Antioxidant, Antimicrobial Actiyity and Heavy Metals Content in Pollen of Papaver somniferum L

• Autorzy: Kačániová M. , Nóźková J. , Fatrcová-Šramková K. , Kropková Z. , Kubincová J.

Warianty tytułu

PL

Zawartość metali ciężkich oraz aktywność antyoksydacyjna i antybakteryjna pyłku Papaver somniferum L

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

An aim of the study was to measure a total flavonoids content, as well as, individually the content of ąuercetin, luteolin, kaempferol, apigenin in Papaver somniferum L. bee pollen, then to analyse a reduction power of bee pollen (dried, frozen, freeze-dried), and also to determine an antibacterial activity of bee pollen extracts, obtained with different concentrations of ethanol. Heavy metals concentrations were analysed in bee gathered (in case of all three treatment) and flower pollen samples. The reduction power of bee pollen compounds was 3592.56 š 105.29 u.g o cm-3. The highest value achieved the freeze-dried pollen. Comparison of the flavonoids content (averaged 262.33 š 4.42 mg o kg-1) refers on higher values in the frozen bee pollen than in the dried and freeze-dried forms. In the freeze-dried pollen was the highest content of two flavonoids (quercetin and apigenin), but in the case of the other two analysed flavonoids (luteolin and kaempferol) their content was the highest in the dried bee pollen. The obtained results characterize Papaver somniferum L. bee pollen ethanolic extract samples as the product with the broad antimicrobial effect. From the heavy metals, in flower and bee pollen, the lead level was 0.64 mg o kg-1 and less than 0.1 mg o kg-1, respectively. Consecutively, the contents of mercury were 0.019 mg o kg-1 in the flower pollen and ranging from 0.004 to 0.005 mg o kg-1 in the frozen, freeze-dried and dried bee pollen. The cadmium concentration in the flower pollen was 0.12 mg o kg-1, and in the bee pollen ranged from 0.22 to 0.26 mg o kg-1.

PL

Celem pracy było zmierzenie całkowitej zawartości flawonoidów oraz kwercetyny, luteoliny, kemferolu i apigeniny w pyłku pszczelim pochodzącym z Papaver somniferum. Następnie zbadano siłę redukcyjną pyłku pszczelego (suszonego, mrożonego, suszonego i mrożonego) oraz aktywność anty-bakteryjną ekstraktów pyłku pszczelego uzyskanych przy użyciu etanolu o różnych stężeniach. Zawartość metali ciężkich zbadano w pyłku zebranym przez pszczoły oraz w próbkach pyłku pobranych z kwiatów. Siła redukcyjna pyłku pszczelego wynosiła 3592,56 š105,29 ng o cm-3. Największą siłę redukcyjną miał pyłek suszony i zamrożony. Największą zawartość flawonoidów stwierdzono (średnio 262 + 4.42 mg o kg-1) w zamrożonym pyłku pszczelim. W pyłku, który był jednocześnie wysuszony i zamrożony, występowała największa ilość kwercetyny i apigeniny. Pozostałe flawonoidy (luteolina i kemferol) występowały w największej ilości w suszonym pyłku pszczelim. Uzyskane rezultaty wskazują na bardzo szerokie działanie antybakteryjne etanolowych ekstraktów pyłku pszczelego z Papaver somniferum. Zawartość ołowiu w pyłku pszczelim oraz próbkach zebranych bezpośrednio z kwiatów wynosiła odpowiednio 0,64 mg o kg-1 i mniej niż 0,1 mg o kg-1. Zawartość rtęci wynosiła 0,019 mg o kg-1 w pyłku zebranym bezpośrednio z kwiatów. Natomiast w pyłku pszczelim mrożonym, suszonym oraz suszonym i mrożonym zawartość rtęci wynosiła od 0,004 do 0,005 mg o kg-1. Zawartość kadmu w pyłku zebranym z kwiatów wynosiła 0,12 mg o kg-1, a w pyłku pszczelim od 0,22 do 0,26 mg o kg-1.

Słowa kluczowe

EN

Papaver somniferum L. bee pollen; flower pollen; flavonoids; reduction power; antibacterial activity; antifungal activity; heavy metals; contamination

PL

pyłek pszczeli z Papaver somniferum L.; pyłek kwiatowy; flawonoidy; siły redukcyjne; aktywność antybakteryjna; aktywność antygrzybiczna; metale ciężkie; zanieczyszczenia

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Ecological Chemistry and Engineering. A
• Rocznik: 2010
• Tom: Vol. 17, nr 1
• Strony: 97--106
• Opis fizyczny: Bibliogr. 21 poz., rys., tab.

Twórcy

autor

Kačániová M.

autor

Nóźková J.

autor

Fatrcová-Šramková K.

autor

Kropková Z.

autor

Kubincová J.

• Department of Microbiology, Faculty of Biotechnology and Food Sciences, Slovak University of Agriculture in Nitra, Tr. A. Hlinku 2, 949 76 Nitra, Slovak Republic.,

Bibliografia

• [1] Isla M.I., Moreno M.I.N., Sampietro A.R. and Yattuone M.A.: J. Ethnopharmacol. 2001, 76(2), 165-170.
• [2] Bogdanov S.: Apiacta 2004, 38, 334-341.
• [3] Campos M.G., Webby R.F., Markham K.R., Mitchell K.A. and Cunha A.P. Da: J. Agric. Food Chem. 2003, 51, 742-745.
• [4] Campos M.G., Mitchel K., Cunha A. and Markham K.R.: Phytochem. Anal. 1997, 8, 181-185.
• [5] Garcia M„ Perez-Arquillue C., Juan T., Juan M.l. and Iterrera A.: Food Sci. Tech. Inter. 2001, 7(2), 155-158.
• [6] Proestos C., Chorianopoulos N., Nichas G.J.E. and Komaitis M.: J. Agri. Food Chem. 2005, 53(4), 1190-1195.
• [7] Almas K., Mahmoud A., Dahlan A.: Almas K.., Mahmoud A. and Dahlan A.: Indian J. Dentist Resour. 2001, 12, 21-70.
• [8] Gebara E.C.E., Lima L.A. and Mayer M.P.A.: Brąz. J. Microbiol. 2002, 33(4), 365-369.
• [9] Campos M.G., Cunha P.A., Navarro M.C. and Utrilla M.P.: Polyphenols 1994, 94, 415-426.
• [10] Wiermann R. and Yieth K..: Protoplasma 1983, 118, 230-233.
• [11] Almaraz-Abarca N., Campos M. Da G., Avila-Reyes J.A., Naranjo-Jimenez N., Herrera-Corral J. and Gonzalez-Yaldez L.S.: Interciencia 2004, 29, 574-578.
• [12] Aliyazicioglu Y., Deger O., Ovali E., Barlak Y., Hosver 1., Tekelioglu Y. and Karahan S.C.: Int. Immunopharm. 2005, 5, 1652-1657.
• [13] Di Paola-Naranjo R.D., Sanchez J.S., Paramas A.M.G. and Gonzalo J.C.R.: J. Chromatography A, 2004, 1054(1/2), 205-210.
• [14] Tang B., Zhang L. and Geng Y.: Talanta, 2005, 65(3), 769-775.
• [15] Prieto P., Pineda M. and Aquilar M.: Analytical Biochemistry 1999, 269, 337-341.
• [16] Carpes S.T., Begnini, R., De Alencar S.M. and Masson M.L.:.Cienc. agrotec., 2007, 31(6), 1818-1825.
• [17] Bauer A.W., ICirby W.M., Sherris J.C. and Turek M.: Am. J. Clin. Pathol., 1966, 45, 493-496.
• [18] Markham K.R. and Campos M.G.: Phytochemistry 1996, 43, 763-767.
• [19] Campos M.G., Webby R.F., Mitchell K.A., Coleta M., Markham K.R. and Cunha A.P.: Polyphenols Communications 2000, September 11-15. Freising-Weihenstephan Germany.
• [20] Leja M., Mareczek A., Wyżgolik G., Klepacz-Baniak J. and Czekońska K.: Food Chem. 2007, 100, 237-240.
• [21] Chlebo R. and Ćermakova T.: Nutrition and Food in 3rd Millennium - proceeding. SPU, Nitra 2001, 171-173 [in Slovak]