GC-MS and HPLC analysis of phenolic acids extracted from propolis and from Populus nigra bud exudate

• Autorzy: Maciejewicz W. , Daniewski M. , Dzido T. H. , Bal K.

Warianty tytułu

PL

Analiza GC-MS i HPLC fenolokwasów wyekstrahowanych z propolisu i pączków topoli Populus nigra

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Fractions in which 37 organic compounds were identified by means of GC-MS method were isolated using extraction of four propolis samples and bud exudate fromPopu/usnigra. Six of them were identified in propolis for the first time. They are: 4-hydroxybutyric acid (4-hydroxybutanoic acid), 3-hydroxybutyric acid (3-hydroxybutanoic acid), phthalic acid, 4-hydroxyhydrocinnamic acid (phenyllactic acid), imidazole and phenetole. The main components of propolis fraction are acids: benzoic,cŤ- and trans-p-coumaric, ferulic, caffeic and cinnamic. The compounds were determined by HPLC technique (according to analysis conditions estimated with Dry-Lab software) applying calibration curve calculation for the standards of those acids. Propolis ethanolic extracts consisted of 3.5-8.8% of dry residue and 2.9% bud exudate extract fromPopu/us nigra. The percentage of acids in the isolated samples was determined in the range of 30% to 78%. The content of the compounds varied in different samples which confirms the fact that propolis composition is not constant. The determination of phenolic acids by HPLC technique in optimal conditions may be essential useful for propolis standardization.

PL

Metodą GC-MS zidentyfikowano 37 związków organicznych we frakcjach wyizolowanych po ekstrakcji czterech próbek propolisu oraz próbki wydzieliny pączków topoli Populus nigra. Sześć z tych związków zidentyfikowano w propolisie po raz pierwszy. Są to kwasy: 4-hydroksymasłowy, 3-hydroksymasłowy, ftalowy, 4-hydroksycynamonowy oraz imidazol i fenetol. Głównymi składnikami frakcj i propolisu są kwasy: benzoesowy, p-kumarowy, ferulowy, kawowy i cynamonowy. Związki te oznaczono metodą HPLC w układzie zoptymalizowanym za pomocą oprogramowania Dry-Lab. Ilościowy skład wyznaczono z krzywych kalibracyjnych związków wzorcowych chromatografowanych w tych samych warunkach jak badane próbki. Wyizolowane frakcje stanowiły od 3.5 do 8.8% suchej pozostałości etanolowego ekstraktu propolisu i 2.9% ekstraktu pączków topoli Populus nigra. W wyizolowanych frakcjach procent kwasów mieścił się w granicach od 30 do 78. Próbki różniły się zawartością ilościową poszczególnych kwasów, co potwierdza fakt, że skład propolisu niejest stały. Oznaczanie fenolokwasów metodąHPLC w optymalnych warunkach analizy może być przydatne do standaryzacji propolisu.

Słowa kluczowe

EN

GC-MS identification; phenolic acid; HPLC; propolis

PL

analiza chromatograficzna GC-MS; fenolokwasy; chromatografia cieczowa wysokosprawna; propolis

• Wydawca: Komitet Chemii Analitycznej PAN
• Czasopismo: Chemia Analityczna
• Rocznik: 2002
• Tom: Vol. 47, No. 1
• Strony: 21--30
• Opis fizyczny: Bibliogr. 27 poz.

Twórcy

autor

Maciejewicz W.

• Department of Inorganic and Analytical Chemistry, Medical Academy, ul. Staszica 6, 20-081 Lublin, Poland

autor

Daniewski M.

• National Institute of Food and Nutrition, ul. Powsińska 61/63, 02-103 Warsaw, Poland

autor

Dzido T. H.

• Department of Inorganic and Analytical Chemistry, Medical Academy, ul. Staszica 6, 20-081 Lublin, Poland

autor

Bal K.

• National Institute of Food and Nutrition, ul. Powsińska 61/63, 02-103 Warsaw, Poland

Bibliografia

• 1. Ghisalberti E., Bee World, 59, 60 (1979).
• 2. Marcucci M.C., Apidologie, 26, 83 (1995).
• 3. Walker P. and Crane E., Apidologie, 18, 327 (1987).
• 4. Christov R., Bankova V., Hegazi A., Abd El Hady F. and Popov S., Z. Naturforsch., C Biosci., 53, 197 (1998).
• 5. Marcucci M.C., Rodrigues J., Ferreres F., Bankova V., Groto Robson and Popov S., Z. Naturforsch, C. Biosci., 53, 117 (1998).
• 6. Borkowski B., Herba Pol., 41, 146 (1995).
• 7. Krzaczek T., Herba Pol., 49, 292 (1998).
• 8. Nowak S., Dzido T.H., Soczewiński E. and Wolbiś M., Herba Pol., 43, 428 (1997).
• 9. Smolarz H.D., Sokołowska-Woźniak A. and Zgórska G., Acta Pol. Pharm., 54, 161 (1997).
• 10. Sokołowska-Woźniak A., Herba Pol., 4, 283 (1996).
• 11. Berbeć S., Król B. and Wolski T., Herba Pol., 49, 397 (1998).
• 12. Ellnain-Wojtaszek M., Acta Pol. Pharm.-Drug Res., 54, 225 (1997).
• 13. Markowski W., Czapińska L.K., Józefczyk A.J. and Głowniak K., J. Liq. Chromatogr. Rel. Technol., 31, 2497-2505 (1998).
• 14. Borkowski B., Herba Pol., 33, 71 (1993).
• 15. Grodzieńska-Zachwieja Z., Kohland W. and Klimczak M., Diss. Pharm., Pharmacol., 23, 179 (1971).
• 16. Bankova V., Khristov R., Stoev G. and Popov S., J. Chromatogr., 607, 150 (1992).
• 17. Greenaway W., Scaysbrook T. and Whatles F.A., Proc. R. Soc. Lond., 6, 245 (1987).
• 18. Veit M. and Gumbinger H.G., Dtsch. Apoth. Ztg., 133, 911 (1993).
• 19. Borkowski B., Herba Pol., 39, 139 (1993).
• 20. Maciejewicz W. and Meresta T., Bull. Vet. Inst. Puławy, 43, 71 (1999).
• 21. Cizmarik J. and Matel I., J. Apic. Res., 12, 52 (1973).
• 22. Maciejewicz W., Daniewski M. and Mielniczuk Z., Chem. Anal. (Warsaw), 29, 421 (1984).
• 23. Maciejewicz W. and Dzido T.H., 1st Conf. Appl. Chromatogr. Meth. in Phytochem., Lublin, 27 June 1992, 14.
• 24. Kurkin V.A., Braslavski V.B. and Zapesochnaya G.G., Zh. Fiz. Khim., 68, 1816 (1994).
• 25. Vennat B., Arvouet G.A., Gross D. and Pourrat A., J. Pharm. Belg., 50, 438 (1995).
• 26. Bankova V., Boudourova-Krasteva G., Popov S., Sforcin J.M. and Cunha Funari S.R., Apidologie, 29, 361 (1998).
• 27. Dzido T.H. and Smolarz H.D., J. Chromatogr A., 679, 59 (1994).