Determination of chlorophenols and their photodegradation products in aqueous solutions using liquid-liquid extraction and solid phase microextraction : a comparison

Czaplicka, M.; Mańko, T.; Wypych, J.

Artykuł - szczegóły

Tytuł artykułu

Determination of chlorophenols and their photodegradation products in aqueous solutions using liquid-liquid extraction and solid phase microextraction : a comparison

Autorzy

Czaplicka M. , Mańko T. , Wypych J.

Wybrane pełne teksty z tego czasopisma

http://beta.chem.uw.edu.pl/chemanal/

Identyfikatory

Warianty tytułu

Oznaczanie chlorofenoli i produktów ich fotorozkładu w wodnych roztworach z zastosowaniem ekstrakcji ciecz-ciecz oraz mikroekstrakcji do fazy stałej : porównanie obu metod

Języki publikacji

Abstrakty

A comparison of two methods for the separation of chlorophenols and hydroxybcnzenes in aquatic environment has been performed. The first method (A) was liquid-liquid extraction (LLE) with methylcne chloride as an extracting solvent. The second method (method B) was solid phase microextraction (SPME). Polyacrylate fibre (PA) was applied for the separation of chlorophenols and their photodegradation products. In both cases quantitative analyses were performed by GC-MS. Analytical conditions for each method were established. Recovery, standard deviation, and limit of detection (LOD) for each method were also determined. The obtained results have shown that LLE is a useful precon-ccntration method for the determination of chlorophenols in aqueous samples. However, it is inappropriate for the determination of hydroxybenzenes and chloroquinones. This study has demonstrated that SPME is a useful technique for trace analysis of chlorophenols and hydroxybenzenes in water. It offers LODs in the range 3.9-22.5 ng L^-1 for chlorophenols and 0.46-1.21 μg L^-1 for hydroxybenzenes.

Porównano dwie metody izolacji chlorofenoli i produktów ich fotorozkladu w próbkach wody. W pierwszej metodzie (metoda A) do izolacji oznaczanych związków zastosowano ekstrakcję chlorkiem metylenu (ekstrakcja ciecz-ciecz). W drugiej metodzie (metoda B) do oznaczania analitów zastosowano mikroekstrakcję do fazy stałej (SPME) z wykorzystaniem włókna PA. W obu przypadkach oznaczanie ilościowe przeprowadzono przy użyciu chromatografu gazowego sprzężonego ze spektrometrem mas. Dla każdej z zastosowanych metod określono parametry charakterystyczne takie jak: wartości odzysku analitów. odchylenie standardowe i granice wykrywalności (LOD). Uzyskane wyniki wykazały, że ekstrakcja ciecz-ciecz rnoże być stosowana do izolacji chloro fenoli z próbek wody. Metoda ta jest jednak rnało przydatna do wydzielania hydroksybensenów i chlorochinonów. W pracy wykazano, że zastosowanie techniki SPME umożliwia równoczesne oznaczanie chiorofenoli i hydroksybenzenów w środowisku wodnym. Granica oznaczalności metody dla chiorofenoli wahała się w przedziale 3.9-22.5 ng L^-1 w zależności od związku oraz w przedziale 0.46-1.21 μg L^-1 w przypadku hydroksybenzenów i chlorochinonów.

Słowa kluczowe

chlorophenols hydroxybenzenes solid phase microextraction liquid-liquid extraction GC-MS

chlorofenol hydroksybenzen mikroekstrakcja do fazy stałej ekstrakcja ciecz-ciecz chromatografia gazowa spektrometria masowa

Wydawca

Komitet Chemii Analitycznej PAN

Czasopismo

Chemia Analityczna

Rocznik

2005

Tom

Vol. 50, No. 5

Strony

887--896

Opis fizyczny

Bibliogr. 41 poz.

Twórcy

autor

Czaplicka M.

mariannac@imn.gliwice.pl

Institute of Non-Ferrous Metals, ul. Sowińskiego 5, 44-100 Gliwice, Poland

autor

Mańko T.

Institute for Ecology of Industrial Areas, ul. Kossutha 6, 40-844 Katowice, Poland

autor

Wypych J.

Institute for Ecology of Industrial Areas, ul. Kossutha 6, 40-844 Katowice, Poland

Bibliografia

1. Trojanowicz M., Chudzik A. and Bryl-Sandewska T., J. Radioanal. and Nucl. Chem., 224, 131 (1997).
2. Peńalver A., Pocurull E., Borrull F. and Marcé R.M., J. Chromatogr. A, 953, 79 (2002).
3. Wada M., Kinoshita S., Itayama Y., Kuroda N. and Nakashima K., J. Chromatogr. B, 721, 179 (1999).
4. Santos F.J., Jáurequi O., Pinto F.J. and Galceran M.T., J. Chromatogr. A, 823, 249 (1998).
5. Hirvonen A., Trapido M., Hentunen J. and Tarhanen J., Chemosphere, 41, 1211 (2000).
6. Ilisz I., Dombi A., Mogyorósi K., Farkas A. and Dékány I., Appl. Catal. B: Environ., 1214, 1 (2002).
7. Lee M.-R., Yeh Y.-C., Hsiang W.-S. and Chen C.-C., J. Chromatogr. B, 707, 91 (1998).
8. Gatti R., Gioia M.G., Di Pietra A.M. and Cavrini V., Anal. Chim. Acta, 447, 89 (2001).
9. Doong R.-A. and Liao P.-L., J. Chromatogr. A, 918, 177 (2001).
10. Bagheri H. and Saraji M., J. Chromatogr. A, 910, 87 (2001).
11. Czaplicka M., Chromatographia, 53, S-470 (2001).
12. Sojo L.E. and Djauhari J., J. Chromatogr. A, 840, 21 (1999).
13. Crespín M.A., Cárdenas S., Gallego M. and Valcárcel M., J. Chromatogr. A, 830, 165 (1999).
14. Czaplicka M., Fresenius Environ. Bull., 11, 91 (2002).
15. Takeda S., Tanaka Y., Yamane M., Siroma Z., Wakida S, Otsuka K. and Terabe S., J. Chromatogr. A, 924, 415 (2001).
16. Rossi A., Tournebize A. and Boule P., J. Photochem. Photobiol. A: Chemistry, 85, 213 (1995).
17. Fang X., HeY., Liu J. and Wu J., Radiation Physics and Chemistry, 53, 411 (1998).
18. Kang N., Lee D.S. and Yoon J., Chemosphere, 47, 915 (2002).
19. Ozoemena K., Kuznetsova N. and Nyokong T., J. Mol. Catal. A, 176, 29 (2001).
20. Buszewski B. and Ligor M., Chem. Anal (Warsaw), 46, 215 (2001).
21. Pawliszyn J., Solid Phase Microextraction: Theory and Practice, Wiley-VCH, Toronto, 1997.
22. Applications of Solid Phase Microextraction, [Pawliszyn J., Ed.], The Royal Society of Chemistry, Cambridge, 1999.
23. Buchholz K.D. and Pawliszyn J., Anal. Chem., 66, 160 (1994).
24. Namieśnik J. and Wardencki W., J. High Resolut. Chromatogr., 23, 297 (2000).
25. Barták P. and Ćap L., J. Chromatogr. A, 767, 171 (1997).
26. Zhang Z., Yang M. and Pawliszyn J., Anal. Chem., 66, 844A (1994).
27. Jávorszky E., Molnár E., Torkos K. and Borossay J., Chromatographia, 51, 328 (2000).
28. Mac Gillivray B. and Pawliszyn J., J. Chromatogr. Sci., 32, 317 (1994).
29. Morcillo Y., Cai Y. and Bayona J.M., J. High Resol. Chromatogr., 18, 767 (1996).
30. Wypych J. and Mańko T., Chem. Anal. (Warsaw), 47, 507 (2002).
31. Mölder M., Schrader S., Franck U. and Popp P., Fresenius J. Anal. Chem., 357, 223 (1997).
32. Sarrión M.N., Santos F.J. and Galceran M.T., J. Chromatogr. A, 947, 155 (2002).
33. Chong S.L., Wang D., Hayes J.D., Wilhite B.W. and Malik A., Anal. Chem., 69, 326 (1997).
34. Zeng Z.R., Qiu W.L. and Huang Z.F., Anal. Chem., 73, 2429 (2001).
35. Li X., Zeng Z. and Zhou J., Anal. Chim. Acta, 509, 27 (2004).
36. Helling C.S. and Bollag J.M., Anal. Biochem., 24, 34 (1968).
37. Zhu M. and Xiao P., Phytother. Res., 5, 239 (1991).
38. Xiong F., Yuan L. and Lu C., Chin, J. Chromatogr., 11, 246 (1993).
39. He C., Cui H. and Zhao G., Anal. Chim. Acta, 351, 241 (1997).
40. Waidyanatha S., Rothman N., Fustinoni S., Smith M.T., Hayes R.B., Bechtold W., Dosemeci M., Guilan L., Yin S. and Rappaport S.M., Carcinogenesis, 22, 279 (2001).
41. Šeduikiene I., Vičkačkaite V. and Kazlauskas R., Chem. Anal. (Warsaw), 45, 835 (2000).

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.baztech-article-BPP1-0058-0026