Effect of Abscisic Acid, Ethylene and Inhibitors of Their Biosynthesis (Fluridone and Salicylic Acid) on Somatic Embryos Conversion in Tulips

• Autorzy: Maślanka M. , Bach A.

Warianty tytułu

PL

Wpływ kwasu abscysynowego, etylenu oraz inhibitorów ich biosyntezy (fluridonu i kwasu salicylowego) na konwersję zarodków somatycznych tulipana

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The experiments aimed to investigate the conversion of somatic embryos of the tulip ‘Apeldoorn’ variety in an in vitro culture supplemented with some chosen compounds. Tulip somatic embryos in torpedo stage, obtained by indirect somatic embryogenesis were placed for 1 week on media containing growth regulators (5 ěM Picloram, 1 ěM 6-benzylaminopurine (BAP) – control) and abscisic acid (ABA), abscisic acid + fluridone, Etephon and Etephon + salicylic acid (SA). Then, the embryos were maintained in the dark or under light for 10 weeks. After time of experiment, the greatest percent of leaf-forming embryos (40 %) and the greatest number of leaves (3.6 leaves) were observed when the embryos were treated simultaneously with Etephon and salicylic acid. Light did not influence the number of newly developed leaves but significantly increased (vs dark) percentage of leaf-forming embryos on control media (from 0 to 24 %) and on Etephon-supplemented medium (from 4 to 24 %). Abscisic acid and abscisic acid + Fluridone supplementation inhibited organogenesis of leaves but only in the cultures maintained under light. Regeneration of leaves was not observed on the control media maintained in the dark and on the abscisic acid + fluridone-supplemented media under light.

PL

W przeprowadzonym doświadczeniu badano konwersję zarodków somatycznych tulipana 'Apeldoorn' pod wpływem wybranych czynników kultury in vitro. Zarodki somatyczne tulipana, w stadium torpedy, uzyskane drogą pośredniej embriogenezy somatycznej, wykładano na okres 1 tygodnia, na pożywki zawierające substancje wzrostowe (5 M Picloram, 1 M 6-benzyloaminopuryna (BAP) - kontrola) oraz: kwas abscysynowy (ABA), kwas abscysynowy+Fluridon, Etefon i Etefon+kwas salicylowy (SA). Następnie zarodki umieszczano na 10 tygodni w warunkach zaciemnienia lub światła. Po upływie czasu trwania doświadczenia zaobserwowano, że pod wpływem jednoczesnego działania Etefonu i kwasu salicylowego uzyskano największy udział zarodków formujących liście (40 %) oraz największą liczbę wytworzonych liści (3,6 szt.). Światło nie miało wpływu na liczbę powstałych liści, natomiast istotnie zwiększyło udział tworzących je zarodków na pożywkach kontrolnych (z 0 do 24 %) i po zastosowaniu Etefonu (z 4 do 24 %) w porównaniu z zarodkami utrzymywanymi w ciemności. Dodatek kwasu abscysynowego oraz kwasu abscysynowego i Fluridonu hamował organogenezę liści, ale tylko w obecności światła. Nie obserwowano regeneracji liści na pożywkach kontrolnych w warunkach zaciemnienia oraz pod wpływem kwasu abscysynowego i Fluridonu na świetle.

Słowa kluczowe

EN

abscisic acid; ethylene; fluridone; salicylic acid; leaf formation

PL

kwas abscysynowy; etylen; Fluridon; kwas salicylowy; formowanie liści

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Ecological Chemistry and Engineering. A
• Rocznik: 2010
• Tom: Vol. 17, nr 9
• Strony: 1135--1140
• Opis fizyczny: Bibliogr. 21 poz., rys.

Twórcy

autor

Maślanka M.

autor

Bach A.

• Department of Ornamental Plants, Faculty of Horticulture, University of Agriculture in Krakow, ul. 29 Listopada 54, 31–425 Kraków, Poland,

Bibliografia

• [1] Bach A. and Ptak A.: Acta Horticult. 2001, 560, 391–394.
• [2] Maślanka M. and Bach A.: Zesz. Probl. Post. Nauk Roln. 2009, 534, 163–171.
• [3] Kępczyńska E.: Biotechnologia 2006, 4(75), 78–94.
• [4] Podwyszyńska M.: Zesz. Probl. Post. Nauk Roln. 2006, 510, 461–469.
• [5] Wilmink A., Van de Ven B.C.E., Custers J.B.M., Nöllen Y. and Dons J.J.M.: Plant Sci. 1995, 110, 155–164.
• [6] Podwyszyńska M. and Marasek A.: Acta Soc. Bot. Polon. 2003, 72(3), 181–190.
• [7] Murashige T. and Skoog F.: Plant Physiol. 1962, 15, 473–497.
• [8] Rees A.R.: [in:] Ornamental bulbs, corms and tubers. CAB International 1992, p. 93–111.
• [9] McKersie B.D. and Brown D.C.W.: Seed Sci. Res. 1996, 6, 109–126.
• [10] Cavallini A. and Natali L.: Plant Sci. 1989, 62, 255–261.
• [11] Hśkstra F.A., Golovina E.A., Tetteroo F.A.A. and Wolkers W.F.: Cryobiology 2001, 43, 140–150.
• [12] Ptak A. and Bach A.: In Vitro Cellular and Developm. Biol.-Plant 2007, 43, 35–39.
• [13] Myers J.M. and Simon P.W.: Plant Cell Rep. 1999, 19, 32–36.
• [14] Sreedhar L. and Bewley J.D.: Plant Sci. 1998, 134, 31–44.
• [15] Stasolla C. and Yeung E.C.: Plant Cell Tiss. Org. 2003, 74, 15–35.
• [16] Li B. and Wolyn D.J.: In Vitro Cellular Developm. Biol.-Plant 1996, 32(4), 223–226.
• [17] Popova L.: Plant Physiol. 1996, 22(1–2), 3–12.
• [18] Gabryszewska E.: [in:] Developmental Biology of Regeneration, 1 st Meeting, COST 843, Germany 2000, p. 35–36.
• [19] Orlikowska T.: [in:] S.L. Jankiewicz (Ed.) Regulatory wzrostu i rozwoju roślin. Zastosowanie w ogrodnictwie, rolnictwie, leśnictwie i w kulturach tkanek. PWN, Warszawa 1997, p. 219–247.
• [20] Economou A.S.: Acta Horticult. 1991, 300, 35–43.
• [21] Quiroz-Figueroa F., Mendez-Zeel M., Largue-Saavedra A. and Loyola-Vargas V.M.: Plant Cell Rep. 2001, 20, 679–684.