Adsorptive stripping voltammetric determination of antibiotic drug clarithromycin in bulk form, pharmaceutical formulation and human urine

• Autorzy: Ghoneim M. M. , El-Attar M. A.

Warianty tytułu

PL

Oznaczanie antybiotyku klarytmomycyny w czystym produkcie, w preparatach farmaceutycznych i w płynach fizjologicznych, za pomocą stripingowej woltamperometrii adsorpcyjnej

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Based on the adsorptive behavior of clarithromycin onto the mercury electrode surface, simple and reliable linear-sweep (LS-AdCS) and square-wave adsorptive cathodic stripping (SW-AdCS) voltammetry procedures for quantification of bulk clarithromycin have been developed. The described electroanalytical procedures were successfully applied to determination of clarithromycin in a pharmaceutical formulation Klacid* tablets and in human urine. The procedure was free from sample derivatization or extraction of the drug prior to analysis, what makes the proposed approach especially advantageous compared to most of the reported chromatographic. spectrophotometric. and spectroflourimetric methods. The achieved limits of detection of bulk clarithromycin were 3 x 10^-8 mol L^-1 (22.41 ng mL^-1 and 1.5 x 10^-8 mol L^-1(11.2 ng mL^-1) for LS-AdCS and SW-AdCS, respectively. LOD values for clarithromycin in human urine analysis were 2 x 10^-1mol L^-1 (149.4 ng mL^-1) and 3 x 10^-8 mol L^-1 (22.41 ng mL^-1), respectively for LS-AdCS and SW-AdCS.

PL

Opracowano prostąi niezawodną metodę oznaczania klarytromycyny w substancji farmaceutycznej na elektrodach rtęciowych, z wykorzystaniem adsorpcy jnej stripingowej woltampero-metrii katodowej w wersji liniowej zmiany potencjałów oraz fali prostokątnej. Metodę zastosowano do oznaczania klarytromycyny w tabletkach „Klacid*" i w ludzkim moczu. Metoda nie wymaga stosowania derywatyzacji ani ekstrakcji, co czyni ją korzystniejszą w porównaniu do metod chromatograficznych, spektroskopowych i spektrofluorymetrycz-nych. Uzyskana granica wykrywalności klarytromycyny w substancji wynosiła 3 x 10~* mol L^-1 (22.41 ng mL^-1 and 1.5 x 10^-8 mol L^-1(11.2 ng mL^-1), odpowiednio dla wersji liniowej zmiany potencjału oraz prostokątnej fali. W moczu granica wykrywalności wynosiła odpowiedni 2 x 10^-1mol L^-1 (149.4 ng mL^-1) and 3 x 10^-8 mol L^-1 (22.41 ng mL^-1).

Słowa kluczowe

EN

clarithromycin formulation; human urine; quantification; stripping voltammetry

PL

klarytromycyna; mocz ludzki; kwantyfikacja; woltamperometria strippingowa

• Wydawca: Komitet Chemii Analitycznej PAN
• Czasopismo: Chemia Analityczna
• Rocznik: 2008
• Tom: Vol. 53, No. 5
• Strony: 689--702
• Opis fizyczny: Bibliogr. 30 poz.

Twórcy

autor

Ghoneim M. M.

autor

El-Attar M. A.

• Analytical Chemistry Research Unit, Chemistry Department, Faculty of Science, Tanta University, 31527 Tanta, Egypt Fax: [phone],

Bibliografia

• 1.Omura S. and Tanaka H.. in: Macrolide Antibiotics and Practice, [Omura S., Ed.], Academic Press, Orlando 1984, pp. 3.
• 2.Bahrami G. and Mohammadi B., J. Chromatogr. B, 850, 417 (2007).
• 3.Jiang Y., Wang J., Li H., Wang Y.W. and Gu J.K., J. Pharm. Biomed Anal., 43, 1460 (2007).
• 4.Li W., Ha H.J. and Zhao K., Talanta, 71, 385 - 390 (2007).
• 5.Li W.K., Rettig J., Jiang X.Y., Fransisco D.T. and Wang N.D., Biomed. Chromatogr., 20, 1242 (2006).
• 6.Abuin S., Codony R., Compano R., Granados M. and Prat M.D., J. Chromatogr. A, 1114, 73 (2006).
• 7.Amini H. and Ahmadiani A., J. Choromatogr. B, 817, 193 (2005).
• 8.LofTier D. and Ternes T.A., J. Chromatogr. A, 1021, 133 (2003).
• 9.Van Rooyen G.F., Smit M.J., Jager A.D., Hundt H.K.L., Swart K.J. and Hundt A.F., J. Choromatogr.B, 768, 223 (2002).
• 10.Niopas I. and Daftsios A.C.. Biomed, J. Choromatogr. B, 15, 507 (2001).
• 11.Choi S.J., Kim S.B, Lee H., Na D.H., Yoon Y.S., Lee S.S., Kim J.H., Lee K.C. and Lee H.S., Talantai 54,377 (2001).
• 12.Taninaka C., Ohtani H., Hanada E., Kotaki H., Sato H. and Iga I., J. Chromatogr. B, 738, 405 (2000).
• 13.Kees F., Spangler S. and Wellenhofer M., J. Choromatogr. A, 812, 287 (1998).
• 14.Torano J.S. and Guchelaar H.J., J. Choromatogr. B, 720, 89 (1998).
• 15.Abdelmageed O.H., J. AOAC Inter, 90, 364 (2007).
• 16.Li H.K. and Xiao J.K., Chin. J. Anal Chem., 33, 1327 (2005).
• 17.Rao J. V.L.N.S., Rao Y.S., Murthy T.K. and Sankar D.G., Asian J. Chem., 14,647(2002).
• 18.Rao Y.S., Kumar V.R. and Rao J.V.L.N.S., Asian J. Chem., 14, 1791 (2002).
• 19.Khashaba P.Y., J. Pharm. Biomed. Anal, 27, 923 (2002).
• 20.Ivic M.LA., Petrovic S.D and Mijin D.Z., J. Serbian Chem. Soc., 72. 1427 (2007).
• 21.Ivic M.LA., Petrovic S.D., Vonmoos F., Mijin D.Z., Zivkovic P.M., Drljevic K.M., Electrchem.Commun., 9, 1643 (2007).
• 22.Dong S.Y, Han X.F. and Huang T.L., Acta Chimica Sinica 62, 1039 (2007).
• 23.Dong S.Y., Xue C.X. and Huang T.L., Chinese Chem. Lett., !8, 726 (2007).
• 24.Ma H.L., Xu M.T. and Song J.F, Acta Pharm. Sinica, 39, 821 (2004)
• 25.Ma H.L., Xu M.T. and Song J.F, Part B: Chem. Anal, 41, 156 (2005).
• 26.Laviron E.A., J. Electroanal Chem., 112, 11 (1980).
• 27.Miller J.C. and Miller J. N., in: Statistics for Analytical Chemistry, 4th edn, Ellis-Howood, New York, 1984, p. 115.
• 28.The USA Pharmacopoeia, The National Formulary, Convention Inc. USP 26, 2003, p. 2442.
• 29.Ewing G.W., in: Instrumental Methods of Chemical Analysis, 5th edn, Lippincott-Raven, Philadelphia, 1995. p. 464.
• 30.Christian G.D., Analytical Chemistry, 5th edn, John Willey and Sons Inc., USA 1994, p. 36.