Study of speciation of selenium in animal tissues using high performance liquid chromatography with on-line detection by inductively coupled plasma mass spectrometry

• Autorzy: Kurek E. , Ruszczyńska A. , Wojciechowski M. , Czauderna M. , Bulska E.

Warianty tytułu

PL

Badanie specjalne selenu w tkankach zwierząt za pomocą wysokosprawnej chromatografii cieczowej z detekcją on-line z zastosowaniem indukcyjnie sprzężonej plazmy i spektrometrii mas

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

In this work the uptake of selenium by various organs of sheep fed a selenium-enriched diet was investigated. The highest concentration of accumulated selenium was found in liver. Therefore, the evaluation of selenium speciation was performed with the use of lyophilized liver samples. High performance liquid chromatography coupled with inductively coupled plasma mass speetrometry was used for this purpose. Extraction of selenium species was performed with water, sodium dodecyl sulfate (SDS), Driselase, as well as with the mixture of lipase and protease. In water and SDS extracts only SeO and SeO ions were detected. Selenomethionine and Se-methylselenocysteine were found in the solutions obtained alter enzymatic extraction. Within 20% of inorganic selenium compounds extracts, close to 7% of the original uptake of selenium remained as Se(VI) and the rest was found converted to Se(IV). The percentage contribution of selenium in the form of amino acid compounds obtained in enzymatic extraction was ca 40%; the rest was assumed to be incorporated into high molecular weight proteins.

PL

W pracy opisano badania dotyczące występowania selenu w narządach owiec karmionych paszą wzbogaconą selenem. Stwierdzono, że najwięcej selenu kumuluje się w wątrobie, stąd dalsze badania poświecone poznaniu specjacji selenu były prowadzone z wykorzystaniem liofilizowanych tkanek wątroby. W badaniach stosowano wysokosprawną chromatografię cieczową (HPLC) ze spektrometrią mas i plazmą indukcyjnie sprzężoną (ICP MS). Obecne w tkankach wątroby związki selenu były ekstrahowane za pomocą wody, związku powierzchniowo czynnego SDS, a także enzymów (lipazy i proteazy). Stwierdzono, że w przypadku ekstrakcji wodą oraz roztworem SDS były wymywane nieorganiczne związki selenu (SeO i SeO), natomiast w przypadku ekstrakcji enzymatycznej były wymywane również formy organiczne selenu (selenometionina i Se-metyloselenocysteina).Na podstawie wyników oznaczeń oszacowano, że około 20% całkowitej zawartości selenu obecnego w wątrobie to związki nieorganiczne, z czego prawie 7% występuje na stopniu utlenienia takim, jak selen obecny w paszy. Biorąc pod uwagę fakt, że około 40% całkowitego selenu jest wymywana w czasie ekstrakcji enzymatycznej, można założyć że pozostała część selenu jest związana z białkami.

Słowa kluczowe

EN

selenium; speciation; selenite(IV); selenite(VI); se-methylselenocysteine; selenomethionine; HPLC; ICP-MS; sheep; animal tissues

• Wydawca: Komitet Chemii Analitycznej PAN
• Czasopismo: Chemia Analityczna
• Rocznik: 2009
• Tom: Vol. 54, No. 1
• Strony: 43--57
• Opis fizyczny: Bibliogr. 25 poz.

Twórcy

autor

Kurek E.

autor

Ruszczyńska A.

autor

Wojciechowski M.

autor

Czauderna M.

autor

Bulska E.

• University of Warsaw, Faculty of Chemistry, ul. Pasteura 1, 02093 Warsaw, Poland,

Bibliografia

• 1. Berger M.M., Baines M., Chiolero R.L., Wardle C.A., Cayeux Ch. and Slienkin A., Nutrition Research, 21, 41 (2001).
• 2. Vinson J.A., Stella J.M. and Flangan T.J., Nutrition Research, 18, 735 (1998).
• 3. Tanguy S., Besse S., Ducros V., de Leiris J. and Boucher F., Nutrition Research, 23, 239 (2003).
• 4.Lipsky K., Zigeuner R.. Zischka M., Schips L., Oummer K., Rejak. P. and Humber G., Aduli Urology, 63,912(2004).
• 5.Sher L., Medical Hyporheses, 57, 480 (2001).
• 6.Sherrard J.C., Hunter A.K.. and Boyd P.W., Deep-Sea research f, 51, 491 (2004).
• 7.Lindemann T., Prange A., Neidhart B. and Dannecker W., Fresenius J. Anal. Cham.. 368, 214 (2000).
• 8.Wróbel K., Wróbel K., Kannamkumarath S.S., Caruso J.A., Wysocka I.A., Bulska E., Świątek J. and Wierzbicka M., FoodChem., 86, 617 (2004).
• 9.Bulska E., Wysocka I.A., Wierzbicka M., Proost K.. Janssens K. and Falkenberg G., Anal. Chem.. 78.7616(2006).
• 10 Kuehnelt D., Kienzl N., Traar P., Le N.H., Francesconi K.A. and Ochi T.. Anal. Biocmal. Chem., 383, 235 (2005).
• 11.Hinojosa Reyes L., Marchante-Gayon J.M.. Garcia Alonso J.I. and Sanz-Medel A., J. Anal. A t. Spectrom., 18, 1210(2003).
• 12.Torres M.A.. Yerdoy J., AlegriaA., BarberaR., Farre R. and LagardaM.J., Sci. Tata/Emiron., 228. 185(1999).
• 13.Huerta V.D., Fernandez Sanchez M.L. and Sanz-Medel A.. Anal. Bioanal. Chem.. 384,902 (2006).
• 14.Huerta V.D., Hinojosa Reyes L., Marchante-Gayon J.M., Fernandez Sanchez M.L. and Sanz-Medel A., J. Anal. At. Spectrom., 18,1243 (2003).
• 15.Czauderna M., Kowalczyk J., Niedźwiedzka K.M., Wąsowska [., Pastuszewska B.. Bulska E. and RuszczyńskaA., J. Animal FeedSci., 13, 353 (2004).
• 16.Czauderna M„ Kowalczyk J., Niedźwiedzka K.M., Wąsowska I., Pająk J.J.. Bulska E. and Ruszczyńska A., J. Animal FeedSci., 13.Suppl. 2, 105 (2004).
• 17.Czauderna M., Kowalczyk J., Bulska E., BoldiozarovaK., Niedźwiedzka K.M., RuszczyńskaA. and Leng L., J. Animal FeedSci.. U Suppl. l, 529 (2005).
• 18.Michalke B., Witte 11. and Schramel P., Anal. Bioanal. Chem., 372, 444 (2002).
• 19.CasiotC.. Szpunar.(., Łobinski R. and Potin-Gaulier M., J. Anal. At. Spectrom., 14, 645 (1999).
• 20.Pedersen G.A. and Larsen E.H., Fresenius J. Anal. Chem.. 358, 591 (1997).
• 21.Montes-Bayon M., Yanes E.G., Ponce de Leon C., Jayasimhulu K., Stalcup A., Shann J. and Caruso J.A., Anal. Chem., 74, 107 (2002). :
• 22.Harwood J.J. and Su W.. J. C/iromatogr. A, 788, 105 (1997).
• 23.Martinez-Bravo Y., Roig-Navarro A.F. and Lopez F.J., Hemandez F., J. Chromatogr. A, 926, 265 (2001).
• 24.Dernovics M., StefankaZ.S. and Fodor P., Anal. Bioanal. Chem., 372. 473 (2002).
• 25.Huerta V.D.. Fernandez Sanchez M.L. and Sanz-Medel A„ J. Anal. At. Spectrom., 19, 644 (2003).