Aktywność przeciwgrzybowa szczepów Trichoderma harzianum odpornych na iprodion

Gębarowska, E.; Szumny, A.; Anioł, M.; Gliszczyńska, A.; Pietr, S. J.

doi:dx.medra.org/10.12916/przemchem.2014.1161

Artykuł - szczegóły

Tytuł artykułu

Aktywność przeciwgrzybowa szczepów Trichoderma harzianum odpornych na iprodion

Autorzy

Gębarowska E. , Szumny A. , Anioł M. , Gliszczyńska A. , Pietr S. J.

Wybrane pełne teksty z tego czasopisma

https://przemyslchemiczny.com/

Identyfikatory

DOI

dx.medra.org/10.12916/przemchem.2014.1161

Warianty tytułu

Antifungal activity of Trichoderma harzianum strains resistance to iprodione

Języki publikacji

Abstrakty

Badano możliwość wykorzystania szczepów macierzystych T. harzianum (F85, F86) i ich mutantów odpornych na iprodion, w biologicznej i zintegrowanej ochronie roślin, na podstawie oceny do produkcji metabolitów przeciwgrzybowych w warunkach in vitro. Metabolity lotne oraz ekstrahowane do fazy organicznej hamowały wzrost Fusarium culmorum, Rhizoctonia solani oraz Sclerotinia sclerotiorum, ale ich aktywność była zróżnicowana. Najbardziej wrażliwy na metabolity ekstrahowane do fazy organicznej był szczep Rh. solani, a na lotne szczep S. sclerotiorum. Największą zdolność do produkcji metabolitów lotnych i ekstrahowanych, aktywnych w stosunku do testowanych fitopatogenów, wykazywały szczepy macierzyste T. harzianum F85 i F86 oraz mutant F84-247 i F86-263. W obecności procymidonu aktywność przeciwgrzybowa metabolitów lotnych produkowanych przez mutanty pozostawała bez zmian, tak jak i zdolność do biosyntezy 6-n-pentylo-2H-piran-2-onu (6PAP) przez szczep F86-263. Natomiast zdolność do wydzielania metabolitów lotnych przez szczepy macierzyste została ograniczona. Ocena zdolności do produkcji metabolitów przeciwgrzybowych przez mutanty T. harzianum odporne na iprodion, wykazała, że możliwe do wykorzystania zarówno w biologicznej, jak i w zintegrowanej ochronie roślin w połączeniu z fungicydami należałoby uznać dwa szczepy F85-247 i F86-263. Ponadto szczepy F86 i F86-263 można wykorzystać na skalę przemysłową do produkcji 6PAP lub jako naturalne fungicydy.

Wild-type T. harzianum strains F85 and F86 as well as their mutants resistant to iprodione used in biol. and integrated plant protection were studied for prodn. of antifungal metabolites in vitro. The metabolites volatile and extd. to org. solvents inhibited growth of Fusarium culmorum, Rhizoctonia solani and Sclerotinia sclerotiorum. For the extd. metabolites, the strain Rh. solani, and for volatile ones the strain S. sclerotiorum were most sensitive. The wild strains T. harzianum and their mutants F84-247 and F86-263 iprodione resistant showed the highest ability for biosynthesis of volatile and non-volatile metabolites.The presence of procymidone did effect neither antifunagal activity of volatile metabolites produced by mutants T. harzianum nor the ability to biosynthesis to 6-n-pentyl-2H-pyran-2-one 6PAP by T. harzianum strains F86-263.

Słowa kluczowe

Trichoderma harzianum biologiczna ochrona roślin ochrona przeciwgrzybowa metabolity roślinne

Trichoderma harzianum biological plant protection antifungal preservation plant metabolites

Wydawca

Wydawnictwo SIGMA-NOT

Czasopismo

Przemysł Chemiczny

Rocznik

2014

Tom

T. 93, nr 7

Strony

1161--1165

Opis fizyczny

Bibliogr. 38 poz., wykr.

Twórcy

autor

Gębarowska E.

elzbieta.gebarowska@up.wroc.pl

Zakład Mikrobiologii Rolniczej, Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu, ul. Grunwaldzka 53, 53-636 Wrocław

autor

Szumny A.

Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu

autor

Anioł M.

Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu

autor

Gliszczyńska A.

Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu

autor

Pietr S. J.

Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu

Bibliografia

1. Regulacje prawne Parlamentu Europejskiego i Rady Wspólnoty Europejskiej Rozporządzenie nr 1107/2009 i Dyrektywa nr 2009/128/WE z dn. 21 października 2009 r.
2. E. Gębarowska, A. Szumny, M. Adamski, S.J. Pietr, Przem. Chem. 2013, 92, nr 5, 746.
3. T. Benitez, A.M. Rincon, A.C. Codon, Intern. Microbiol. 2004, 7, 249.
4. E. Wojtkowiak-Gębarowska, Post. Mikrobiol. 2006, 45, nr 4, 261.
5. F. Vinalea, K. Sivasithamparam, E.L. Ghisalberti, R. Marraa, S.L. Wooa, M. Loritoa, Soil Biol. Biochem. 2008, 40, 1.
6. K. Sivasithamparam, E.L. Ghisalberti, Trichoderma and Gliocladium. Basic biology, taxonomy and genetics (red. Ch.P. Kubicek i G.E. Harman), London, Taylor i Francis Ltd, Padstow, 1998, 1, 139.
7. A. El-Hasan, H. Buchenauer, J. Phytopathol. 2009, 157, 697.
8. S.R. Parker, H.G. Cutler, J.M. Jacyno, R. Hill, J. Agric. Food Chem. 1997, 45, 2774.
9. R.J. Horvat, G.W. Chapman, J.A. Robertson, F.I. Meredith, R. Scorza, A.M. Callahan, J. Agricul. Food Chem. 1990, 38, nr 1, 234.
10. R. Pezet, V. Pont, R. Tabacchi, Phytochem. Anal. 1999, 10, 285.
11. H.G. Cutler, R.H. Cox, F.G. Crumley, P.D. Cole, Agric. Biol. Chem. 1986, 50, 2943.
12. J.L. Reino, F.G. Guerrero, R. Hernandez-Galas, I.G. Collado, Phytochem. Rev. 2008, 7, 89.
13. Y. Elad, I. Chet, Y. Henis, Can. J. Microbiol. 1982, 28, 719.
14. R. Lifschitz, S. Lifschitz, R. Baker, Plant Disease 1985, 69, 431.
15. I. Chet, Y. Elad, A. Kalfon, Y. Hadar, J. Katan, Phytopathology 1982, 71, 286.
16. Cz. Ślusarski, S.J. Pietr, Crop Protec. 2009, 28, 668.
17. J.R. Cook, Am. J. Alternative Agric. 1988, 3, 51.
18. G.C. Papavizas, J.A. Lewis, Fungi in biological control systems, (red. M.N. Burge), Manchester University Press, New York 1988, 235.
19. Y. Elad, A.N. Shtienberg, A. Niv, Brighton Crop Prot. Conf. Pests Diseases 1994, 1-3, 1109.
20. T.M. O’Neill, Y. Elad, D. Shtienberg, A. Cohen, Biocontrol Sci. Technol. 1996, 6, 139.
21. G.C. Papavizas, J.A. Lewis, T.H. Abd-El Moity, Phytopathology 1982, 72, 126.
22. T.H. Abd-El Moity, G.S. Papvizas, M.N. Shatla, Phytopathology 1982, 92, 396.
23. M. Stankiewicz, S.J. Pietr, E. Gajewska, P.P Jaśkiewicz, Drobnoustroje w środowisku. Występowanie, aktywność i znaczenie. (red. Barabasz), AR w Krakowie, 1997, 631.
24. S.J. Pietr, M. Stankiewicz, E. Wojtkowiak-Gębarowska, K. Matkowski, A. Biesiada, IOBC WPRS, Biulletyn, 2004, 27, 235.
25. E. Wojtkowiak-Gębarowska, praca doktorska, Akademia Rolnicza we Wrocławiu, 2005.
26. F.M. Barakat, K.A. Abada, N.M.Abou-Zeid, Y.H.E. El-Gammal, Research WebPub 2013, 1, 42.
27. C. Dennis, J. Webster, Trans. Br. Mycol. Soc. 1971, 57, 25.
28. E. Wojtkowiak-Gębarowska, S.J. Pietr, Phytopathol. Pol. 2006, 41, 51.
29. C. Dennis, J. Webster, Trans. Br. Mykol. Soc. 1971, 57, 41.
30. E. Gębarowska, S.J. Pietr, Zeszyty Naukowe UP we Wrocławiu, Nr 589, Rol. CIII, 81.
31. Zgł. pat. pol. P-400136 (2012).
32. F.T. Shaikih, S. Nasreen, Ind. J. Appl. Res. 2013, 3, 57.
33. H. Benoni, K. Taraz, H. Korth, G. Pulverer, Naturwissenschaften 1990, 77, 539.
34. E.L. Ghisalberti, M.J. Narbey, M.M. Dewan, K. Sivasithamparam, Plant Soil 1990, 121, 287.
35. C.R. Howell, Trichoderma and Gliocladium Basic biology, taxonomy and genetics (red. Ch.P. Kubicek i G.E. Harman), London, Taylor i Francis Ltd, Padstow, 1998, 2, 173.
36. E.Ch. Jeyaseelan, S. Tharmila, K. Niranjan, Arch. Appl. Sci. Res. 2012, 4, 1623.
37. C.R. Rini, K.K. Sulochana, J. Trop. Agric. 2007, 45, 21.
38. A. Tapwal, U. Singh, J.A. de Silvia, G. Singh, S. Gargh, R. Cumar, Pest Technol. 2011, 5, 59.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.baztech-aa2314b3-931f-48c5-87b7-2e72fee470e1