Antibacterial activity and scanning electron microscopy (SEM) examination of alginate-based films and wound dressings

• Autorzy: Pielesz A. , Machnicka A. , Sarna E.

Warianty tytułu

PL

Właściwości antybakteryjne i skaningowa mikroskopia elektronowa (SEM) w badaniach filmów alginianowych i opatrunków aktywnych

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Natural polymers widely used to produce drug carriers and active dressings include alginates, gelatine, chitosan and hyaluronic acid. In this study, alginate films were obtained bypassing the process of lyophilization. Produced from the common bladder wrack (Fucus vesiculosus L.), they can be used in food chemistry, wound treatment (tissue infections, burns) and in skin care; they are also good drug carriers. The films were examined for their bacteriostatic effects. Alginate gels exhibit bacteriostatic properties against Gram-negative Escherichia coli and Gram-positive Staphylococcus aureus. Tests conducted for active dressings revealed that Aquacel Ag and gauze soaked with 1% AgNO3 exhibit bacteriostatic properties against E. coli and no resistance against S. aureus. Examination using scanning electron microscopy (SEM) confirmed the bacteriostatic properties of the Aquacel Ag dressing and gauze with 1% AgNO3. Dead cultures of Staphylococcus aureus were observed on the fibre surface of both dressings.

PL

Naturalne polimery są szeroko używane do opatrunków aktywnych na bazie: alginianów, żelatyny, chitozanu i kwasu hialuronowego. W przedstawionych badaniach błonę alginianową otrzymuje się, omijając liofilizację. Żel otrzymano z morszczynu pęcherzykowatego (Fucus vesiculosus L.) wykorzystywanego powszechnie w chemii żywności, leczeniu ran (zakażeniach tkanek, oparzeniach), pielęgnacji skóry oraz jako nośnik leków. Badane żele alginianowe wykazywały właściwości bakteriostatyczne w stosunku do bakterii Gram-dodatnich Staphylococcus ureus oraz bakterii Gram-ujemnych Escherichia coli. Testy przeprowadzone dla aktywnych opatrunków wykazały, że Aquacel Ag i gaza nasączona 1% AgNO3 wykazują właściwości bakteriostatyczne w stosunku do S. ureus i E. coli. Badanie za pomocą skaningowego mikroskopu elektronowego (SEM) potwierdziło właściwości bakteriostatyczne Aquacel Ag i opatrunku z gazy nasączonym 1% AgNO3. Na powierzchni włókien obu opatrunków zidentyfikowano obumarłe kultury S. aureus i E. coli.

Słowa kluczowe

EN

antibacterial; scanning electron microscopy; alginate films; wound dressings

PL

właściwości antybakteryjne; skaningowy mikroskop elektronowy; błona alginianowa; opatrunki

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Ecological Chemistry and Engineering. S
• Rocznik: 2011
• Tom: Vol. 18, nr 2
• Strony: 197--210
• Opis fizyczny: Bibliogr. 30 poz., rys., tab.

Twórcy

autor

Pielesz A.

autor

Machnicka A.

autor

Sarna E.

• Faculty of Material Engineering and Environmental Sciences, University of Bielsko-Biala, ul. Willowa 2, 43-300 Bielsko-Biała, phone [phone], fax [phone],

Bibliografia

• [1] Mancini F. and McHugh T.H.: Food/Nahrung, 2000, 44(3), 152-157.
• [2] Yang L. and Paulson A.T.: Food Res. Int., 2000, 33, 571-578.
• [3] King A.H.: [in:] Food Hydrocolloids (M. Glicksman Ed.). Vol. II, CRC Press, Boca Raton 1982, 115-188.
• [4] Rhim J.W.: Lebensmittel-Wissenschaft und Technologie, 2004, 37, 323-330.
• [5] Han J.H.: Food Technol., 2000, 54(3), 56-65.
• [6] www.den.davis. ca.us/~han/CyberFoodsci/volume2001.htm. Downloaded in May 2001.
• [7] Kester J.J. and Fennema O.: Food Technol., 1986, 40, 47-59.
• [8] Pranoto Y., Salokhe V. and Rakshit K.S.: Food Res. Int., 2005, 38, 267-272.
• [9] Tharanathan R.N.: Trends in Food Sci. & Technol., 2003, 14, 71-78.
• [10] Nakamura K., Nishimura Y., Hatakeyama T. and Hatakeyama H.: Thermochim. Acta, 1995, 267, 343-353.
• [11] Park H.J.: Food Sci. & Ind., 1996, 29, 47-53.
• [12] Lim E.B. and Kennedy R.A.: Pharmaceut. Develop. Technol., 1997, 2, 285-292.
• [13] Kampf N. and Nussinovitch A., Food Hydrocolloids, 2000, 14, 531-537.
• [14] Bowler P.G., Duerden B.I. and Armstrong D.G.: Clin. Micro. Rev., 2001, 14, 244-269.
• [15] Lawrence J.: Amer. J. Surg., 1994, 167, 21-24.
• [16] Klasen H.J.: Burns, 2000, 26, 117-130.
• [17] Wright J.B., Lam K., Hanson D. and Burrel R.E.: Amer. J. Infect Control, 1999, 27, 344-350.
• [18] Bowler P.G., Jones S.A., Walker M. and Parsons D.: J. Burn. Care Rehabil., 2005, 25, 192-196.
• [19] Bowler P.G., Jones S.A., Davies B.J. and Coyle E.: J. Wound Care, 1999, 8, 499-502.
• [20] Grier N.: [in:] Disinfectants, Sterilisation and Preservations, ed. S. Block (3rd ed.). Philadelphia 1983.
• [21] Liau S.Y., Read D.C. and Russell A.D.: Lett. Appl. Microbiol., 1997, 25, 279-283.
• [22] Fan F.F. and Bard A.J.: J. Phys. Chem. B, 2002, 106, 279-287.
• [23] Yin H.Q., Langford R. and Burrell R.E.: J. Burn. Care Rehabil., 1999, 20, 195-200.
• [24] Wright J.B., Lam K. and Burrell R.E.: Amer. J. Infect Control, 1998, 26, 572-577.
• [25] Olson M.E., Wright J.B., Lam K. and Burrell R.E.: Eur. J. Surg., 2000, 166, 486-489.
• [26] Parikh D.V., Fink T., Rajasekharan K., Sachinvala N.D., Sawhney A.P.S. and Calamari T.A.: Textile Res. J., 2005, 75, 134-138.
• [27] Burrell R.E.: Ostomy/Wound Manage., 2003, 49, 19-24.
• [28] Walker M., Hobot J.A., Newman G.R. and Bowler P.G.: Biomaterials, 2002, 24, 883-890.
• [29] Bishop S.M., Walker M, Rogers A.A. and Chen W.Y.J.: J. Wound Care, 2003, 12, 499-502.
• [30] Feng Q.L. and Kim J.O.: J. Biomed. Mater. Res., 2000, 52, 662-668.