Zastosowanie metod chromatograficznych i spektroskopowych w analizie fitochemicznej wybranych surowców roślinnych. Cz. 2

Krauze-Baranowska, M.; Malinowska, I.

Artykuł - szczegóły

Tytuł artykułu

Zastosowanie metod chromatograficznych i spektroskopowych w analizie fitochemicznej wybranych surowców roślinnych. Cz. 2

Autorzy

Krauze-Baranowska M. , Malinowska I.

Treść / Zawartość

Pełne teksty:

httpwww_bg_utp_edu_plartlab12011zastosowanie20metod20chromatograficznych20i20spektroskopowych20cz_ii.pdf

Pobierz

Identyfikatory

Warianty tytułu

Języki publikacji

Abstrakty

Słowa kluczowe

chromatografia spektroskopia analiza fitochemiczna surowce roślinne

chromatography spectroscopy fitochemical analysis vegetable raw materials

Wydawca

Roble Sp. z o.o.

Czasopismo

LAB Laboratoria, Aparatura, Badania

Rocznik

2011

Tom

R. 16, nr 1

Strony

20--27

Opis fizyczny

Bibliogr. 47 poz.

Twórcy

autor

Krauze-Baranowska M.

autor

Malinowska I.

Wydział Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej, Katedra i Zakład Farmakognozji Gdańskiego Uniwersytetu Medycznego

Bibliografia

1. Niredy Sz. Głowniak K., Planar chromatography in medicienal plant research in Planar Chromatography a retrospective view in third millenium, (ed. Sz. Nyredy), Springer, 2001, str. 550-567
2. Nyredy Sz., Ferenczi-Fodor K., Vegh Z., Szepesi G. Pharameceutical and drugs in Handbook of Thin-Layer Chromatography, third ed.(ed. J.Sherma) Marcek Dekker, Inc., New York-Basel, 2003, str. 807-864
3. Krauze-Baranowska M., Badania dimerycznych pochodnych flawonoidowych w niektórych gatunkach o z podgrupy Gymnospermae, Annales Academiale Medicae Gedanensis, Tom XXXIII, 2003
4. Krauze-Baranowska M., Cisowski W., Wiwart M., Madziar B., Antifungal biflavpnes from xCupressocyparis lecylandii, Plant Med. (1999) 65, 572-573
5. Krauze-Baranowska M., Sowiński P. 2,3-dihydrosciadopitisin from Ginko Biloba, L.Plan-ta Med. (1999) 65, 482-484
6. Krauze-Baranowska M., Mardarowicz M., Wiwart M., The chemical composition of Microbiotadecussata. Z. Natur-forsch (2002) 57c, 998-1003
7. Krauze-Baranowska M.,Trucsillic and truxsinic acids - occurence in plant kingdom, Acta Pol. Pharm. (2002) 59, 40 -410
8. Krauze-Baranowska M., Malinowska I., Skiewierska J., TLC od flavonol truxinix esters from Pseudotsuga menziesii. J. Planar Chromatogr., (2002) 15, 437-441
9. Krauze-Baranowska M., Flavonoids from the genus Taxus. Z. Naturforsch (2004), 59c, 43-47
10. Krauze-Baranowska M., Flavonoids from Metasequoia glyptostroboides Acta Pol. Pharm.- Drug Res. (2004) 61, 199-202
11. Krauze-Baranowska M., Sowiński P., Flavonoids from Pseudotsuga menziesii. Molecules (2010) 21, 341-346
12. Geiger H., Quinin H., Biflawonoids w The flawonoids (ed. Harbone J.B.) str. 1988 95-115, Chapman and Hall, London
13. Bisset N., Wihtl M., Herbal Drugs and Phytopharmaceuticals, CRC, London, 2001
14. Brüneton J. Pharmacognosy, Phytochemistry, Medicinal Plants, Intercept Ltd., London
15. Evans W.C., Pharmacognosy Saunders, Edinburgh
16. Kohlmünzer, Farmakognozja, PZWL, Warszawa
17. Schmid B., Lüdtke R., Selbmann H.K. Kbtter I., Tschirdewahn B., Schaffner W., Heide L., Efficacy and Tolerabity of a Standardized Willow Bark Exstract in Patients with Osteoarthritis: Rznadomized Placebo-controlled Double Blind Clinical Trial Phythoter. Res. 15 (2001)344-350
18. Chrubasik S,m Eisemberg E., Balan E., WeinbergerT., Luzzati R.,
19. Schmid B., Kötter I., Heide L, Pharmacokinetics of Salicin after Oral Administration of a standardised Willow Bark Extract Eur. J. Clin. Pharmacol., 57(2001)387-391
20. European Farmakopoea, Concil of Europe, Strasbourg, 2004
21. Farmakopea Polska, PTFarm, Warszawa 2002
22. Chrubasik S., Efecy of Willow Barck Extract and therapeutic Activity, Clin., Pharmacol. Therap., 74 (2003) 95
23. Chrubasik S., Eisenberg E., Balan E., Weinberger T., Luzzati R., Conradt Ch., Willow Bark Extract, a Useful Alternative for the Tratment of Osteoarthristis: Comment on the Editorial by Marcus and Suarez-AlmazorArthritis Rheum. 48 (2003) 278-280
24. Pobłocka-Olech L., Zastosowanie metod chromatograficznych w badaniach składu chemicznego kory niektórych gatunków i klonów wierzby, Gdańsk 2003
25. Krauze-Baranowska M., Pobłocka L. Metody ekstrakcji stosowane w przygotowaniu próbek do analizy fitochemicznej. Farm. Pol. (2002) 58, 411-21.
26. Markham K.R., Techniques of flawonoids identyfication, (1982) Academic Press, London, str 36-49,72-93
27. Matysik G., Problemy optymalizacji chromatografii cienkowarstwowej, Lublin, 1997, str. 88-114
28. http://encyclopedia.the-freedictionary.com/Pyrocatechin?p
29. Anderson M.A., Hellman B.E., Different Roles of Fpg and Endo III of catechol - ilnduced DNA Damage in Extendent - term Cultureson Human Lymphocytes and L5178Y Mouse Lymphoma Cels Toxicol. Vitro 19(2005)779-86
30. 205 Schwiegert N., Zehnder A.J., Eggen R.I., Chemical Properties of Catechols and Their Molecular Modes of Toxic Action in Cells from Microorganism to Mammals, Environmental Microbiol., 3 (2001) 89-92
31. Pobłocka-Olech L, Krauze-Baranowska M., Głód D., Kawiak A., Łojkowska E. Chromatographic analysis of simple phenols in some species from the genus Salix. Phytochem. Anal. 2010, 21,463-469.
32. Meier B., Shao Y., Julkunene-Tito R., Bettschart A., Sticher O. A Cematotoxomic Survey of Phenolic Compounds in Swiss Willow Species. Planta Med.58 (1992) 698
33. Hrynkiewicz-Sudnik J., Sękowski B., Wilczkiewicz M., Rozmnażanie drzew i krzewów liściastych, PWN, Warszawa (1990)
34. Poukens-Enwart P., Tits M., Angenot L. Densitometric Determination of Salicin in Willow Stem Bark, J. Planar Chromatogr., 6 (1993) 434-437
35. Julkunen-Tiitto R., Gebhardt H., Further Studies on Drying Willow (Salix) Twigs: the Effect of Low Drying Temperature on Labile Phenolics, Planta Med.58 (1992)385-6
36. Julkunen-Tiitto R., Meier B., Variation on Growth and Secondary Phenolics Among Field-Cultivated Clones of Salix myrsinifolia. PlantaMed. 58 (1992)77-80
37. Kammerer B., Kahlich R., Biegert C, Gleiter C.H., Heide L, HPLC-MS/MS Analysis of Willow Bark Extracts Contained in Pharmaceutical Preparations Phytochem. Anal. 16(2005)470-8
38. Stołyhwo A., Colin H., Giochon G. Use of Light Scattering as a Detector Principle in Liquid Chromatography, J. Chromatogr., (1983)1-18
39. http://www.fda.gov/CDER/ GUIDANCE/4252fnl.pdf - Bioanalytical Method Validation, 2001
40. Z. Witkiewicz, podstawy Chromatografii, WNT, Warszawa, 2005
41. Young C.S. The HPLC Analysis of Salicin Containing White Willow Barck Extract Using Evaporative Light-Scattering Detection, LC/GC - the Application Notebook, February 2004,47
42. Young C.S., Dolan J.W. Success wiyh Evaporative Light-Scattering Detection, LC/GC (2003)132-7
43. Svedstrom U., Vuorela H., Kostiainen R., Huovinen K., Laakso L, Hiltunen R., High -performance Liquid Chromatographic Determination of Oligomeric Procianidins from Dinners Up to the Hexamer in Havthorn, J. Chromatogr. A, 968, (2002) 53-60
44. 22 Markham K.R., Techniques of flavonoids identification, str 36-39, 72-93, Academic Press, London, 1982.
45. Hoffman E., Harette. J., Stroobant V., Spektrometria mas, WNT, Warszawa, 1998
46. Souza L.M., Cipriani T.R., Sant'Ana C., Iacomini M., Corin P., Sassaki G. Heart-cutting two-dimensional (size exlusionxreversed phase) liquid chromatgraphy - mass spectrometry analysis of flavonol glycosides from leaves of Maytenus ilicifolia. J. Chromatogr. A. 2009,1216,99-95.
47. Cesla P., Hajek T., Jandera P. Optimization of two -dimensional gradient liquid chromatography separations. J. Chromatogr. A 2009, 1216, 3443-3457

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.baztech-article-LOD7-0024-0044