High performance liquid chromatography in the analysis of methylxantines in the presence of tobacco alkaloids

• Autorzy: Baranowska I. , Kapinos J.

Warianty tytułu

PL

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w zastosowaniu do analizy metyloksantyn w obecności alkaloidów tytoniu

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The HPLC method for the separation and determination of alkaloides and their metabolites such as theophylline, theobromine, caffeine, nicotine, 7-methylxanthine, 1,7,-di-methylxanthine, cotinine and 1,3-dimethyluric acid has been developed. Aforemen-tioned xanthines and tobacqo alkaloides can be analysed in the chromatographic system on octadecylsilane LiChrospher column, 250 x 4 mm (5um), eluent: water-acetonitrile-methanol-acetic buffer (50+2+29+20 v/v). Acetic acid was used for adjusting pH. The best chromatographic separation of theobromine, theophylline, cotinine aijd caffeine was obtained at pH=4.3, while at pH=4.8 it is possible to determine metabolites in the presence of alkaloides-theobromine and 7-methylxanthine; nicotine and cotinine; caf-feine and 1.7-dimethylxanthine in mixtures. Determination of the mixture of metabolites such as: 7-methylxanthine, 1,7-dimethylxanthine and 1,3-dimethyluric acid can be car-ried out at pH=7 and at pH=5.6 in the presence of cotinine. These compounds can be de-termined by the use of DAD detector within the concentration range 1-100 |ug/ml.

PL

Opracowano metodę HPLC do rozdzielania i oznaczania alkaloidów i ich metabolitów, takich jak: teofilina, teobromina, kofeina, nikotyna, 7-metyloksantyna, 1,7-dimetylo-ksantyna, kotinina i kwas 1,3-dimetylomoczowy. Wymienione ksantyny i alkaloidy tytoniu można analizować w układzie chromatograficznym-kolumna oktadecylosilanowa LiChrospher 250 x 4 mm (5um), eluent: woda-acetonitryl-metanol-bufor octanowy (50+2+29+20 v/v). Za pomocą kwasu octowego doprowadzano pH eluentu do różnych wartości-przy pH=4.3 uzyskuje się najlepsze rozdziały chromatograficzne teobrominy, teofiliny, kotininy i kofeiny, przy pH=4.8 można oznaczyć metabolity obok alkaloidów - teobrominę obok 7-metyloksantyny, nikotynę obok kotininy, kofeinę obok 1,7-dimetyloksantyny w mieszaninie tych związków. Oznaczanie mieszanin metabo-litów 7-metyloksantyny,1,7-dimetyloksantyny i kwasu 1,3-dimetylomoczowego można prowadzić przy pH=7, a w obecności dodatkowo kotininy przy pH=5.6. Ilościowo, z zastosowaniem detektora DAD, można analizować wymienione związki w zakresie od 1 - 100ng/ml.

Słowa kluczowe

EN

HPLC; methylxantines; tobacco alkaloids

PL

chromatografia cieczowa wysokosprawna; metyloksantyna; alkaloid tytoniu

• Wydawca: Komitet Chemii Analitycznej PAN
• Czasopismo: Chemia Analityczna
• Rocznik: 2000
• Tom: Vol. 45, No. 1
• Strony: 53--58
• Opis fizyczny: Bibliogr. 24 poz.

Twórcy

autor

Baranowska I.

• Department of Analytical and General Chemistry, Silesian Technical University, 9 M. Strzody Str., 44 100 Gliwice

autor

Kapinos J.

• Department of Analytical and General Chemistry, Silesian Technical University, 9 M. Strzody Str., 44 100 Gliwice

Bibliografia

• 1. Weyland J.W. and Rolnik H., J. Chromatogr., 247, 221 (1982).
• 2. Daghbouche Y., Garrigues S., Vidal M.T. and de la Guardia M., Anal. Chem., 69, 1086 (1997).
• 3. El Sadek M., El Shanawany A. and Aboul Khier A., Analyst, 115, 1181 (1990).
• 4. Perez-Martinez I., Sagrado S. and Medina-Hernandez M.J., Chromatographia, 43, 149 (1996).
• 5. Wolff S.C. and Kovar K.A., J. Planar Chromatogr., 7, 344 (1994).
• 6. Egli R.A., Muller H. and Tanner S., Fresenius Z. Anal. Chem., 305, 267 (1981).
• 7. Abdel-Hay M.H., El-Din M.S. and Abuirjeie M.A., Analyst, 117, 157 (1992).
• 8. Estelles M.L., Mauri-Aucejo A.R., Marin-Saez R., San Martin-Ciges M.D. and Cerdan Vidal A.A., Anal. Chim. Acta., 282, 671 (1993).
• 9. Shinde V.M., Tendolkar N.M. and Desai B.S., J. Planar Chromatogr., 7, 133 (1994).
• 10. Tagliaro F., Dorizzi R., Ghielmi S., Poiesi C., Moretto S., Archetti S. and Marigo M., Fresenius J. Anal. Chem., 343, 168 (1992).
• 11. Llobat-Estelles M.J., Marin-Saez R.M. and San-Martin Ciges M., Talanta, 43, 1589 (1996).
• 12. Cabalin L.M., Laserna J.J. and Ruperez A., Fresenius J. Anal. Chem., 346, 1003 (1993).
• 13. Tombesi O.L., Maldoni B.E., Bartolome E.R., Haurie H.M. and Faraoni M.B., Appl. Spectrosc., 47, 665 (1993).
• 14. Gennaro M.C. and Abrigo C., Fresenius J. Anal. Chem., 343, 523 (1992).
• 15. Perez-Martinez I., Sagrado S. and Medin-Harnandez M.J., Anal. Chim. Acta, 304, 195 (1995).
• 16. Taylor M.R. and Westwood S.A., J. Planar. Chromatogr., 6, 415 (1993).
• 17. Nakashima K., Inoue K., Mayahara K., Kuroda N., Hamachi Y. and Akiyama S., J. Chromatogr. A., 722, 107 (1996).
• 18. Gennaro M.C., Abrigo C. and Biglino P., Analyst, 117, 1071 (1992).
• 19. Leakey T.E.B., J. Chromatogr., 507, 199 (1990).
• 20. Wagner J., Jork H. and Koglin E., J. Planar Chromatogr., 6, 446 (1993).
• 21. Renger B., Jehle H., Fischer M. and Funk W., J. Planar Chromatogr., 8, 269 (1995).
• 22. Pichini S., Altieri I., Passa A.R., Rosa M., Zuccaro P. and Pacifici R., J. Chromatogr. A., 697, 383 (1995).
• 23. Henion J., Maylin G.A. and Thomson B.A., J. Chromatogr., 71, 107 (1983).
• 24. Baranowski J., Pochopień G. and Baranowska I., J. Chromatogr. B., 707, 317 (1998).