Solid phase extraction using a column with a monolithic molecuraly imprinted epoxy resin-based polymeric stationary phase : HPLC determination of malachite green in fish and water samples

• Autorzy: Sui W. , Hailong L. , Zhiyong G. , Huina Z. , Yanling T. , Danyi W.

Warianty tytułu

PL

Ekstrakcja do fazy stałej przy użyciu kolumny z polimerową fazą stacjonarną opartą na monolitycznej żywicy epoksydowej z odwzorowaniem molekularnym : oznaczanie zieleni malachitowej metodą HPLC w próbkach wody i ekstraktu z ryb

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

A column with a novel monolithic molecularly imprinted polymer (MlP)-based stationary phase with malachite green (MG) as template molecules was prepared. The synthesized MIP was characteri/cd by IR and SEM. Extraction conditions on MIPs were optimized. MG and some other compounds were employed for selectivity tests. River water samples were spiked with MG at the concentration 20-500 ng mL^-1 extraction was performed using a MISI'E column and detection was accomplished by HPLC. The achieved recoveries were in the range 95.06-100.13%; relative standard deviation was 0.025-6.63%. MG concentrations in three natural water and fish samples were 2.65,2.60,2.36 and 5.63 ng mL^-1, respectively.

PL

Sporządzono kolumnę z nową falą stacjonarną opartą na monolitycznym polimerze z odwzorowaniem molekularnym (MIP), w którym w charakterze szablonu użyto zieleni malachitowej (MG), /syntetyzowany MIP scharakteryzowano za pomocą IR i SEM. Zoptymalizowano warunki ekstrakcji na MIP. Do badań selektywności użyto MG i inne związki. Efektywność ekslracji porzy zastosowaniu kolumn MISPE i próbek wody rzecznej z dodatkiem MG (20-500 ng mL^-1) badano stosując do oznaczenia metodę HPLC. Odzyski wahały się w granicach 95-100% ze względnym odchyleniem stasndardowym 0.025-6.6%. Stwierdzono stężenia MG w trzech opróbkach wód naturalnych i w ekstrakcie z ryby w wysokości odpowiednio: 2.65. 2.60. 2,36 i 5,63 ng mL^-1.

Słowa kluczowe

EN

malachite green; solid-phase extraction; molecularly imprinted polymer monolith; HPLC; stepwise polymerization

PL

zieleń malachitowa; ekstrakcja do fazy stałej; polimer monolityczny z odwzorowaniem molekularnym; HPLC; polimeryzacja

• Wydawca: Komitet Chemii Analitycznej PAN
• Czasopismo: Chemia Analityczna
• Rocznik: 2009
• Tom: Vol. 54, No. 6
• Strony: 1339--1353
• Opis fizyczny: Bibliogr. 38 poz.

Twórcy

autor

Sui W.

autor

Hailong L.

autor

Zhiyong G.

autor

Huina Z.

autor

Yanling T.

autor

Danyi W.

• The State Key Laboratory Base of Novel Functional Materials and Preparations Science, Faculty of Materials Science and Chemical Engineering, Ningbo University, Ningbo 315211, PR China Fax: [phone],

Bibliografia

• 1. Wulff G. and Sarhan A., Angew. Chem. Int. Ed. Engl., 11, 341 (1972).
• 2. Mosbach K., Trends Biochem. Sci., 19, 9 (1994).
• 3. Wulff G., Angew. Chem. Int. Ed. Engl., 34, 1812 (1995).
• 4. Lavignac N., Allender C.J. and Brain K.R., Anal. Chim. Acta, 510, 139 (2004).
• 5. Claude B., Morin P., Lafosse M., Belmont A.S. and Haupt, K., Talanta, 75, 344 (2008).
• 6. Dias A., Figueiredo E.C., Grassi V., Zagatto E.A.G. and Arruda, M.A.Z., Talanta, 76, 988 (2008).
• 7. Baggiani C., Giraudi G., Trotta F., Giovannoli C. and Vanni A., Talanta, 51, 71 (2000).
• 8. Lu Y., Li C.X., Zhang H.S. and Liu X.H., Anal. Chim. Acta, 489, 33 (2003).
• 9. Sajonz P., Kele, M., Zhong G., Sellergren B. and Guiochon G., J. Chromatogr. A, 810, 1 (1998).
• 10. Yoshikawa M., Fujisawa T., Izumi J., Kitao T. and Sakamoto, S., Anal. Chim. Acta., 365, 59 (1998).
• 11. Ye L., and Haupt K., Anal. Bioanal. Chem., 378, 1887 (2004).
• 12. Wang L., and Zhang, Z.J., Talanta, 76, 768 (2008).
• 13. Andersson L.I., Anal. Chem., 68, 111 (1996).
• 14. Vlatakis G., Andersson L.I., Mueller R. and Mosbach K., Nature, 361, 645 (1993).
• 15. Wulff G., Chem. Rev., 210, 1 (2002).
• 16. Mayes A.G. and Mosbach K. Anal. Chem, 63, 3769 (1996).
• 17. Wang J., Cormack P.A.G., Sherrington D.C. and Khoshdel E., Angew. Chem. Int. Ed., 42, 5336 (2003).
• 18. Haginaka J., and Kagawa C., J. Chromatogr. A, 948, 77 (2002).
• 19. Sellergren B., Ruckert B. and Hall A. J., Adv. Mater., 14, 1204 (2002).
• 20. Matsui J., Kato T., Takeuchi T., Suzuki M., Yokoyama K., Tamiya E. and Karube I., Anal. Chem., 65, 2223 (1993).
• 21. Sun H.W., Qiao F.X. and Liu G.Y., J. Chromatogr. A, 1134, 194 (2006).
• 22. Liu H., Row K.H. and Yang G., Chromatographia, 61, 429 (2005).
• 23. Liu X., Ouyang C., Zhao R., Shangguang D.H. and Liu G.Q., Anal. Chim. Acta., 571, 235 (2006).
• 24. Liu Z.S., Xu Y.L., Yan C. and Gao R.Y., J. Chromatogr. A, 1087, 20 (2005).
• 25. Ou J.J., Hu L.H., Hu L.G., Li X. and Zou H.F., Talanta, 69, 1001 (2006).
• 26. Seebach A. and Seidel-Morgenstern A., Anal. Chim. Acta., 591, 57 (2007).
• 27. Yan H. and Row K.H., Biotechnol. Bioprocess Eng., 11, 357 (2006).
• 28. Yan H. and Row K.H., J. Ind. Eng. Chem., 13, 552 (2007).
• 29. Tsujioka N., Hira N., Aoki S., Tanaka N. and Hosoya K., Macromolecules, 38, 9901 (2005).
• 30. Yang D., Chang X.J., Liu Y.W. and Wang S., J. Appl. Polym. Sci., 97, 2330 (2005).
• 31. Wang S. and Zhang R.F., Mikrochim. Acta., 154, 73 (2006).
• 32. Alderman D.J.,.J. Fish Dis., 8, 289 (1985).
• 33. Culp S.J. and Beland F.A., J. Am. Coll. Toxicol., 15, 219 (1996).
• 34. Fessard V., Godard T., Huert S., Mourot A. and Poul J.M., J. Appl. Toxicol., 19, 421 (1999).
• 35. Li Y.H., Yang T., Qi X.L., Qiao Y.W. and Deng A. P., Anal. Chim. Acta, 624, 317 (2008).
• 36. Yan S.L., Gao Z.X., Fang Y.J., Cheng Y.Y., Zhou H.Y. and Wang H. Y., Dyes and Pigments, 74, 572 (2007).
• 37. Su L.Q., Qiao S. and Zhang W.B., Chinese Chem. Lett., 18, 229 (2007).
• 38. Wang S. and Zhang R., Anal. Chim. Acta, 575, 166 (2006).