The analysis of heterocyclic aromatic amines using high performance liquid chromatography

• Autorzy: Warzecha L. , Stróżyk M. , Janoszka B. , Błaszczyk U. , Bodzek D.

Warianty tytułu

PL

Analiza heterocyklicznych amin aromatycznych za pomocą HPLC

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The optimum conditions for reversed-phase high performance liquid chromatography analysis of five mutagenic and carcinogenic heterocyclic aromatic amines (aminoazaarenes) were described. The following aminoazaarenes were chosen for the determination: 2-amine-3,4-dimethylimidazo[4,5-fjquinoline, 2-amine-3-methylimidazo[4,5-f]quinoline, 2-amine-3,4,8-tnmethylimidazo[4,5-f]quinoxaline, 2-amine-3,8-dimethylimidazo[4,5-f]quinoxaIineand 2-amine-1-methyl-6-phenylimidazo[4,5-b]pyridine. Three analytical columns: Synchropak RP-8, Vydac C(18)-300 and TSK gel ODS 80-T(M') as well as several elution systems were tested using isocratic and gradient elution. The columns, mobile phases and elution conditions were assessed by comparing retention factor, separation factor and resolution values. It is demonstrated that the most selective separation of five aminoazaarenes tested was achieved with a TSK gel ODS 80-TM column equipped with a Supelguard Hypersil ODS precolumn and using the triethylamine—phosphate buffer (pH = 3.3) / acetonitrile as the mobile phase. The following gradient elution profile was applied: 5% acetonitrile and 95% buffer for 2 min initially, then linear increase to 25% acetonitrile within 20 min, then to 55% acetonitrile within 10 min and, finally, 55% acetonitrile for 20 min. Use of chemically bonded columns C(8) and C(18) did not yield separation of aminoazaarenes as good as in the case of TSK'gel column. For these two types of columns the best separation was achieved using a procedure involving isocratic elution with mobile phase consisting of 10% acetoni-trile in triethylamine-phosphate buffer (pH = 3.2). The selected optimum conditions of HPLC analysis by use of Vydac C(18)-300 and TSK-gel ODS 80-T(M) columns were applied for qualitative determination of aminoazaarenes fractions isolated from two meat samples: charcoal grilled chicken breast and pork fillet. In both samples the presence of five tested compounds was confirmed.

PL

Przedstawiono wyniki doboru optymalnych warunków analizy metodą RP-HPLC pięciu muta- i kancerogennych wielopierścieniowych amin aromatycznych (aminoazaarenów): 2-amino-3,4-dimetyloimidazo[4,5-fJchinoliny, 2-amino-3-metyloimidazo[4.5-f]chinoliny, 2-amino-3,4,8-trinietyloimidazo[4.5-f]chinoksaliny, 2-amino-3,8-dimetyloimidazo -[4,5-f]chinoksaliny i 2-aniino-l-metylo-6-fenyIoimiclazof4,5-b]pirydyny. Przetestowano trzy kolumny analityczne: Synchropak RP-8, Yydac C|S-300 i TSK-gel ODS 80-T(M); zbadano też elucję w warunkach izokratycznych i gradientowych. Zastosowane ukJady pomiarowe scharakteryzowano wyznaczając współczynniki retencji i rozdziału oraz rozdzielczość. Najlepszy rozdział mieszaniny pięciu wybranych aminoazaarenów uzyskano przy użyciu kolumny TSK-gel ODS 80-T(M) z przedkolumną Supelguard Hypersil ODS, stosując jako fazę ruchomą bufor fosforanowo-trietyloaminowy (pH = 3.3) i acetonitryl w gradiencie: 5%acetonitrylu i 95% buforu przez 2 min, następnie liniowy wzrost do 25% acetonitrylu w ciągu 20 min, kolejno do 55% acetonitrylu w czasie 10 min i ostatecznie 55% acetonitrylu przez 20 min. Użycie kolumn z fazą chemicznie związaną (C(8) i C(18) nie dało tak dobrych wyników rozdzieleniajak użycie kolumny TSK-gel. Dla tych dwóch kolumn najlepszy rozdział uzyskano stosując jako fazę ruchomą roztwór 10% acetonitrylu w buforze fosforanowo-trietyloaminowym (pH = 3.3) i prowadząc elucję w warunkach izokratycznych. Wyznaczone optymalne warunki analizy przy użyciu kolumn: Yydac C(18)-300 oraz TSK-gel ODS 80-T(M) zastosowano do identyfikowania frakcji aminoazaarenów wyodrębnionych z dwóch próbek mięsa tj. grilowanych piersi z kurczaka oraz grilowanej polędwicy wieprzowej. W obydwu próbkach stwierdzono obecność badanych aminoazaarenów.

Słowa kluczowe

EN

HPLC; aminoazarenes; heterocyclic aromatic amines

PL

chromatografia cieczowa wysokosprawna; aminoazareny; aminy aromatyczne heterocykliczne

• Wydawca: Komitet Chemii Analitycznej PAN
• Czasopismo: Chemia Analityczna
• Rocznik: 2002
• Tom: Vol. 47, No. 4
• Strony: 539--557
• Opis fizyczny: Bibliogr. 24 poz.

Twórcy

autor

Warzecha L.

• Medical University of Silesia, Department of Chemistry, ul. Jordana 19, 41-808 Zabrze, Poland

autor

Stróżyk M.

• Department of Molecular Biology, Centre of Oncology M. Skłodowska-Curie Institute, Wybrzeże Armii Krajowej 15, 44-101 Gliwice, Poland

autor

Janoszka B.

• Medical University of Silesia, Department of Chemistry, ul. Jordana 19, 41-808 Zabrze, Poland

autor

Błaszczyk U.

• Medical University of Silesia, Department of Biochemistry, ul. Jordana 19, 41-808 Zabrze, Poland

autor

Bodzek D.

• Medical University of Silesia, Department of Chemistry, ul. Jordana 19, 41-808 Zabrze, Poland

Bibliografia

• 1. Jägerstad M., Skog K., Grivas S. and Olsson K., Mutat. Res., 259, 219 (1991).
• 2. Sugimura T., Mutat. Res., 150, 33 (1985).
• 3. Stavric B., Fd. Chem. Toxic., 32, 997 (1994).
• 4. Skog K., Fd. Chem. Toxic., 31, 655 (1993).
• 5. Skog K., Knize M.G., Jägerstad M. and Felton J.S., Mutat. Res., 268, 191 (1992).
• 6. Kato T., Harashima T., Moriya N., Kukigawa K. and Haramoto K., Carcinogenesis, 17, 2469 (1996).
• 7. Turesky R. J., Constabl A., Fay L. B. and Guengerich F. P., Cancer Lett., 143, 109 (1999).
• 8. Turesky R.J. and Markovic J., Carcinogenesis, 16, 2275 (1995).
• 9. Yamashita K., Umemoto A., Grivas S., Kato S. and Sugimura T., Mutagenesis, 3, 515 (1988). 10. Gross G.A., Turesky R.J., Fay L.B., Stillwell W.G., Skipper P.L. and Tannenbaum S., Carcinogenesis, 14, 2313 (1993).
• 11. Galceran M.T., Pais P. and Puignou L., J. Chromatogr. A., 719, 203 (1996).
• 12. Knize M.G., Salmon C.D., Hopmans E.C. and Felton J.S., J. Chromatogr. A., 763, 179 (1997).
• 13. Gross G.A. and Grüter A., J. Chromatogr., 592, 271 (1992).
• 14. Skog K., Steineck G., Augustsson K. and Jägerstad M., Carcinogenesis, 16, 861 (1995).
• 15. Johansson M., Fredholm L., Bjerne J. and Jägerstad M., Food Chem. Toxicol., 33, 933 (1995).
• 16. Chen B.H. and Yang D.J., Chromatographia, 48, 233 (1998).
• 17. Abdulkarim B.G. and Smith J.S., J. Agric. Food Chem., 46, 4680 (1998).
• 18. Knize M.G., Sinha R., Rothman N., Brown E.D., Salmon C.P., Levander O.A., Cunnigham P.L. and Felton J.S., Fd. Chem. Toxic., 33, 545 (1995).
• 19. Skog K., Augustsson K., Steineck G., Stenberg M. and Jägerstad M., Food Chem. Toxicol., 35, 555 (1997).
• 20. Gross G.A, Carcinogenesis, 11, 1597 (1990).
• 21. Snyder L.R., Glajch J.L. and Kirkland J.L., Practical HPLC Method Development, John Wiley and Sons, Chichester/New York, 1988, p. 16, 23.
• 22. Warzecha L., Janoszka B.and Stróżyk M., Acta Chromatogr., 9, 176 (1999).
• 23. Janoszka B., Błaszczyk U., Warzecha L., Stróżyk M., Damasiewicz-Bodzek A. and Bodzek D., J. Chromatogr., 938, 155 (2001).
• 24. Karamanos N.K. and Tsegenidis T., J. Liq. Chrom. Rel. Technol., 19, 2247 (1996).