Cyclic voltammetric determination of noradrenaline in pharmaceuticals using poly(3-acetylthiophene)-modified glassy carbon electrode

• Autorzy: Aslanoglu M. , Goktas S. , Karabulut S. , Kutluay A.

Warianty tytułu

PL

Woltamperometria cykliczna noradrenaliny w lekach z użyciem elektrody z węgla szklistego modyfikowanej poly(3-acetylotiofenem)

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

A simple and reproducible method for determination of noradrenaline (NA) in pharmaceutical preparations using a poly(3-acetylthiophene)-modified glassy carbon electrode (p3-AT-GCE) was developed. p3-AT-GCE showed an excellent electrocatalytic effect on the oxidation of NA and accelerated its electron transfer rate. Compared with bare GCH, the modified electrode exhibited a remarkable shift of the oxidation potential of NA in the cathodic direction and a drastic enhancement of the anodic current response. The separation between anodic and cathodic peak potentials (AEp) for NA in 0. l mol L^-1hosphate buffer solution (PBS) of pH 7.2 was 266 mV and 36 mV at bare and modified glassy carbon electrodes, respectively. However, the separation distance in 0. l mol L^-1PBS of pH 4.0 was only 29 mV. p3-AT-GCE was used for determination of NA. The peak current of NA increased linearly with its concentration in the range 2.5 x 10^-6 x 10^-4 mol L^-1. Detection limit of NA in cyclic voltammetry was 6.6 x 10^-7 mol L^-1. Voltammetric responses of NA and ascorbic acid (AA) at p3-AT-GCE were separated. Even 100-fold excess of AA with respect to NA did not interfere with voltammetric determination of NA. The proposed method showed excellent stability and reproducibility.

PL

Opracowano prostą i odtwarzalną metodę oznaczania noradrenaliny (NA) w preparatach farmaceutycznych. Do oznaczania użyto elektrody z węgla szklistego zmodyfikowanej poly(3-acetylotiofenem) - (p3-AT-GCE). Elektroda ta wykazała doskonały efekt katalityczny w procesie elektroutlenienia NA: wysokość piku woltamperometrycznego znacznie się zwiększyła, a potencjał piku przesunął się w kierunku bardziej ujemnym w porównaniu do niezmodyfikowanej elektrody węglowej. Rozsunięcie pików anodowego i katodowego w roztworze buforu fosforowego o stężeniu 0,1 mol L^-1i pH 7,2 wyniosło 266 i 36 mV, przy zastosowaniu odpowiednio, niezmodyfikowanej i zmodyfikowanej elektrody. Rozsunięcie to było mniejsze (29 mV) w buforze fosforanowym o pH 4,0. Dla eketrody p3-AT-GCH prąd woltamperometrycznego piku utleniania NA wzrastał liniowo w zakresie stężeń 2,5 x 10^-6—1,0 x l0⁴ mol L^-1. Granica wykrywalności została oszacowana na 6.6 x 10^-7 mol L^-7. Woltamperometrczne piki NA i kwasu askorbowego nie nakładały się. Nawet stukrotny nadmiar kwasu askorbowego nie przeszkadzał w oznaczaniu NA. Opracowana metoda wykazywała bardzo dobrą stabilność i odtwarzalność.

Słowa kluczowe

EN

noradrenaline; ascorbic acid; determination; voltammetry; modified electrodes

PL

noradrenalina; preparaty farmaceutyczne; kwas askorbowy

• Wydawca: Komitet Chemii Analitycznej PAN
• Czasopismo: Chemia Analityczna
• Rocznik: 2009
• Tom: Vol. 54, No. 4
• Strony: 643--653
• Opis fizyczny: Bibliogr. 34 poz.

Twórcy

autor

Aslanoglu M.

autor

Goktas S.

autor

Karabulut S.

autor

Kutluay A.

• Department of Chemistry, University of Harran, Sanliurfa 63510, Turkey,

Bibliografia

• 1. Anderson R.F. and Harris T.A., Free Radic. Res., 37, 1131 (2003).
• 2. Wightman R.M., May L.J. and Michael A.C., Anal. Chem., 60, 769A (1988).
• 3. Dayton M.A., Brown J.C., Stutts K.J. and Wightman R.M., Anal. Chem., 52, 946 (1980).
• 4. Wang H., Jin H. and Zhang H.S., Fresenius J. Anul. Chem., 365, 682 (1999).
• 5. Shafi N., J. Chem. Sco. Pak., 17, 103 (1995).
• 6. Guan C.L., Quyang J., Li Q.L., Liu B.H. and Baeyens W.R.G., Talanta, 50, 1197 (2000).
• 7. Salem F.B., J. Pharm. Sci., 9, 143 (1995).
• 8. Ye B.X., Xia P. and Lin L., Microchem. J., 64, 125 (2000).
• 9. Hawley M.D., Tatawawadi S. V., Piekarski S. and Adams R.N., J. Chem. Soc., 89, 447 (1967).
• 10. Forzani E.S., Rivas G.A. and Solis V.M., J. Electroanal. Chem., 435, 77 (1997).
• 11. Zhu M., Huang X.M., Li J. and Shen H.X., Anal. Chim. Acta, 357, 261 (1997).
• 12. Zen J.M., Ilangovan G. and Jou J.J., Anal. Chem., 71, 2797 (1999).
• 13. Gu H., Xu Y., Peng W., Li G. and Chen H.Y., Mikrochim. Acta, 146, 223 (2004).
• 14. Wang Q., Jiang N. and Li N.Q., Microchem. J., 68, 77 (2001).
• 15. Raj C.R., Okajima T. and Ohsaka T., J. Electroanal. Chem., 543, 127 (2003).
• 16. Chen W., Lin X., Luo H. and Huang L., Electroanal., 17, 941 (2005).
• 17. Zhao II., Zhang Y.Z. and Yuan Z.B, Anal. Chim. Acta, 441, 117 (2001).
• 18. Ren W., Luo H.Q. and Li N.B, Biosen. Bioelec., 21, 1086 (2006).
• 19. Yaunxi S., Baoxian Y., Yu W., Xiaorong T. and Xingyao Z.; Microchem. J., 58. 182 (1998).
• 20. Zhao H., Zhang Y.Z. and Yuan Z.B., Anal Chim. Acta, 454, 75 (2002).
• 21. Roy P.R., Okajima T. and Ohsaka T., Bioelectrochem., 59, 11 (2003).
• 22. Ohnuki Y., Ohsaka T., Matsuda H. and Oyama N., J. Electroanal. Chem., 158, 55 (1983).
• 23. Wang H.S., Li T.H., Jia W.L. and Xu H.Y., Biosens. Bioelectron., 22, 664 (2006).
• 24. Selvaraju T. and Ramaraj R., J. Appl. Electrochem., 33, 759 (2003).
• 25. Bouchta D., Izaoumen N., Zejli H., Kaoutit M. and Temsamani K.R., Biosens. Bioelectron., 20, 2228 (2005).
• 26. Kumar S.S., Mathijarasu J., Phani K.L.N, and Yegneraman V., J. Solid State Electrochem., 10,905 (2006).
• 27. Wang H.S., Li T.H., Jia W.L. and Xu H.Y., Biosens. Bioelectron., 22, 664 (2006).
• 28. Chahma M. and Hicks R.G., Can. J. Chem., 82, 1629 (2004).
• 29. Wang Q., Dong D. and Li N.Q., Bioelectrochem., 54, 169 (2001).
• 30. Niu L.M., Luo H.Q. and Li N.B., Microchim. Acta, 150, 87 (2005).
• 31. Selvaraju T. and Ramaraj R., Electrochem. Commun., 5, 667 (2003).
• 32. Sun Y.X., Ye B.X., Zhang W.M. and Zhou X.Y., Anal. Chim. Acta, 363, 75 (1998).
• 33. Ciolkowski E.L, Maness K.M., Cahill P.S., Whightman R.M., Evans D.H., Fosset B. and Amatore C., Anal. Chem., 66, 3611 (1994).
• 34. Zhang X.H. and Wang S.F., Sensors, 3, 61 (2003).