PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
Powiadomienia systemowe
  • Sesja wygasła!
  • Sesja wygasła!
Tytuł artykułu

Reakcja fasoli szparagowej na zasolenie podłoża

Treść / Zawartość
Identyfikatory
Warianty tytułu
EN
French bean reaction on basis salinity
Języki publikacji
PL
Abstrakty
PL
W przeprowadzonym eksperymencie wazonowym określono wpływ zróżnicowanego zasolenia podłoża na aktywność katalazy i peroksydazy oraz zawartość chlorofilu całkowitego i karotenoidów w liściach fasoli szparagowej (Phaseolus vulgaris L., cv Złota Saxa). Rośliny potraktowano doglebowo roztworami chlorku sodu zawierającymi: 5, 10, 20 i 30 mM NaCl. Uzyskane wyniki wykazały, że zarówno zmiany aktywności badanych enzymów, jak i zawartości barwników asymilacyjnych w liściach roślin były w dużym stopniu zależne od poziomu zasolenia gleby. Zasolenie podłoża prowadziło do wzrostu aktywności peroksydazy w liściach fasoli, wielkość zmian była wprost proporcjonalna do poziomu zasolenia. Aktywność katalazy w liściach fasoli rosnącej na podłożu o niższych poziomach zasolenia była zbliżona do aktywności w roślinach kontrolnych, podczas gdy wyższe zasolenia wywołały spadek aktywności tego enzymu. Zasolenie podłoża wpłynęło także na obniżenie zawartości chlorofilu i karotenoidów w liściach fasoli, przy czym zmiany te były tym większe im wyższy był poziom zasolenia gleby.
EN
The effect of various soil salinities on changes of catalase and peroxidase activity, content of total chlorophyll and carotenoides in leaves of French bean (Phaseolus vulgaris L., cv Golds Saxa) in the pot experiments was determined. The plants were watered with a solution of sodium chloride containing 5, 10, 20 and 30 mM NaCl. The results have proved that the salinity levels applied to the basis influenced not only the change in the activity of the enzymes studied but also assimilation pigments content in leaves of plants. The basis salinity caused increase the peroxidase activity in leaves of bean and was directly proportional to the level of basis salinity. Activity of the catalase in leaves of bean growing in soil containing lower levels of salinity was similar to the activity in control plants, while higher salinities caused considerable drop in activity of these enzyme. As expected excessive salinity of soil caused decrease of chlorophyll and carotenoides level in tested plants. The higher salinity level was, the more erident changes were observed.
Słowa kluczowe
Rocznik
Tom
Strony
111--120
Opis fizyczny
Bibliogr. 42 poz., rys., tab.
Twórcy
autor
autor
autor
  • Instytut Chemii, Ochrony Środowiska i Biotechnologii, Akademia im. Jana Długosza, 42-200 Częstochowa, Armii Krajowej 13/15, Polska, b.herman@ajd.czest.pl
Bibliografia
  • 1. Evers D., Hemmer K., Hausman J.F., Salt stress induced biometric and physiological changes in Solanum tuberosum L. cv. Bintje grown in vitro, Acta Physiol. Plant. 20(1), 1998, s. 3–7.
  • 2. Telesiński A., Nowak J., Smolik B., Dubowska A., Skrzypiec N., Effect of soil salinity on activity of antioxidant enzymes and content of ascorbic acid and phenols in bean (Phaseolus vulgaris L.) plants , J. Elementol., 13(3), 2008, s. 401–409.
  • 3. Pérez-Tornero O., Tallón C.I., Porras I., Navarro J.M., Physiological and growth changes in micropropagated Citrus macrophylla explants due to salinity, J. Plant Physiol., 166, 2009, s. 1923–1933.
  • 4. Matuszak R., Brzóstowicz A., Ocena wpływu chlorku sodu na wzrost siewek dwóch odmian jęczmienia, Acta Agroph., 7(4), 2006, s. 977–982.
  • 5. Matuszak R., Baranowski P., Walczak R.T., Brzóstowicz A., Ocena wpływu zasolenia na wzrost, fotosyntezę, potencjał wody i temperaturę liści siewek pszenicy odmiany Almari, Acta Agroph., 4(1), 2004, s. 97–103.
  • 6. Sajid Z.A., Aftab F., Amelioration of salinity tolerance in Solanum tuberosum L. by exogenous application of ascorbic acid, In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant, 45, 2009, s. 540–549.
  • 7. Tuna A.L., Kaya C., Higgs D., Murillo-Amador B., Aydemir S., Girgin A.R., Silicon improves salinity tolerance in wheat plants, Environ. Exp. Bot., 62, 2008, s. 10–16.
  • 8. Wang W.B., Kim Y.H., Lee H.S., Kim K.Y., Deng X.P., Kwak S.S., Analysis of antioxidant enzyme activity during germination of alfalfa under salt and drought stresses, Plant Physiol. Biochem., 47, 2009, s. 570–577.
  • 9. Hafsi C., Romero-Puertas M.C., del Rio L.A., Sandalio L.M., Abdelly C., Differential antioxidative response in barley leaves subjected to the interactive effects of salinity and potassium deprivation, Plant Soil, 334, 2010, s. 449–460.
  • 10. Qin J., Dong W.Y., He K.N., Chen J., Liu J., Wang Z.L., Physiological responses to salinity in Silver buffaloberry (Shepherdia argentea) introduced to Qinghai highcold and saline area, China, Photosynthetica, 48(1), 2010, s. 51–58.
  • 11. Sudhakar C., Lakshmi A., Giridarakumar S., Changes in the antioxidant enzyme efficacy in two high yielding genotypes of mulberry (Morus alba L.) under NaCl salinity, Plant Sci., 161, 2001, s. 613–619.
  • 12. Eyidogan F., Öz M.T., Effect of salinity on antioxidant responses of chickpea seedlings, Acta Physiol. Plant, 29, 2007, s. 485–493.
  • 13. Tanou G., Molassiotis A., Diamantidis G., Induction of reactive oxygen species and necrotic death-like destruction in strawberry leaves by salinity, Environ. Exp. Bot., 65, 2009, s. 270–281.
  • 14. Telesiński A., Smolik B., Skrzypiec N., Nowak J., Kształtowanie się aktywności katalazy I peroksydazy na tle zmian zawartości fluorków w roślinach fasoli po wprowadzeniu do gleby różnych dawek NaF, Ochrona Środowiska i Zasobów Naturalnych, 41, 2009, s. 219–226.
  • 15. Multu S., Atici Ö., Nalbantoglu B., Effects of salicylic acid and salinity on apoplastic antioxidant enzymes in two wheat cultivars differing in salt tolerance, Biol. Plant., 53(2), 2009, s. 334–338.
  • 16. Maia J.M., Costa de Macedo C.E., Voigt E.L., Freitas J.B.S., Silveira J.A.G, Antioxidative enzymatic protection in leaves of two contrasting cowpea cultivars under salinity, Biol. Plant., 54(1), 2010, s. 159–163.
  • 17. Sairam R.K., Rao K.V., Srivastava G.C., Differential response of wheat genotypes to long term salinity stress in relation to oxidative stress, antioxidant activity and osmolyte concentration, Plant Sci., 163, 2002, s. 1037–1046.
  • 18. Noreen Z., Ashraf M., Assessment of variation in antioxidative defence system in salt-treated pea (Pisum sativum) cultivars and its putative use as salinity tolerance markers, J. Plant Physiol., 166, 2009, s. 1764–1774.
  • 19. Nagesh Babu R., Devaraj V.R., High temperature and salt stress response in French bean (Phaseolus vulgaris), Austr. J. Crop Sci., 2(2), 2008, s. 40–48.
  • 20. Shafi M., Bakht J., Hassan M.J., Raziuddin M., Zhang G., Effect of cadmium and salinity stresses on growth and antioxidant enzyme activities of wheat (Triticum aestivum L.), Bull. Environ. Contam Toxicol., 82, 2009, s. 772–776.
  • 21. Evers D., Schmit C., Mailliet Y., Hausman J.F., Growth characteristics and biochemical changes of poplar shoots in vitro under sodium chloride stress, J. Plant Physiol., 151(6), 1997, s. 748–753.
  • 22. Sreenivasulu N., Ramanjulu S., Ramachandra-Kini K., Prakash H.S., Shekar-Shetty H., Savithri H.S., Sudhakar C., Total peroxidase activity and peroxidase isoforms as modified by salt stress in two cultivars of fox-tail millet with differential salt tolerance, Plant Sci., 141, 1999, s. 1–9.
  • 23. Víllora G., Moreno D.A., Pulgar G., Romero L., Yield improvement in zucchini under salt stress: determining micronutrient balance, Sci. Hort., 86, 2000, s. 175–183.
  • 24. Herman B., Biczak R., Rychter P., Reakcja owsa na zasolenie podłoża, Chemia i Inżynieria ekologiczna, 10(S1), 2003, s. 73–80.
  • 25. Sultana N., Ikeda T., Itoh R., Effect of NaCl salinity on photosynthesis and dry matter accumulation in developing rice grains, Environ. Exp. Bot., 42, 1999, 211– 220.
  • 26. Muscolo A., Panuccio M.R., Sidari M., Effects of salinity on growth, carbohydrate metabolism and nutritive properties of kikuyu grass (Pennisetum clandestinum Hochst), Plant Sci., 164, 2003, s. 1103–1110.
  • 27. Lutts S., Kinet J.M., Bouharmont J., NaCl-induced senescence in leaves of rice (Oryza sativa L.) cultivars differing in salinity resistance, Annals Bot., 78, 1996, s. 389–398.
  • 28. Prochazkova D., Sairam R.K., Srivastava G.C., Singh D.V., Oxidative stress and antioxidant activity as the basis of senescence in maize leaves, Plant Sci., 161, 2001, s. 765–771.
  • 29. Kaya C., Kirnak H., Higgs D., Saltali K., Supplementary calcium enhances plant growth and fruit yield in strawberry cultivars grown at high (NaCl) salinity, Sci. Hort., 93, 2002, s. 65–74.
  • 30. Parida A.K., Das A.B., Salt tolerance and salinity effects on plants: a review, Ecotox. Environ. Safety, 60, 2005, s. 324–349.
  • 31. Hameed M., Ashraf M., Physiological and biochemical adaptations of Cynodon dactylon (L.) Pers. from the Salt Range (Pakistan) to salinity stress, Flora, 203, 2008, s. 683–694.
  • 32. Meloni D.A., Gulott M.R., Martínez C.A., Salinity tolerance in Schinopsis guebrachto colorado: Seed germination, growth, ion relations and metabolic responses, J. Arid Environ., 72, 2008, s. 1785–1792.
  • 33. Zeid I.M., Effect of arginine and urea on polyamines content and growth of bean under salinity stress, Acta Physiol. Plant., 31, 2009, s. 65–70.
  • 34. Silva E.N., Ribeiro R.V., Ferreira-Silva S.L., Viégas R.A., Silveira J.A.G., Comparative effects of salinity and water stress on photosynthesis, water relations and growth of Jatropha curcas plants, J. Arid Environ., 74, 2010, s. 1130–1137.
  • 35. Gardiner M.G. , Cleland R., Peroxidase changes during the cessation of elongation in Pisum sativum stems, Phytochem., 13, 1974, s. 1095–1098.
  • 36. Bergmeyer H.U., Methods of enzymatic analysis. – Academic Press, 888, New York, 1963.
  • 37. Oren R., Werk K.S., Buchmann N., Zimmermann R.: Chlorophyll-nutrient relationships identify nutritionally caused decline in Pibea abies stands, Can, J. For. Res., 23, 1993, s. 1187–1195.
  • 38. Chai Y.Y., Jiqang C.D., Shi L., Shi T.S., Gu W.B., Effects of exogenous spermine on sweet sorghum during germination under salinity, Biol. Plant., 54(1), 2010, s. 145–148.
  • 39. Braber J.M., Catalase and peroxidase in primary bean leaves during development and senescence, Z. Pflanzenphysiol. Bd., 97, 1980, s. 135–144.
  • 40. Swaraj J.K., Laura S., Bishnoi N.R., Nitrate induced nodule senescence and changes in activities of enzymes scavenging H2O2 in clusterbean (Cyamopsis tetragonaloba Taub.), J. Plant Physiol., 126, 1993, s. 293–296.
  • 41. García-Sánchez F., Jifon J.L., Carvajal M., Syvertsen J.P., Gas exchange, chlorophyll and nutrien contents in relation to Na+ and Cl- accumulation in ‘Sunburst’ mandarin grafted on different rootstocks, Plant Sci., 162, 2002, s. 705–712.
  • 42. Sairam R.K., Srivastava G.C., Changes in antioxidant activity in sub-cellular fractions of tolerant and susceptible wheat genotypes in response to long term salt stress, Plant Sci., 162, 2002, s. 897–904.
Typ dokumentu
Bibliografia
Identyfikator YADDA
bwmeta1.element.baztech-article-BPC6-0006-0004
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.