Porównanie aktywności enzymatycznej wybranych torfowych podłoży ogrodniczych

• Autorzy: Onyszko M. , Wrońska I. , Cybulska K. , Dobrowolska A. , Telesiński A.

Warianty tytułu

EN

Comparison of the enzymatic activity of selected horticultural growing media

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Celem podjętych badań było porównanie aktywności enzymów w wybranych podłożach ogrodniczych, które pozwoliło na ocenę ich przydatności do deklarowanych przez producentów zastosowań. Do analiz wykorzystano dostępne na rynku podłoża ogrodnicze: podłoże warzywno-kwiatowe wzbogacone w mikroorganizmy (prod. Evolution Group), podłoże uniwersalne (prod. Hollas), torf ogrodniczy kwaśny (prod. Kronen), podłoże uniwersalne (prod. Sterlux), podłoże do wysiewu i pikowania (prod. Hollas), torf ogrodniczy odkwaszony (prod. Nowy Chwalim). W podłożach oznaczono aktywność czterech enzymów z klasy oksydoreduktaz (dehydrogenaz, katalazy, peroksydaz i reduktazy azotanowej), czterech enzymów z klasy hydrolaz (fosfatazy kwaśnej, fosfatazy alkalicznej, proteaz i ureazy), odczyn oraz zawartość materii organicznej. Na podstawie przeprowadzonych badań stwierdzono, że aktywność enzymatyczna badanych podłoży ogrodniczych była zróżnicowana, a zaobserwowane różnice zależały zarówno od rodzaju podłoża, jego pH, jak i rodzaju enzymu. Największą aktywnością, zwłaszcza oksydoreduktaz, charakteryzowało się podłoże warzywno-kwiatowe wzbogacone w mikroorganizmy. Największe różnice pomiędzy podłożami wykazano w aktywności fosfataz, nie stwierdzono natomiast istotnych różnic w aktywności peroksydaz i ureazy. Można zatem wywnioskować, że podłoże wzbogacone w mikroorganizmy jest najbardziej przydatne do upraw warzywno-kwiatowych.

EN

The aim of the study was to compare the activity of enzymes in selected horticultural growing media. Analysed media included: vegetable and flower growing medium enriched in microorganisms (Evolution Group), universal growing medium (Hollas), universal growing medium (Sterlux), growing medium for sowing and transplanting (Hollas); horticultural acid peat (Kronen) and horticultural de-acidified peat (Nowy Chwalim). The activity of four enzymes from the class of oxidoreductases: dehydrogenase, catalase, peroxidase, nitrate reductase and four enzymes from the class of hydrolases: acid phosphatase, alkaline phosphatase, urease and proteases, was determined in growing media. In addition, pH and the organic matter content were analysed. Enzymatic activity varied across horticultural growing media and the observed differences depended on the type of growing medium, pH and the type of the enzyme. The highest activity of enzymes, especially oxidoreductases, was observed in vegetable and flower growing medium enriched in microorganisms. The biggest differences among the substrates were found in the activity of phosphatases, whereas no significant differences in the activity of peroxidase and urease were observed. It could, therefore, be concluded that the medium enriched in microorganisms is most useful in flower and vegetable crops.

Słowa kluczowe

PL

aktywność enzymatyczna; hydrolazy; oksydoreduktazy; podłoża ogrodnicze; torf

EN

horticultural growing media; hydrolases; enzymatic activity; oxidoreductases; peat

• Wydawca: Wydawnictwo ITP
• Czasopismo: Woda-Środowisko-Obszary Wiejskie
• Rocznik: 2015
• Tom: T. 15, z. 1
• Strony: 69—77
• Opis fizyczny: Bibliogr. 29 poz., rys.

Twórcy

autor

Onyszko M.

• Zachodniopomorski Uniwersytet Technologiczny w Szczecinie, Katedra Fizjologii Roślin i Biochemii, ul. Juliusza Słowackiego 17, 71-434 Szczecin

autor

Wrońska I.

• Zachodniopomorski Uniwersytet Technologiczny w Szczecinie, Zakład Mikrobiologii i Biotechnologii Środowiska

autor

Cybulska K.

• Zachodniopomorski Uniwersytet Technologiczny w Szczecinie, Zakład Mikrobiologii i Biotechnologii Środowiska

autor

Dobrowolska A.

• Zachodniopomorski Uniwersytet Technologiczny w Szczecinie, Katedra Ogrodnictwa

autor

Telesiński A.

• Zachodniopomorski Uniwersytet Technologiczny w Szczecinie, Katedra Fizjologii Roślin i Biochemii

Bibliografia

• 1. ABDELMAGID H.M., TABATABAI M.A. 1987. Nitrate reductase activity of soils. Soil Biology and Biochemistry. Vol. 19 s. 421–427.
• 2. ACOSTA-MARTINEZ V., TABATABAI M.A. 2000. Enzyme activities in a limed agricultural soil. Biology and Fertility of Soils. Vol. 31. Iss. 1 s. 85–91.
• 3. ALBIACH R., CANET R., POMARES F., INGELMO F. 2001. Organic matter components, aggregate stability and biological activity in a horticultural soil fertilized with different rates of two sewage sludges during ten years. Bioresource Technology. Vol. 77 s. 109–114.
• 4. BANACH J., SKRZYSZEWSKA K., ŚWIEBODA Ł. 2013. Wpływ podłoża na wzrost jednoletnich i dwuletnich sadzonek jodły pospolitej i buka zwyczajnego produkowanych w kontenerach styropianowych. Leśne Prace Badawcze. Nr 74 s. 117–125.
• 5. BARTHA R., BORDELEAU L. 1969. Cell-free peroxidases in soil. Soil Biology and Biochemistry. Vol. 1 s. 139–143.
• 6. BIELIŃSKA E.J., BARAN S., STANKOWSKI S. 2009. Ocena przydatności popiołów fluidalnych z węgla kamiennego do celów rolniczych. Inżynieria Rolnicza. Nr 6(119) s. 7–15.
• 7. DICK W.A., CHENG L., WANG P. 2000. Soil acid and alkaline phosphatase activity as pH adjustment indicators. Soil Biology and Biochemistry. Vol. 32. Iss. 13 s. 1915–1919.
• 8. DOBROWOLSKA A., KLESSA M., PLACEK M. 2007. Ocena przydatności podłoży z dodatkiem kompostu z komunalnego osadu ściekowego w uprawie dwóch gatunków z rodzaju Impatiens. Cz. I. Cechy wegetatywne. Folia Universitatis Agriculturae Stetinenesis, Agriciltura, Alimentaria, Piscaria et. Zootechnica. Nr 259. Z. 4 s. 35–40.
• 9. IOVIENO P., MORRA L., LEONE A., PAGANO L., ALFANI A. 2009. Effect of organic and mineral fertilizers on soil respirationand enzyme activities of two Mediterranean horticultural soils. Biology and Fertility of Soils. Vol. 45 s. 555–561.
• 10. JANAS R. 2009. Możliwości wykorzystania efektywnych mikroorganizmów w ekologicznych systemach produkcji roślin uprawnych. Problemy Inżynierii Rolniczej. Nr 3(65) s. 111–119.
• 11. JANICKA D., DOBROWOLSKA A. 2012. Wpływ zasolenia wybranych podłoży na wzrost i kwitnienie krwawnika pospolitego (Achilleamillefolium L.) i krwawnika wiązówkowatego (Achilleafilipendulina Lam.). Folia Pomeranae Universitatis Technologiae Stetinenesis, Agriciltura, Alimentaria, Piscaria et Zootechnica. Nr 296. Z. 23 s. 19–26.
• 12. JIMENEZ M., HORRA A.M., PRUZZO L., PALMA R.M. 2002. Soil quality: a new index based on microbiological and biochemical parameters. Biology and Fertility of Soils. Vol. 35 s. 302–306.
• 13. JOHNSON J.L., TEMPLE K.I. 1964. Some variables affecting measurement o catalase activity in soil. Soil Science Society of America Proceedings. Vol. 34. Iss. 1s. 207–209.
• 14. KACZMAREK Z., WOLNA-MARUWKA A., JAKUBUS M. 2008. Zmiany liczebności wybranych grup drobnoustrojów glebowych oraz aktywności enzymatycznej w glebie inokulowanej efektywnymi mikroorganizmami (EM). Journal of Research and Applications in Agricultural Engineering. Nr 53. Z. 3 s.122–128.
• 15. KANDELER E., GERBER H. 1988. Short-term assay of soil urease activity using colorimetric determination of ammonium. Biology and Fertility of Soils. Vol. 6. No. 1 s. 68–72.
• 16. KRZYWY E., WRAGA K., ZAWADZIŃSKA A.2007. Ocena wpływu podłoża z komunalnego osadu ściekowego na wzrost i pokrój chryzantemy wielkokwiatowej (Chrysanthemumx grandiflorum (Ramat.) Kitam). Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych. Z. 518 s. 93–100.
• 17. KUCHARSKI J., JASTRZĘBSKA E. 2005. Rola mikroorganizmów efektywnych (EM) i glebowych w kształtowaniu właściwości mikrobiologicznych gleby. Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych. Z. 506 s. 315–322.
• 18. KUZIEMSKA B., KALEMBASA S., KALEMBASA D. 2014. Wpływ wapnowania i materii organicznej na aktywność fosfataz w glebie zanieczyszczonej niklem. Inżynieria Ekologiczna. Nr 37 s. 117–127.
• 19. LADD J.M., BUTLER J.H.A. 1972. Short-term assays of soil photolytic enzyme activity using proteinsand dipeptide derivates as substrates. Soil Biology and Biochemistry. Vol. 4. Iss. 1 s. 19–30.
• 20. MARGESIN R. 1996. Acid and alkaline phosphomonoesterase with the substrate p-nitrophenyl phosphate. W: Methods in soil biology. Pr. zbior. Red. F. Schinner, E. Öhlinger, E. Kandeler, R. Margesin. Berlin. Springer Verl. s. 213–217.
• 21. MARTYNIUK S., KSIĘŻAK J. 2011. Ocena pseudo mikrobiologicznych biopreparatów stosowanych w uprawie roślin. Polish Journal of Agronomy. Nr 6 s. 27–33.
• 22. MIKANOVA O. 2006. Effects of heavy metals on some soil biological parameters. Journal of Geochemical Exploration. Vol. 88 s. 220–223.
• 23. PIĘTA D., PATKOWSKA E., PASTUCHA A. 2004. Oddziaływanie biopreparatów na wzrost i rozwój niektórych grzybów chorobotwórczych dla roślin motylkowatych. Acta Scientarum Polonorum, Hortorum Cultus. Nr 3 s. 171–177.
• 24. STIELOW G. 2003. Rich soil do not need of the fertilization. Journal of Research and Applications in Agricultural Engineering. Nr 48 1 s. 20–22.
• 25. TABATABAI M.A., BREMNER J.M. 1969. Use of p-nitrophenyl phosphate for assay soil phosphatase activity. Soil Biology and Biochemistry. Vol. 1. Iss. 4 s. 307–310.
• 26. THALMANN A. 1968. Zur Methodik der Bestimmund der Dehydrogenaseaktivitätim Boden mittels Triphenyltetrazoliumchlorid (TTC). Landwirtschaftliche Forschung. No. 21 s. 249–258.
• 27. WOLNA-MARUWKA A., GAJEWSKI P. 2011. Wpływ szczepionki Efektywnych Mikroorganizmów na poziom aktywności dehydrogenaz oraz liczebność wybranych grup mikroorganizmów glebowych. Ekologia i Technika. Nr 19. Z. 4 s. 214–219.
• 28. WYSZKOWSKA J., BOROWIK A., KUCHARSKI M., KUCHARSKI J. 2013. Applicability of biochemical indices to quality assessment of soil polluted with heavy metals. Journal of Elementology. Vol. 18. Iss. 4 s. 733–756.
• 29. ZAWADZIŃSKA A., DOBROWOLSKA A. 2009. Wpływ podłoży z dodatkiem kompostów z komunalnego osadu ściekowego na wzrost i kwitnienie niecierpka walleriana (Impatiens walleriana). Ochrona Środowiska i Zasobów Naturalnych. Nr 40 s. 608–616.