Reakcja owsa na zasolenie podłoża

• Autorzy: Herman B. , Biczak R. , Rychter P.

Warianty tytułu

EN

Oat Reaction on Basis Salinity

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Określono wpływ zróżnicowanego zasolenia podłoża na aktywność katalazy i peroksydazy oraz zawartość barwników asymilacyjnych i białka w siewkach owsa (Avena sativa). W przeprowadzonym eksperymencie wazonowym siewki owsa podlano roztworami wodnymi chlorku sodu, zawierającymi: 15, 30, 70 i 100 mM NaCI. Uzyskane wyniki wskazują, że zarówno zmiany aktywności badanych enzymów, jak i zawartość analizowanych składników w siewkach owsa były w dużym stopniu zależne od poziomu zasolenia podłoża. Zawartość chlorofilu całkowitego w suchej masie siewek owsa rosnącego na podłożu o niższych poziomach zasolenia była zbliżona do poziomu w roślinach kontrolnych, podczas gdy największe zasolenie wywołało spadek zawartości tego barwnika. Zawartość karotenoidów w suchej masie siewek owsa obniżała się pod wpływem zasolenia podłoża. Zasolenie podłoża wpłynęło na obniżenie zawartości białka w siewkach owsa, przy czym zmiany te były tym większe, im wyższy był poziom zasolenia gleby. Zastosowane poziomy zasolenia gleby w dużym stopniu wpłynęły także na zmianę aktywności katalazy i peroksydazy. Wzrost zasolenia podłoża działał stymulująco na aktywność peroksydazy i jednocześnie obniżał aktywność katalazy w siewkach owsa, zmiany aktywności były tym większe, im wyższy był poziom zasolenia podłoża.

EN

The prime aim of this experiment was to determine the effect of diverse salinity levels of the soil on the catalase and peroxidase activity, as well as the assimilation pigments and protein content in oats seeders (Avena sativa). In the pot experiment, the seeders of oat were watered with the solutions of sodium chloride containing 15, 30, 70 and 100 mM NaCI, respectively. The research results have proved that the salinity levels applied to the basis influenced not only the change in the activity of the enzymes studied but also the component contents. The level of the chlorophyll in oat seeders, in dry matter, growing on the weak saline basis, was similar to the level in the control plants; whilst higher salinity caused the decrease of the contents of the pigment concerned. The carotenoid contents in oat seeders in dry matter were gradually decreasing during the salinity process. The basis salinity caused the lowering of protein level in oat seeders; at the same times the stronger basis salinity was the greater the change was. The applied salinity levels influenced, to a large extend the changes in the catalase and peroxidase activity. The basis salinity increase stimulated the peroxidase activity, simultaneously, lowering the catalase activity in oat seeders; the stronger the soil salinity was the greater the change was.

Słowa kluczowe

PL

zasolenie; owies; chlorofil; kartenoidy; białko; katalaza; peroksydaza

EN

salinity; oat; chlorophyll; cartenoides; protein; catalase; peroxidase

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Chemia i Inżynieria Ekologiczna
• Rocznik: 2003
• Tom: Vol. 10, nr S1
• Strony: 73--80
• Opis fizyczny: Bibliogr. 35 poz., rys., tab.

Twórcy

autor

Herman B.

• Katedra Biochemii, Instytut Chemii i Ochrony Środowiska, Wyższa Szkoła Pedagogiczna w Częstochowie, al. Armii Krajowej 13/15, 42-200 Częstochowa, tel. [phone], fax [phone]

autor

Biczak R.

• Katedra Biochemii, Instytut Chemii i Ochrony Środowiska, Wyższa Szkoła Pedagogiczna w Częstochowie, al. Armii Krajowej 13/15, 42-200 Częstochowa, tel. [phone], fax [phone]

autor

Rychter P.

• Katedra Biochemii, Instytut Chemii i Ochrony Środowiska, Wyższa Szkoła Pedagogiczna w Częstochowie, al. Armii Krajowej 13/15, 42-200 Częstochowa, tel. [phone], fax [phone]

Bibliografia

• [1] Villara G., Moreno D. A.. Pulgar G. i Romero L.: Yield improvement in zucchini under sail stress- determining micronutrient balance. Sci. Horticult.. 2000,86, 175-183.
• [2] Mohammad M., Shibli R., Ajlouni M. I Nimri L.: Tomato Root and Shoot Responses to Salt Stress Under Different Levels of Phosphorus Nutrition. J. Plant Nutr., 1998, 21(8), 1667-1680.
• [3] Kaya C., Kirnak H., Higgs D. i Saltali K.: Suplementary calcium enhances plant growth and fruit yield in strawberry cultivars grown at high (NaCl) salinity. Sci. Horticult., 2002, 93, 65-74.
• [4] Pessarakli M.: Dry matter yield. Nitrogen-15 absorption. and water uptake by green bean under sodium Chloride stress. Crop Sci., 1991, 31, 1633-1640.
• [5] Rodriguez-López J. N., Espin J. C., Tudela J., Martinez V., Cerda A. i Garcia-Canovas F.: Purification and kinetic characterization of peroxidase from tomato cultivated under different salinitv conditions J Food Sci., 2000, 65(1), 15-19.
• [6] Sohan D., Jason i R. i Zajicek J.: Plant - wafer relations of NaCl and calcium-treated sunflower plants. Environ. Exp. Bot., 1999, 42, 105-111.
• [7] Hernandez J. A., Almansa M. S., del Rio L. i Sevilla F.: Effect of salinity on metalloenzymes of oxygen metabolism in two leguminous plants. J. Plant Nutr., 1993, 16( 12), 2539-2554.
• [8] Sudhakar C., Lakshmi A. i Giridarakumar S.: Changes in the antioxidant enzyme efficacy in two high yielding genotypes of mulberry (Morus alba L.) under NaCl salinity. Plant Sci., 2001, 161, 613-619.
• [9] Evers D., Schmit C., Mailliet Y. i Hausman J.F.: Growth characteristics and biochemical changes of poplar shoots in vitro under sodium chloride stress. J. Plant Physiol., 1997, 151(6), 748-753.
• [10] Sairam R. K., Rao K., V. i Srivastava G. C.: Differential response of wheat genotypes to long term salinity stress in relation to oxidative stress, antioxidant activity and osmolyte concentration. Plant Sci., 2002, 163, 1037-1046.
• [11] Hernandez J. A., Olmos E., Corpas F. J. Sevilla F. i del Rio L.: Salt-induced oxidative stress in chloroplasts of pea plants. Plant Sci., 1995, 105, 151-167.
• [12] Sancho M. A., de Forchetti S. M., Pliego F., Valpuesta V. i Quesada M.A.: Peroxidase activity and isoenzymes in the culture medium of NaCl adapted tomato suspension cells. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 1996, 44, 161-167.
• [13] Mittal R. i Dubey R.S.: Behaviour of polyphenol oxidase. IAA oxidase and catalase in germinating rice in relation to salt tolerance. J. Agron. Crop. Sci., 1992, 169, 270-280.
• [14] Misra A. N., Sahu S. M. i Misra M.: Soil salinity induced changes in pigment and protein contents in cotyledons and leaves of Indian mustard (Brassica juncea Coss.). Acta Physiol. Plant., 1995, 17(4), 375-380.
• [15] Pannerselvam R., Muthukumarasamy M. i Karokalan L.: Tridimefon enhances growth and net photosynheric rate in NaCl stressed plants of Raphanus sativus L. Photosynthetica, 1997, 34(4), 605-609.
• [16] Khan M.A. i Aziz S., Some aspects of salinity, plant density and nutrient effects on Cresa cretica L., J-Plant Nutr., 1998, 21(4), 769-784.
• [17] Sultana R. Ikeda T. i Itoh R.: Effect of NaCl salinity on pholosynthesis and dry matter accumulation in developing rice grains. Environ. Exp. Bot., 1999, 42, 211-220.
• [18] Perez-Alfocea F., Santa-Cruz A., Guerrier G. i Bolarin M. C.: NaCl stress-induced organic solute changes on leaves and calli of Lycopersicon esculentum L. penelli and their interpecific hybrid. J. Plant. Physiol., 1994, 143, 106-111.
• [19] Gossett D. R., Millhollon E. P. I Cran Lucas M: Antioxidant response to NaCl stress in salt-tolerant and salt-sensitive cultivar of cotton. Crop. Sci., 1994, 34, 706-714.
• [20] Lechno S., Zamski E. I Tel-Or E.: Salt stress – induced responses in cucumber plants. J. Plant. Physiol., 1997, 150(1-2), 206-211.
• [21] Sairam R. K., Srivastanava G. C.: Changes in antioxidant activity in sub-cellular fractions of tolerant and susceptible wheat genotypes in response to long term salt stress. Plant Sci., 2002, 162, 897-904.
• [22] Winicov I. I Bastola D. R.: Salt tolerance in crop plants: new approaches through tissue and gene regulation. Acta Physiol. Plant., 1997, 19(4), 435-449.
• [23] Olmos E. I Hellin E.: Cellular adaptation from a salt-tolerant cell line of Pisum sativum. J. Plant Physiol., 1996, 148, 727-734.
• [24] Sreenivasulu N., Ramanjulu S., Ramachandra-Kini K., Prakash H. S., Shekar-Shetty H., Savithri H. S. i Sudhakar C.: Total peroxidase activity and peroxidase isoforms as modified by salt stress in two cultiwars of fox-tail millet with differential salt tolerance. Plant Sci., 1999, 141, 1-9.
• [25] Prochazkova D., Sairam R., K., Srivatava G. C. I Singh D. V.: Oxidative stress and antioxidant activity as the basic of senescence in maize leaves. Plant Sci., 2001, 161, 765-771.
• [26] Silveira J. A. G., Melo A. R. B., Viegas R. A. i Oliveira J. T. A.: Salinity-induced effect on nitrogen assimilation related to growth in cowpea plants. Environ. Exp. Bot., 2001 ,46, 171 -179.
• [27] Garg B. K., Vyas S. P., Kathju S., Lahiri A. N., Mali P. C. i Sharma P.C.: Salinity-fertilitv interaction on growth, mineral composition and nitrogen metabolism of Indian mustard. J. Plant Nutr., 1993 16(9), 1637-1650.
• [28] Morales C., Cusido R. M Palazon J. i Bonfill M.: Response of Digitalis purpurea plants to temporal salinity. J. Plant Nutr., 1993, 16(2), 327-335.
• [29] Gardiner M.G. i Cleland R.: Peroxidase changes during the cessation of elongation in Pisum sativum stems. Phytochemistry, 1974, 13, 1095-1098.
• [30] Bergmeyer H.U.: Methods of enzymatic analysis. Academic Press, New York 1963.
• [31] Oren R., Werk K. S., Buchmann N. i Zimmermann R.: Chlorophvll-nutrient relationships identify nutritionally caused decline in Pibea abies stands. Can. J. Forest Res., 1993, 23 1187-1195.
• [32] Rutkowska U.: Wybrane metody badania składu i wartości odżywczej żywności. PZWL, Warszawa 1981.
• [33] Garcia-Sanchez F., Jifon J. L., Carvajal M. i Syvertsen J. P.: Gas exchange, chlorophyll and nutrient contents in relation to Na+ and Cl- accumulation in 'Sunburst’ mandarin grafted on different rootstocks. Plant Sci., 2002, 162, 705-712.
• [34] Cordovilla M. P., Ligero F. i Lluch C.: Effect of salinity on growth, nodulation and nitrogen assimilation in nodules of faba bean (Vicia faba L.). Appl. Soil Ecol., 1999, 11, 1-7.
• [35] Dionisio-Sese M. L. I Tobita S.: Antioxidant responses of rice seedlings to salinity stress. Plant Sci., 1998, 135, 1-9.