Solid phase extraction using a column with a monolithic molecuraly imprinted epoxy resin-based polymeric stationary phase : HPLC determination of malachite green in fish and water samples

Sui, W.; Hailong, L.; Zhiyong, G.; Huina, Z.; Yanling, T.; Danyi, W.

Artykuł - szczegóły

Tytuł artykułu

Solid phase extraction using a column with a monolithic molecuraly imprinted epoxy resin-based polymeric stationary phase : HPLC determination of malachite green in fish and water samples

Autorzy

Sui W. , Hailong L. , Zhiyong G. , Huina Z. , Yanling T. , Danyi W.

Wybrane pełne teksty z tego czasopisma

http://beta.chem.uw.edu.pl/chemanal/

Identyfikatory

Warianty tytułu

Ekstrakcja do fazy stałej przy użyciu kolumny z polimerową fazą stacjonarną opartą na monolitycznej żywicy epoksydowej z odwzorowaniem molekularnym : oznaczanie zieleni malachitowej metodą HPLC w próbkach wody i ekstraktu z ryb

Języki publikacji

Abstrakty

A column with a novel monolithic molecularly imprinted polymer (MlP)-based stationary phase with malachite green (MG) as template molecules was prepared. The synthesized MIP was characteri/cd by IR and SEM. Extraction conditions on MIPs were optimized. MG and some other compounds were employed for selectivity tests. River water samples were spiked with MG at the concentration 20-500 ng mL^-1 extraction was performed using a MISI'E column and detection was accomplished by HPLC. The achieved recoveries were in the range 95.06-100.13%; relative standard deviation was 0.025-6.63%. MG concentrations in three natural water and fish samples were 2.65,2.60,2.36 and 5.63 ng mL^-1, respectively.

Sporządzono kolumnę z nową falą stacjonarną opartą na monolitycznym polimerze z odwzorowaniem molekularnym (MIP), w którym w charakterze szablonu użyto zieleni malachitowej (MG), /syntetyzowany MIP scharakteryzowano za pomocą IR i SEM. Zoptymalizowano warunki ekstrakcji na MIP. Do badań selektywności użyto MG i inne związki. Efektywność ekslracji porzy zastosowaniu kolumn MISPE i próbek wody rzecznej z dodatkiem MG (20-500 ng mL^-1) badano stosując do oznaczenia metodę HPLC. Odzyski wahały się w granicach 95-100% ze względnym odchyleniem stasndardowym 0.025-6.6%. Stwierdzono stężenia MG w trzech opróbkach wód naturalnych i w ekstrakcie z ryby w wysokości odpowiednio: 2.65. 2.60. 2,36 i 5,63 ng mL^-1.

Słowa kluczowe

malachite green solid-phase extraction molecularly imprinted polymer monolith HPLC stepwise polymerization

zieleń malachitowa ekstrakcja do fazy stałej polimer monolityczny z odwzorowaniem molekularnym HPLC polimeryzacja

Wydawca

Komitet Chemii Analitycznej PAN

Czasopismo

Chemia Analityczna

Rocznik

2009

Tom

Vol. 54, No. 6

Strony

1339--1353

Opis fizyczny

Bibliogr. 38 poz.

Twórcy

autor

Sui W.

autor

Hailong L.

autor

Zhiyong G.

autor

Huina Z.

autor

Yanling T.

autor

Danyi W.

The State Key Laboratory Base of Novel Functional Materials and Preparations Science, Faculty of Materials Science and Chemical Engineering, Ningbo University, Ningbo 315211, PR China Fax: +86-574-87600734, wangsui@nbu.edu.cn

Bibliografia

1. Wulff G. and Sarhan A., Angew. Chem. Int. Ed. Engl., 11, 341 (1972).
2. Mosbach K., Trends Biochem. Sci., 19, 9 (1994).
3. Wulff G., Angew. Chem. Int. Ed. Engl., 34, 1812 (1995).
4. Lavignac N., Allender C.J. and Brain K.R., Anal. Chim. Acta, 510, 139 (2004).
5. Claude B., Morin P., Lafosse M., Belmont A.S. and Haupt, K., Talanta, 75, 344 (2008).
6. Dias A., Figueiredo E.C., Grassi V., Zagatto E.A.G. and Arruda, M.A.Z., Talanta, 76, 988 (2008).
7. Baggiani C., Giraudi G., Trotta F., Giovannoli C. and Vanni A., Talanta, 51, 71 (2000).
8. Lu Y., Li C.X., Zhang H.S. and Liu X.H., Anal. Chim. Acta, 489, 33 (2003).
9. Sajonz P., Kele, M., Zhong G., Sellergren B. and Guiochon G., J. Chromatogr. A, 810, 1 (1998).
10. Yoshikawa M., Fujisawa T., Izumi J., Kitao T. and Sakamoto, S., Anal. Chim. Acta., 365, 59 (1998).
11. Ye L., and Haupt K., Anal. Bioanal. Chem., 378, 1887 (2004).
12. Wang L., and Zhang, Z.J., Talanta, 76, 768 (2008).
13. Andersson L.I., Anal. Chem., 68, 111 (1996).
14. Vlatakis G., Andersson L.I., Mueller R. and Mosbach K., Nature, 361, 645 (1993).
15. Wulff G., Chem. Rev., 210, 1 (2002).
16. Mayes A.G. and Mosbach K. Anal. Chem, 63, 3769 (1996).
17. Wang J., Cormack P.A.G., Sherrington D.C. and Khoshdel E., Angew. Chem. Int. Ed., 42, 5336 (2003).
18. Haginaka J., and Kagawa C., J. Chromatogr. A, 948, 77 (2002).
19. Sellergren B., Ruckert B. and Hall A. J., Adv. Mater., 14, 1204 (2002).
20. Matsui J., Kato T., Takeuchi T., Suzuki M., Yokoyama K., Tamiya E. and Karube I., Anal. Chem., 65, 2223 (1993).
21. Sun H.W., Qiao F.X. and Liu G.Y., J. Chromatogr. A, 1134, 194 (2006).
22. Liu H., Row K.H. and Yang G., Chromatographia, 61, 429 (2005).
23. Liu X., Ouyang C., Zhao R., Shangguang D.H. and Liu G.Q., Anal. Chim. Acta., 571, 235 (2006).
24. Liu Z.S., Xu Y.L., Yan C. and Gao R.Y., J. Chromatogr. A, 1087, 20 (2005).
25. Ou J.J., Hu L.H., Hu L.G., Li X. and Zou H.F., Talanta, 69, 1001 (2006).
26. Seebach A. and Seidel-Morgenstern A., Anal. Chim. Acta., 591, 57 (2007).
27. Yan H. and Row K.H., Biotechnol. Bioprocess Eng., 11, 357 (2006).
28. Yan H. and Row K.H., J. Ind. Eng. Chem., 13, 552 (2007).
29. Tsujioka N., Hira N., Aoki S., Tanaka N. and Hosoya K., Macromolecules, 38, 9901 (2005).
30. Yang D., Chang X.J., Liu Y.W. and Wang S., J. Appl. Polym. Sci., 97, 2330 (2005).
31. Wang S. and Zhang R.F., Mikrochim. Acta., 154, 73 (2006).
32. Alderman D.J.,.J. Fish Dis., 8, 289 (1985).
33. Culp S.J. and Beland F.A., J. Am. Coll. Toxicol., 15, 219 (1996).
34. Fessard V., Godard T., Huert S., Mourot A. and Poul J.M., J. Appl. Toxicol., 19, 421 (1999).
35. Li Y.H., Yang T., Qi X.L., Qiao Y.W. and Deng A. P., Anal. Chim. Acta, 624, 317 (2008).
36. Yan S.L., Gao Z.X., Fang Y.J., Cheng Y.Y., Zhou H.Y. and Wang H. Y., Dyes and Pigments, 74, 572 (2007).
37. Su L.Q., Qiao S. and Zhang W.B., Chinese Chem. Lett., 18, 229 (2007).
38. Wang S. and Zhang R., Anal. Chim. Acta, 575, 166 (2006).

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.baztech-article-BPP2-0003-0035