Szynalewska H.: Możliwości wykorzystania kręgosłupów dorsza jako źródła kolagenu. Praca magisterska, Wydz. Chemiczny, PG, Gdańsk 2000.
• 30. Venugopal V.: Functionality and potential applications of thermostabile water dispersion of fish meat. Trends Food Sci. Technol. 1997, 8, 271-276.
• 31. Weber K., Osborn M.: The reliability of molecular weight determinations by dodecyl sulfate - polyacrylamide gel electrophoresis. J. Biol. Chem. 1969, 244, 4406-4412.