Assessment of the antifungal properties of nettle extracts against Fusarium proliferatum

• Autorzy: Grata K. , Nabrdalik M.

Identyfikatory

DOI

10.2429/proc.2015.9(2)053

Warianty tytułu

PL

Ocena właściwości przeciwgrzybowych pokrzywy zwyczajnej wobec Fusarium proliferatum

• Konferencja: ECOpole’15 Conference (14-16.10.2015, Jarnoltowek, Poland)
• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The aim of conducted research was to determine the antifungal properties of the leaf and nettle rot extracts on the growth of Fusarium proliferatum. The antagonistic properties of nettle extracts at 2.5, 5.0, 10, 20 and 40% concentrations were assayed with a dual culture plate method on PDA and Tomato media. The culturing process was conducted at 26ºC for 9 days and the fungal linear growth was measured every 1-2 days. The positive control in the experiment was Topsin M 500 SC whereas negative the distilled water. The fungistatic activity of nettle extracts was determined against the conidia germination rate index, the growth rate index and the rate of mycelial growth inhibition of Fusarium proliferatum. Obtained results shows that the nettle rot extracts inhibited the spore germination (from 7.5 to 47.3%) at all tested concentrations and nettle leave extracts (from 5.9 to 54.0%, respectively) towards negative control, while stimulated compared to positive control. The highest inhibition of the linear growth of mycelium has been observed both for nettle rot and leaf extracts on Tomato medium (9.8 and 11.2%, respectively) and on PDA medium (5.5 and 3.2%, respectively) at 40% concentration towards negative control, while stimulated compared to positive control.

PL

Celem przeprowadzonych badań była ocena właściwości przeciwgrzybowych ekstraktów z liści i korzenia pokrzywy zwyczajnej wobec Fusarium proliferatum. Ocenę właściwości antagonistycznych ekstraktów w stężeniach 2,5, 5,0, 10, 20 i 40% przeprowadzono metodą hodowlano-płytkową z zastosowaniem podłoży PDA pomidorowego. Hodowlę prowadzono w temp. 26ºC przez 9 dni, dokonując pomiarów co 1-2 dni. Kontrolę pozytywną stanowił Topsin M 500 S.C, a kontrolę negatywną woda destylowana. Określono indeks kiełkowania zarodników, indeks tempa wzrostu oraz stopień redukcji liniowego wzrostu Fusarium sp. Uzyskane wyniki badań wykazały zahamowanie kiełkowania zarodników przez wszystkie zastosowane stężenia ekstraktów z korzenia pokrzywy (od 7,5 do 47,3%) oraz stężenia ekstraktów z liści pokrzywy (od 5,9 do 54,0%) w porównaniu do próby negatywnej, lecz stymulujące działanie w porównaniu do próby pozytywnej. Najwyższy stopień zahamowania liniowego tempa wzrostu obserwowano zarówno po zastosowaniu ekstraktu z korzenia, jak i liści na podłożu pomidorowym odpowiednio o 9,8 i 11,2%, a na podłożu PDA odpowiednio o 5,5 i 3,2% przy stężeniu 40% w porównaniu do próby negatywnej, lecz stymulujące działanie w porównaniu do próby pozytywnej.

Słowa kluczowe

EN

stinging nettle; antifungal activity; Fusarium proliferatum

PL

pokrzywa zwyczajna; aktywność przeciwgrzybowa; Fusarium proliferatum

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Proceedings of ECOpole
• Rocznik: 2015
• Tom: Vol. 9, No. 2
• Strony: 459--464
• Opis fizyczny: Bibliogr. 18 poz., tab.

Twórcy

autor

Grata K.

• Chair of Biotechnology and Molecular Biology, Opole University, ul. kard. B. Kominka 6a, 45-035 Opole, Poland, phone [phone]

autor

Nabrdalik M.

• Chair of Biotechnology and Molecular Biology, Opole University, ul. kard. B. Kominka 6a, 45-035 Opole, Poland, phone [phone]

Bibliografia

• [1] Andrzejak R, Werner M. Progress Plant Protect. 2006;46(2):700-703. http://www.researchgate.net/publication/242516602_WPYW_WYBRANYCH_PREPARATW_NA_WZROST_IN_VITRO_GRZYBW_RODZAJU_FUSARIUM_USZKADZAJCYCH_WYPUSTKI_SZPARAGW.
• [2] Kuzdraliński A, Paterek A, Gierasimuk N. Nauki Przyrodnicze. 2014;4(2):4-18. http://www.naukiprzyrodnicze.ssnp.org.pl/wpcontent/uploads/2014/09/Czasopismo2014nr2.pdf.
• [3] Ślusarski C. Zesz Probl Postęp Nauk Roln. 2008;529:219-226. http://www.zeszytyproblemowe.pan.pl/images/stories/Zeszyty/2008/529/31-25slu.kal.pdf.
• [4] Tekiela A. Wieś Jutra. 2010;3:219-226.
• [5] Hadizadeh I, Peivastegan B, Kolahi M. Pak J Biol Sci. 2009;12(1):58-63. http://docsdrive.com/pdfs/ansinet/pjbs/2009/58-63.pdf.
• [6] Fletcher JC, Bender B, Budowle WT. Microbiol Mol Biol Rev. 2006;70(2):450-471. DOI: 10.1128/MMBR.00022-05.
• [7] Joshi BC, Mukhija M, Kalia AN. Int J Green Pharm. 2014;8(4):201-209. DOI: 10.4103/0973-8258.142669.
• [8] Saklani S, Chandra S. Int J Pharm Rev Res. 2012;12(2):57-60. http://globalresearchonline.net/journalcontents/v12-2/010.pdf.
• [9] Gülçin I, Küfrevioglu ÖI, Oktay M, Büyükokuroglu ME. J Ethnopharmacology. 2004;90:205-215. DOI: 10.1016/j.jep.2003.09.028.
• [10] Sidaoui F, Belghith IS, Barth D, Trabelsi-Ayadi M, Cherif JK. Internat J Pharmacognosy Phytochem Res. 2015;7(4):707-713. http://ijppr.com/PDF/7/IJPPR,Vol7,Issue4,Article14.pdf.
• [11] Modarresi-Chahardehi A, Ibrahim D, Fariza-Sulaiman S, Mousavi L. Int J Tro Biol. 2012;60(4):1567-1576 http://www.revistas.ucr.ac.cr/index.php/rbt/article/viewFile/2074/2037.
• [12] Sanchez DOS, Najera GLA, Rivera IL, Ramirez OD, Cisneros GV, Garcia VMN. Polibtanica. 2009;28:23.
• [13] Tapwal NA, Garg S, Gautam N, Kumar R. Braz Arch Biol Technol. 2011;54(6):1093-1098. http://www.scielo.br/pdf/babt/v54n6/03.pdf.
• [14] Gleń K, Boligłowa E. J Res Appl Agric Eng. 2012;57(3):104109. http://www.pimr.poznan.pl/biul/2012_3_19GB2.pdf.
• [15] Burgieł Z, Kończyk D. Acta Agraris et Silvestria. 1989;XXVIII:5-31.
• [16] Burgieł Z, Acta Agraris et Silvestria. 1984;XXIII:187-195.
• [17] Hadi M, Sorkhi MRA, Kashefi B, Sobhanipur A, Shamsi MH. Middle-East J Sci Res. 2013;17(12):1701-1708. DOI: 10.5829/idosi.mejsr.2013.17.12.1250.
• [18] Madigan MT, Martinko JM, Brock TD. Brock Biology of Microorganisms. New Jersey, USA: Upper Saddle River, Pearson-Prentice Hall; 2006.

Uwagi

PL

Opracowanie ze środków MNiSW w ramach umowy 812/P-DUN/2016 na działalność upowszechniającą naukę.