Quantitative Analysis of Aerobic Cultivable Bacteria and Soil Total Enzymatic Activity of Kielce and Rudki Urbicenose

• Autorzy: Konieczna I. , Żarnowiec P. , Świercz A. , Gruszczyński M. , Polkowska-Motrenko H. , Chejduk E. , Kaca W.

Warianty tytułu

PL

Analiza ilościowa tlenowych bakterii hodowalnych oraz całkowitej aktywności enzymatycznej gleby urbicenozy Kielc i Rudek

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The microbiological and biochemical analysis of two urban soil samples, from Swietokrzyskie province (Kielce, Rudki), were performed. The aim of this study was the quantitative analysis of aerobic bacterial microflora and determination of total enzymatic activity of soil from area with high level of street traffic (Kielce) and from former pyrite mine region (Rudki), where uranium ore were extracted. The commercial media (TSA, LB, MacConkey, M9 and King B agars) and soil extract agars were used for soil microorganisms isolation. The bacteria were cultivated in two temperatures: +25 °C and +4 °C. From Kielce urbicenose, amount of soil bacteria cultivated on commercial media were higher in case of culture in +25 °C (from 10 to 108 times more depending on used medium), whereas on soil extract agar almost 2 times more microorganisms were found in +4 °C. For soil contamined by uranium (Rudki), abundant bacterial growth in both temperatures were observed only on soil extract agar. The total ureolytic, proteolytic and lipolytic activities of soil samples were also defined. In case of soil sample from Kielce all from the determinated activities were found, whereas for soil from Rudki only lipolytic activity was noted.

PL

Wykonano badania mikrobiologiczne i biochemiczne dwóch próbek gleb miejskich województwa świętokrzyskiego (Kielce, Rudki). Celem pracy była analiza ilościowa tlenowej hodowalnej mikroflory bakteryjnej oraz określenie całkowitej aktywności enzymatycznej gleby z okolic o dużym natężeniu ruchu drogowego (Kielce) i terenów byłej kopalni pirytu (Rudki), skąd wydobywano rudę uranową. Do izolacji drobnoustrojów zastosowano pożywki komercyjne (TSA, agar LB, MacConkey'a, M9 i King B) oraz podłoża z ekstraktami glebowymi. Hodowlę prowadzono w dwóch temperaturach: +25 °C i +4 °C. W przypadku gleby urbicenozy Kielc, na pożywkach komercyjnych zaobserwowano większą ilość drobnoustrojów hodowanych w temperaturze +25 °C (od 10 do 108 razy więcej w zależności od stosowanej pożywki), natomiast na podłożu z ekstraktem glebowym niemal 2 razy więcej bakterii rosło w temp. +4 °C. W glebie zanieczyszczonej uranem (Rudki) obfity wzrost drobnoustrojów hodowanych w obu temperaturach występował jedynie na agarze z ekstraktem glebowym. Oznaczono również całkowitą aktywność ureolityczną, proteolityczną i lipolityczną próbek glebowych. W przypadku próbek gleby z Kielc obserwowano wszystkie badane aktywności, natomiast dla gleby z Rudek tylko lipolityczną.

Słowa kluczowe

EN

soil bacteria; heavy metals; total enzymatic activity

PL

bakterie glebowe; metale ciężkie; całkowita aktywność enzymatyczna

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Ecological Chemistry and Engineering. A
• Rocznik: 2012
• Tom: Vol. 19, nr 8
• Strony: 915--920
• Opis fizyczny: Bibliogr. 17 poz., rys., tab.

Twórcy

autor

Konieczna I.

autor

Żarnowiec P.

autor

Świercz A.

autor

Gruszczyński M.

autor

Polkowska-Motrenko H.

autor

Chejduk E.

autor

Kaca W.

• Departament of Microbiology, Institute of Biology, The Jan Kochanowski University in Kielce, ul. Świętokrzyska 15, 25–506 Kielce, Poland, phone: + 48 041 349 63 05,

Bibliografia

• [1] Akob DM, Mills HJ, Gihring TM, Kerkhof L, Stucki JW, Anastácio AS, et al. Appl Environ Microbiol. 2008;74:3159-3170.
• [2] Kumar R, Acharya C, Joshi SR. J Microbiol. 2011;49:568-574.
• [3] Rastogi G, Osman S, Vaishampayan PA, Andersen GL, Stetler LD, Sani RK. Microb Ecol. 2010;59:94-108.
• [4] Moreno JL, García C, Landi L, Falchini L, Pietramellara G, Nannipieri P. Soil Biol Biochem. 2001;33:483-489.
• [5] Macura J, Vagnerova K. Rosl Vyroba. 1969;15:173-180.
• [6] Stankowska D, Kwinkowski M, Kaca W. J Microbiol Immunol Infect. 2008;41:243-253.
• [7] Margesin R, Feller G, Hämmerle M, Stegner U, Schinner F. Biotechnol Let. 2002;24:27-33.
• [8] Błaszczyk MK. Mikrobiologia środowisk. Warszawa: PWN; 2010.
• [9] Braun B, Böckelmann U, Grohmann E, Szewczyk U. Appl Soil Ecol. 2006;31:267-279.
• [10] Johnsen AR, Winding A, Karlson U, Roslev P. Appl Environ Microbiol. 2002;68:6106-6113.
• [11] Piotrowska-Seget Z, Kozdrój J. Plant Soil Environ. 2008;54:520-528.
• [12] Dziadek K, Wacławek W. Chem Dydakt Ekol Metrol. 2005;1-2:10.
• [13] Hemida SK, Omar SA, Abdell-Mallek AY. Earth Environ Sci. 1995;95:13-22.
• [14] Nwaugo V, Onyeagba A, Akubugwo E, Ugbogu O. Biokemistri. 2008;20:77-84.
• [15] Błaszak M, Nowak A. Ecol Chem Eng A. 2008;15:1-2.
• [16] López N, Borràs G, Vallespinós F. Scient Mar. 1995;59:149-154.
• [17] Gupta R, Gupta N, Rathi P. Appl Microbiol Biotechnol. 2004;64:763-81.