A comparison of electrothermal atomic absorption spectrometry and inductively coupled plasma mass spectrometry for the determination of selenium in garlic

Wysocka, I. A.; Bulska, E.; Wróbel, K.; Wróbel, K.

Artykuł - szczegóły

Tytuł artykułu

A comparison of electrothermal atomic absorption spectrometry and inductively coupled plasma mass spectrometry for the determination of selenium in garlic

Autorzy

Wysocka I. A. , Bulska E. , Wróbel K. , Wróbel K.

Wybrane pełne teksty z tego czasopisma

http://beta.chem.uw.edu.pl/chemanal/

Identyfikatory

Warianty tytułu

Porównanie elektrotermicznej atomowej spektrometrii absorpcyjnej i spektrometrii mas z indukcyjnie sprzężoną plazmą w oznaczaniu selenu w czosnku

Języki publikacji

Abstrakty

Electrothermal atomic absorption spectrometry (ET AAS) and inductively coupled plasma mass spectrometry (ICP MS) have been used for the determination of the total concentration of selenium in garlic after microwave digestion. Studied garlic samples originated from two different geographical regions differing in respect of selenium content in soil: from Eastern Poland, where the soil is poor in selenium, and from Irapuato in Mexico, where the soil is rich in selenium. For both techniques used, the quantification was accomplished by the external standard addition and the regression coefficients were above 0.999. Spectral interferences were controlled using a background correction of Zeeman's effect and applying rhodium as a chemical modifier. For ICP MS measurements the level of selenium isotopes 78 and 82 were monitored, and 10 ug (-1) rhodium solution was used for internal standardization. Under the optimum experimental conditions, the obtained detection limits were 0.6 ug L(-1) for ET AAS and 0.05 ug (-1) for ICP MS. For both methods the precision of the procedure was in the range of 3-7%. The results obtained from both methods are in a good agreement, which confirms the accuracy of the analysis. The contents of selenium in garlic grown in two geographical regions were significantly different.

Atomową spektrometrię absorpcyjną ze wzbudzeniem elektrotermicznym (ET A AS) i spektrometrią mas z plazmą sprzężoną indukcyjnie (ICP MS) zastosowano do oznaczenia całkowitej zawartości selenu w próbkach czosnku w roztworach po mineralizacji w zamkniętym systemie mikrofalowym. Badane próbki czosnku pochodziły z dwóch regionów geograficznych różniących się zawartością selenu w glebie: ze Wschodniej Polski, gdzie gleba jest uboga w selen i z Irapuato w Meksyku, gdzie gleba jest bogata w selen. Ilościowe oznaczenia przeprowadzono metodą dodatku wzorca. Uzyskane współczynniki korelacji, dla obu metod, były powyżej 0.999. W pomiarach ET AAS interferencje spektralne eliminowano za pomocą korekcji tła z wykorzystaniem efektu Zeemana i użyciem modyfikatora rodowego. W pomiarach ICP MS monitorowano izotopy selenu 78 i 82. Dodatkowo zastosowano roztwór rodu o stężeniu l 0 ug L(-1) jako wzorzec wewnętrzny. W optymalnych warunkach uzyskano następujące granice wykrywalności: 0.6 ug L(-1) dla ET AAS i 0.05 ug L(-1) dla ICP MS. Precyzja procedury analitycznej zawierała się w przedziale od 3 do 7%. W przypadku obu metod otrzymano zgodne wyniki. Zawartości selenu w czosnkach pochodzących z dwóch regionów geograficznych różniły się znacznie.

Słowa kluczowe

selenium electrothermal atomic absorption spectrometry inductively coupled plasma mass spectrometry garlic

selen spektrometria atomowa absorpcyjna elektrotermiczna wzbudzenie elektrotermiczne czosnek

Wydawca

Komitet Chemii Analitycznej PAN

Czasopismo

Chemia Analityczna

Rocznik

2003

Tom

Vol. 48, No. 6

Strony

919--929

Opis fizyczny

Bibliogr. 41 poz.

Twórcy

autor

Wysocka I. A.

Faculty of Chemistry, Warsaw University, ul. Pasteura 1, Warsaw, Poland

autor

Bulska E.

ebulska@chem.uw.edu.pl

Faculty of Chemistry, Warsaw University, ul. Pasteura 1, Warsaw, Poland

autor

Wróbel K.

Instituto de Invetigaciones Cientificas, Universidad de Guanajuato, L. de Retana No 5, 36000 Guanajuato, Mexico

autor

Wróbel K.

Instituto de Invetigaciones Cientificas, Universidad de Guanajuato, L. de Retana No 5, 36000 Guanajuato, Mexico

Bibliografia

1. Robb D.A. and Pierpoint W.S., Annual Proceedings of The Phytochemical Society of Europe, No 21, (1983).
2. Zayed A., Lytle C.M. and Terry N., Planta, 206, 284, (1998).
3. Frankenberger W.T. and Engberg R. A., Environmental Chemistry of Selenium, Marcel Dekker, Inc., 1998.
4. Clark L.C., Combs G.F. Jr, Turnbull B.W., Slate E.H., Chalker D.K., Chow J., Davis L.S., Glover R.A., Graham G.F., Gross E.G., Krongrad A., Lesher J.L. Jr, Park H.K., Sanders B.B. Jr, Smith C.L. and Taylor J.R., JAMA, 276, 1957 (1996).
5. El-Bayoumy K., Mutation Research, 475, 123 (2001).
6. Ganther H.E. and Lawrance J.R., Tetrahedron, 53, 12299 (1997).
7. Prohaska Ch., Stefan I., Pomazal K. and Törvényi A., J. Anal. At. Spectrom., 15, 97 (2000).
8. Gammelgaard B. and Larsen E.H., Talanta, 47, 503 (1998).
9. Slavin W., Graphite Furnace AAS. A Source Book, Perkin-Elmer Co, Spectroscopy Division, Norwalk, CT 1991, p. 132.
10. Becker-Ross H., Florek S. and Heitmann U., J. Anal. At. Spectrom., 15, 137 (2000).
11. Sabe R., Rubio R. and Garcia-Beltran L., Anal. Chim Acta, 419, 121 (2000).
12. Correira P.R.M., de Oliviera E. and Oliviera P.V., Talanta, 57, 527 (2002).
13. Lima E.C., Krug F.J. and Jackson K.W., Spectrochim. Acta, Part B, 53, 1791 (1996).
14. Ni Zhe-ming, Rao Zhu and Li Mei, Anal. Chim. Acta., 334, 177 (1996).
15. Volynsky A.B., Krivan V. and Tikhomirov S.V., Spectrochim. Acta, Part B, 51, 1253 (1996).
16. Li M., Ni Z.-M. and Rao Z., Spectrochim. Acta, Part B, 53, 1381 (1998).
17. Arslan Z., Ertas N., Tyson J.F., Uden P.C. and Denoyer E.D., Fresenius J. Anal. Chem., 366, 273 (2000).
18. Salomon S., Jenne V. and Hoenig M., Talanta, 57, 157 (2002).
19. Krushevska A., Kotrebai M., Lásztit A.A., Barnes R.M. and Amarasiriwardena D., Fresenius J. Anal. Chem., 355, 793 (1996).
20. Olivas R.M., Quétel C.R. and Donard F.X., J. Anal. At. Spectrom., 10, 865 (1995).
21. Vanhoe H., Goossens J., Moens L. and Dams R., J. Anal. At. Spectrom., 9, 177 (1994).
22. Tan S.H. and Horlick G., Appl. Spectrosc., 40, 45 (1986).
23. Feldmann I., Jakubowski N., Stuewer D. and Thomas C., J. Anal. At. Spectrom., 15, 371 (2000).
24. Bendahl L., Gammelgaard B., Jons O., Farver O. and Hansen S.H., J. Anal. At. Spectrom., 16, 38 (2001).
25. Luo S.K. and Berndt H., Fresenius J. Anal. Chem., 360, 545 (1998).
26. Broekaert J.A.C., Fresenius J. Anal. Chem., 368, 15 (2000).
27. Kirlew P.W., Castillano M.T.M. and Caruso J.A., Spectrochim. Acta Part B, 53, 221 (1998).
28. B'Hymer C., Sutton K.L. and Caruso J.A., J. Anal. At. Spectrom., 13, 85 (1998).
29. Munoz Olivas R. and Donard O.F.X., Talanta, 45, 1023 (1998).
30. Santosa S.J., Mokudai H. and Tanaka S., J. Anal. At. Spectrom., 12, 409 (1997).
31. Bowman J., Fairman B. and Catterick T., J. Anal. At. Spectrom., 12, 313 (1997).
32. Feldmann I., Tittes W., Jakubowski N. and Stuewer D., J. Anal. At. Spectrom., 9, 1007 (1994).
33. Reed N.M., cairns R. O. and Hutton R.C., J. Anal. At. Spectrom., 9, 881 (1994).
34. Townsend A.S., Fresenius, J. Anal. Chem., 364, 521 (1999).
35. Alves L.C., Wiederin D.R. and Houk R.S., Anal. Chem., 64, 1164 (1992).
36. Thomas R., Spectroscopy, 17, 42 (2002).
37. Gammelgaard B. and Jřns O., J. Anal. At. Spectrom., 12, 465 (1997).
38. Richter R.C., Swami K., Chace S. and Husain L., Fresenius J. Anal. Chem., 361, 168 (1998).
39. Nixon D.E. and Moyer T. P., Spectrochim. Acta, Part B, 51, 13 (1996).
40. Gammelgaard B. and Jřns O., J. Anal. At. Spectrom., 15, 499 (2000).
41. Wróbel K., Lopez de Alba P.L., Wróbel K., Lopez Martinez L. and Pantoja Villagomez L.E., Aquatic Ecosystem Health & Management, 4, 209 (2001).

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.baztech-article-BPP1-0037-0062