EDTA-assisted phytoextraction of copper, cadmium and zinc using chamomile plants

• Autorzy: Kralova K. , Masarovičova E.

Warianty tytułu

PL

Fitoekstrakcja wspomagana EDTA kadmu, miedzi i cynku za pomocą rumianku pospolitego

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The effect of EDTA on Cu, Zn and Cd bioaccumulation in Matricaria recutita L. plants (cv. Goral) was studied. Application of 12, 24 and 60 _mol MSO4 dm-3 (M = Cu, Zn or Cd) practically did not affect dry matter of roots and shoots of chamomile plants. The studied plants accumulated more Cd, Zn and Cu in the roots than in the shoots. Metal content in plant organs increased with increasing MSO4 concentration in hydroponic solution. In the presence of equimolar EDT A concentration a significant decrease of accumulated Cu and Zn amount in plant roots was observed. For Cd Ibis effect was relatively law. On the other band, application of EDT A caused sharp increase of Cu concentration in the shoots, whereas Cd shoot concentration increased only slightly and Zn concentration showed a moderate decrease. Bioaccumulation (BAF) and translocation factors (TF) also were evaluated. BAF values related to the accumulated metal amount in the shoots ranged were 69-168 for Zn, 3.8-11.5 for Cu and 56-100 for Cd (application without EDTA) and 62-162 for Zn, 34-39 for Cu and 78-129 for Cd (with EDTA application). Plants treated with 12 _mol dm-3 CdSO4accumulated in the shoots 16.9 % from the total Cd amount accumulated by plant and in the presence of EDTA Ibis portion increased to 30.9 %. On the other band, at the highest applied CdSO4 concentration (60 _mol dm-3) Ibis portion was only little affected by the presence of EDTA (33.5 % and 36.4 %, respectively).

PL

Badano wpływ EDTA na bioakumulację CD, Zn i Cd w roślinach Matricaria recutita L (cv. Goral). Stosowane stężenia soli metali ciężkich: 12,24 i 60 _mol MSO4 dm-3 (M = CD, Zn lub Cd) praktycznie nie miały wpływu na suchą masę korzeni i pędów roślin rumianku. Badane rośliny akumulowały więcej Cd, Zn i Cu w korzeniach niż w pędach. Stężenie metalu w organach rośliny zwiększało się wraz ze zwiększeniem stężenia MS04 w roztworze hydroponicznym. W obecności równomolowego stężenia EDTA stwierdzono znaczące zmniejszenie zawartości Cu i Zn w korzeniach badanych roślin. Dla Cd ten wpływ był stosunkowo mniejszy. Z drugiej strony, stosowanie EDTA spowodowało gwałtowny wzrost zawartości Cu w pędach, podczas gdy zawartość Cd wzrosła tylko nieznacznie, a zawartość Zn nieznacznie zmniejszyła się. Wyznaczono poziom bioakumulacji (BAF) i wartość czynnika translokacji (TF). Wartości BAF badanych metali w pędach wynosiły: 69-168 dla Zn, 3,8-11,5 dla Cu i 56-100 dla Cd (próbki bez EDT A) i 62-162 dla Zn, 34-39 dla Cu i 78-129 dla Cd (próbki z EDTA). W pędach roślin zakumulowało się z roztworu CdSO4 o stężeniu równym 12 žmol . dm-3 aż 16,9 % całkowitej ilości kadmu zaakumulowanej w całej roślinie, natomiast w obecności EDTA ten udział wzrósł do 30,9 %. Z drugiej strony, przy największym stosowanym stężeniu (60 žmol. dm-3) CdS04 w roślinach zaakumulowało się 33,5 % Cd, a w obecności EDTA wartość ta wzrosła tylko do 36,4 %.

Słowa kluczowe

EN

bioaccumulation; chelator; Matricaria recutita; toxic metals; translocation

PL

bioakumulacja; chelator; Matricaria recutita; metale toksyczne; translokacja

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Ecological Chemistry and Engineering. A
• Rocznik: 2008
• Tom: Vol. 15, nr 3
• Strony: 213--220
• Opis fizyczny: Bibliogr. 16 poz., rys., tab.

Twórcy

autor

Kralova K.

autor

Masarovičova E.

• Institute of Chemistry, Faculty of Natural Sciences, Comenius University, 842 15 Bratislava, SK, tel. [phone], fax [phone],

Bibliografia

• [1] Knirova K. and Masarovicova E.: Pharmazie 2003, SS, 359-360.
• [2] Pavlovič A., Masarovičova E., Kral'ova K. and Kubova J.: Buli. Environ. Contam. Toxicol. 2006, 77, 763-771.
• [3] Chizzola R.: Z. Arznei und Gewürtzpfl. 1998, S, 91-95.
• [4] Grejtovsky A. and Pirč R.: Appl. Bot.-Angew. Bot. 2000, 74, 169-174.
• [5] Grejtovsky A., Markušova K. and Elišova A.: Plant Soil Environ. 2006, 52, 1-7.
• [6] Kral'ova K., Masarovičova E., Kubova J. and Švajlenova O.: Acta Horticult. (ISHS) 2007, 749, 237-243.
• [7] Blaylock M., Salt D.E., Dushenkov S., Zakharova O., Gussman C., Kapulnik Y., Ensley B.D. and Raskin L: Environ. Sci. Technol. 1997, 31, 860-865.
• [8] Vassil D.A., Kapulnik Y., Raskin L and Salt, D.E.: Plant Physiol. 1998, 117, 447-453.
• [9] Luo C.L, Shen Z.G. and Li X.D.: Chemosphere 2005, 59, I-II.
• [10] Evangelou M.W.H., Bauer U., Ebel M. and Schaeffer A.: Chemosphere 2007, 68, 345-353.
• [11] Wojcik M. and Tukendorf A.: Z. Naturforsch, C-J. Biosci. 1999, 54, 754-758.
• [12] Nowack B., Schulin R. and Robinson R.H.: Environ. Sci. Technol. 2006, 40, 5225-5232.
• [13] Andersen O.: Environ. Health Persp. 1984, 5, 249-265.
• [14] Furia T.E.: [in:] Handbook of food additives, Furia T.E. (ed.), CRC Press; 1972; http://george-eby-research.com/html/stability_constants.htm.
• [15] Schaider LA, Parker D.R. and Sedlak D.L: Plant and Soil 2006, 286, 377-391.
• [16] Oviedo C. and Rodriguez J.: Quim. Nova 2003, 26, 901-905.