Selective solid-phase extraction of Hg(II) using silica gel surface : imprinting technique

• Autorzy: Zheng H. , Geng T. , Hu L.

Warianty tytułu

PL

Selektywna ekstrakcja rtęci(II) do fazy stałej z użyciem techniki jonowo dopasowanej powierzchni żelu krzemionkowego

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

A new ion-imprinted amino-functionalized silica gel sorbent was synthesized by surface-imprinting technique for preconcentration and separation of Hg(II) prior to its determination by inductively coupled plasma optical emission spectrometry (ICP—OES). Compared to the traditional solid sorbents and non-imprinted polymer particles, the ion-imprinted polymers (IlPs) have higher adsorption capacity and selectivity for Hg(II). The maximum static adsorption capacity of the imprinted and non-imprinted sorbent for Hg(II) was 29.89 mg g^-1 and 11.21 mg g^-1, respectively. The highest selectivity coefficient for Hg(II) in the presence of Zn(II) exceeded 230. The detection limit (3a) of the method was 0.25 μg L^-1. The relative standard deviation of the method was 2.5% for eight replicate determinations of 10 ug of Hg²⁺ in 200 mL-in-volume water sample. The procedure was validated byperforming the analysis of the certified river sediment sample (GBW 08603, China) using the standard addition method. The developed method was also successfully applied to the determination of trace mercury in Chinese traditional medicine and water samples with satisfactory results.

PL

Stosując technikę modyfikowania powierzchni grupami aminowymi otrzymano nowy, jonowo dopasowany żel krzemionkowy służący do zatężania i oddzielania Hg(II) przed jej oznaczeniem za pomocą optycznej spektrometrii emisyjnej ze wzbudzeniem w plazmie indukcyjnie sprzężonej (1CP—OES). W porównaniu z tradycyjnymi, stałymi sorbentami i niemodyfikowanymi polimerami, polimery dopasowane jonowo (ion-imprinted polymers - IIPs) mają większą pojemność adsorpcyjną oraz selektywność względem Hg(II). Maksymalna statyczna pojemność adsorpcyjną Hg(Il) w przypadku sorbentu modyfikowanego i niemodyfikowanego wynosiła odpowiednio 29,89 mg gg^-1i 11,21 mg gg^-1. Najwyższy współczynnik selekty wności Hg(lł) względem Zn(II) przekraczał 230. Granica wykrywalności (3a) wynosiła 0.25 μg L^-1. Względne odchylenie standardowe, obliczone z 8 oznaczeń próbki wody zawierającej w 200 mL lO μg HgHg²⁺, wynosiło 2,5%. Metodę zwalidowano wykonując analizę certyfikowanych próbek osadów rzecznych (GBW 08603, Chiny) metodą dodatku wzorca. Opracowaną metodę z powodzeniem zastosowano do oznaczania śladów rtęci w tradycyjnej chińskiej medycynie oraz w próbkach wody.

Słowa kluczowe

EN

ion imprinted polymers; solid-phase extraction; surface imprinting technique; preconcentration; Hg(II); ICP-OES; inductively coupled plasma optical emission spectrometry

PL

polimer dopasowany jonowo; ekstrakcja do fazy stałej; technika dopasowanej powierzchni; zatężanie; Hg(II); spektrometria emisyjna optyczna; plazma indukcyjnie sprzężona

• Wydawca: Komitet Chemii Analitycznej PAN
• Czasopismo: Chemia Analityczna
• Rocznik: 2008
• Tom: Vol. 53, No. 5
• Strony: 673--687
• Opis fizyczny: Bibliogr. 34 poz.

Twórcy

autor

Zheng H.

autor

Geng T.

autor

Hu L.

• College of Chemistry, ChongQuing Normal University, ChongQuing 400047, P.R. China Fax: [phone],

Bibliografia

• 1.Hultberg B., Andersson A. and Isaksson A., Toxicology, 126 (3) , 203 (1998).
• 2.IARC Monographs on the evaluation of carcinogenic risks to humans. International Agency for Research on Cancer, Lyon, France, 58, 41 (1993).
• 3.Manahan S.E., Environmental Chemistry, 6th edn, Lewis Publishers, Ann Arbor, 1994, p. 185.
• 4.Hayes R.B., Cancer Causes Control, 8 , 371 ( 1997).
• 5.Liu C.H., Li Y.L., Zhang D.G., Zhu H.G., Yang Y., Chin. J. Soil Sci 34 (4), 326 (2003).
• 6.Tao G., Willie S.N. and Sturqeon R.E., Analyst, 123, 1215 (1998).
• 7.Li Y., Jiang Y., Yan X.P. and Ni Z.M., Environ. Sci. Technol., 36, 4886 (2002).
• 8.Tirez K., Beutels F., Brusten W., Noten B. and Brucker N.De, Anal Bioanal. Chem., 374, 990 (2002).
• 9.Karanessios V., Bateman K.P. and Spiers G.A., Spectrochim. Acta Part B, 49, 867 ( 1994).
• 10.Snell J.P., Stewart I.I., Sturgeon R.E. and Freeh W., J. Anal. At. Spectrom., 15, 1540 (2000)
• 11.Veselova I.A. and Shekhotsova T.N., Anal. Chim. Acta, 151, 392 (1999).
• 12.Faller C., N.Y. Stojko, Henze G. and Brainina K.Z., Anal. Chim. Acta, 195, 396 (1999).
• 13.Łobiniski R. and Marczenko Z., Cr it. Rev. Anal Chem., 55, 23 (1992).
• 14.Howard A.G, Analyst, 112, 159(1987).
• 15.Junker-Bucheit A. and Witzenbacher M., J. Chromatogr. A, 737, 67 ( 1996).
• 16.Pyrzynska K. and Trojanowicz M., Crit. Rev. Anal. Chem., 29, 313 (1999).
• 17.Mary Gladis J. and Prasada Rao T., Anal. Lett., 35, 501 (2002).
• 18.Poole C.F., Trends Anal Chem., 22, 362 (2003).
• 19.Vieira E.F.S, Simony J.A. and Airoldi C., J. Mater. Chem., 7, 2249 (1997).
• 20.Haupt K., Analyst, 126, 747 (2001).
• 21.Haupt K. and Mosbach K., Chem. Rev., 100, 2495 (2000).
• 22.Tsukaghoshi K., Yu K.Y., Maeda M. and Takagi M., Bull. Chem. Soc. Jpn., 66, 114 (1993).
• 23.Garcia R., Pinel C., Madic C. and Lemaire M., Tetrahedron Lett., 39, 8651 (1998).
• 24.Bae S.Y., Southard G.L. and Murray G.M., Anal. Chim. Acta, 397, 173 (1999).
• 25.Sobhi D., Prem Babu E.J. and Prasada Rao T., Talanta, 65, 441 (2005).
• 26.Nishide H. and Tsuchida E., Makromol Chem., 177, 2295 (1976).
• 27.Yu K.Y., Tsukaghosi K., Maeda M. and Takagi M., Anal. Sci, 8, 701 (1992).
• 28.Nieholls I.A. and Rosengren J.P., Bioseparation, 10, 301 (2001).
• 29.Laxen D.P.H. and Hanison KM., Anal. Chem., 53, 345 (1981).
• 30.Guo Y.. Din B., Liu Y.. Chang X., Meng S. and Tian M., Anal. Chim. Acta.. 504. 319 (2004).
• 31.Zheng H., Chang X.J., Lian N., Wang S., He Q. and Lai S.J., Annali di Chimica, 95, 601 (2005).
• 32.Miranda Carlos E.S, Reis B.F, Baccan N., Packer A.P. and Giné M.F .,Anal. Chim. Acta, 453, 301 (2002).
• 33.Fang G.Z., Tan J. and Yan X.P., Anal. Chem., 77, 1734 (2005).
• 34.Aue W.A. and Hastings C.R., J. Chromatogr. A, 42, 319 (1969).