PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
Tytuł artykułu

Aktywność metaboliczna grzybni trufli letniej Tuber aestivum/Tuber uncinatum Vittad

Treść / Zawartość
Identyfikatory
Warianty tytułu
EN
Metabolic activity of Tuber aestivum/Tuber uncinatum Vittad mycellium
Języki publikacji
PL
Abstrakty
PL
Celem prezentowanych badań było oznaczenie aktywności enzymów wydzielanych do podłoża przez dwie formy trufli letniej: Tuber aestivum i Tuber uncinatum Vittad. W pracy wykazano, że T. aestivum i T. uncinatum uwalniają do podłoża hodowlanego białka enzymatyczne o aktywności: lakazy, proteazy, lipazy oraz celulazy i ksylanazy. Analiza aktywności enzymatycznej w płynnych hodowlach obu form trufli letniej wykazała znaczne różnice biochemiczne pomiędzy nimi. Obserwowano zdecydowanie większą aktywność zewnątrzkomórkowych enzymów u T. aestivum, szczególnie lakazową i peptydazową. Wyniki badań wskazują na różną swoistość substratową lipaz wydzielanych przez te trufle: T. uncinatum syntetyzuje lipazy wykazujące aktywność tylko do octanu p-nitrofenolu, natomiast T. aestivum – także do palmitynianu p-nitrofenolu. W hodowlach obu form trufli wykryto niewielką aktywność celulolityczną i ksylanolityczną. Ksylanazy i celulazy oraz lakazy wydzielane przez grzybnię obu form tych trufli mogą brać udział w procesie zawiązywania symbiozy mykoryzowej.
EN
Truffle have long been appreciated for their culinary value. However, knowledge about their biochemical activity is still insufficient. Therefore, the aim of this study was to preliminarily assess the enzymatic activity of two forms of summer truffle (Tuber aestivum Vittad.). The results showed that studied fungi of the genus truffle (Tuber spp.) – T. aestivum and T. uncinatum secrete extracellular enzymatic proteins with activities of: laccase, protease lipase, cellulase and xylanase. The high activity of the enzyme was observed between 10th and 20th day of truffle cultivation in liquid culture. Higher activity of all tested enzymes was detected in the culture of T. aestivum. Significant differences observed in the level and kind of enzymatic activity might indicate different metabolic activity of studied forms of summer truffle.
Wydawca
Rocznik
Strony
59--68
Opis fizyczny
Bibliogr. 26 poz.
Twórcy
  • Szkoła Głowna Gospodarstwa Wiejskiego w Warszawie, Wydział Rolnictwa i Biologii, Katedra Biochemii, ul. Nowoursynowska 159, 02-776 Warszawa
autor
  • Instytut Technologiczno-Przyrodniczy w Falentach, Zakład Biologii Środowiska i Higienizacji Wsi
autor
  • Szkoła Główna Gospodarstwa Wiejskiego w Warszawie, Samodzielny Zakład Biologii Mikroorganizmów
  • Instytut Badawczy Leśnictwa w Sękocinie
Bibliografia
  • 1. ANTCZAK T. 2001. Lipazy grzybowe Mucor circinelloides i Mucor racemosus: otrzymywanie i katalityczne właściwości. Zeszyty Naukowe Politechniki Łódzkiej. Rozprawy Naukowe. Z. 298. ISSN 0137-4834 ss. 175.
  • 2. ARIAS M. E., ARENAS M., RODRIGUEZ J., SOLIVERI J., BALL A. S., HERNÁNDEZ M. 2003. Kraft pulp biobleaching and mediated oxidation of a nonphenolic substrate by laccase from Streptomyces cyaneus CECT 3335. Applied and Environmental Microbiology. Vol. 69. Iss. 4 s. 1953–1958.
  • 3. BALIEY M. J., BIELY P., POUTANEN K. 1992. Interlaboratory testing of methods for assay of xylanase activity. Journal of Biotechnology. Vol. 23. Iss. 3 s. 257–270.
  • 4. BELOVA O., VLISOV A., VINOKUROVAN G., KOSTENEVICH A., ASAPUNOVA L., LOBANOK A.G., LEONTIEVSKY A.A. 2014. Xylanase and cellulase of fungus Cerrena unicolor VKM F-3196: Production, properties, and applications for the saccharification of plant material. Applied Biochemistry and Microbiology. Vol. 50. No. 2 s. 148–153.
  • 5. CSORBAINÉ A.G., EDVI G., GODÓ N., DIMÉNY J. 2009. Myccorhization experiments with summer truffle (Tuber aestivum Vitt.). W: First Conference on the „European” Truffle Tuber aestivumluncinatum. Vienna, 6–8.11.2009. Wiedeń. University of Vienna s. 6–7.
  • 6. DESHPANDE S.K., BHOTMANGE M.G., CHAKRABARTI T., SHASTRI P.N. 2008. Production of cellulose and xylanase by Trichoderma reesei (QM 9414 mutant), Aspergillus niger and mixed culture by solid state fermentation (SSF) of water hyacinth (Eichhornia crassipes). Indian Journal of Chemical Technology. Vol. 15. Iss. 5 s. 449–456.
  • 7. FERNANDES L., LOGUERCIO-LEITE C., ESPOSITO E., REIS M. M. 2005. In vitro wood decay of Eucalytpus grandis by the basidiomycete fungus Phellinus flavomarginatus. International Biodeterioration and Biodegradation. Vol. 55. Iss. 3 s. 187–193.
  • 8. HALL I.R., YUN W., AMICUCCI A. 2003. Cultivation of edible ectomycorrhizal mushrooms. Trends in Biotechnology. Vol. 21. Iss. 10 s. 433–438.
  • 9. HILSZCZAŃSKA D. 2009. Propozycja mikoryzacji sadzonek drzew leśnych z udziałem trufli letniej (Tuber aestivum) w Polsce. Sylwan. R. 153. Z. 4 s. 281–286.
  • 10. JANKIEWICZ U., KILISZCZYK A., RUSSEL S. 2012. Charakterystyka właściwości proteolitycznych dwóch wybranych szczepów bakterii z rzędu Myxococcales. Woda-Środowisko-Obszary Wiejskie. T. 3. Z. 3 (39) s. 53–62.
  • 11. LI A., ZHU Y., XU L., ZHU W., TIAN X. 2008. Comparative study on the determination of assay for laccase of Trametes sp. African Journal of Biochemistry Research. Vol. 2. Iss. 8 s. 181–183.
  • 12. LI L., SINGH P., LIU Y., PAN S., WANG G. 2014. Diversity and biochemical features of culturable fungi from the coastal waters of Southern China. AMB Express. Vol. 4. Iss. 60 s. 1–11.
  • 13. MACCHIONE M. M., MERHEB C.W., GOMES E., DA SILVA R. 2008. Protease production by different thermophilic fungi. Applied Biochemistry and Biotechnology. Vol. 146. Iss. 1–3 s. 223–230.
  • 14. MILLER G. L. 1959. Use of dinitrosalicylic acid reagnet for determination of reducing sugars. Analytical Chemistry. Vol. 31. Iss. 3 s. 426–428.
  • 15. MROZIK A., HUPERT-KOCUREK H., NOWAK B., ŁABUŻEK S. 2008. Microbial lipases and their significance in the protection of the environment. Postępy Microbiologii. T. 47. Z. 1 s. 43–50.
  • 16. NYGREN C. M., EDQVIST J., ELFSTRAND M., HELLER G., TAYLOR A. F. 2007. Detection of extracellular protease activity in different species and genera of ectomycorrhizal fungi. Mycorrhiza. Vol. 17. Z. 3 s. 241–248.
  • 17. PALMIERI G., BIANCO C., CENNAMO G., GIARDINA P., MARINO G., MONTI M., SANNIA G. 2001. Purification, characterization, and functional role of a novel extracellular protease from Pleurotus ostreatus. Applied and Environmental Microbiology. Vol. 67. Iss. 6 s. 2754–2759.
  • 18. ROSA-GRUSZECKA A., HILSZCZAŃSKA D., SZMIDLA H. 2014. Warunki środowiskowe sprzyjające występowaniu trufli (Tuber spp.) na historycznych stanowiskach w Polsce. Leśne Prace Badawcze. Vol. 75. Iss. 1 s. 5–11.
  • 19. STREIBLOVÁ E., GRYNDLEROVÁ H., VALDA S., GRYNDLER M. 2010. Tuber aestivum – hypogeous fungus neglected in the Czech Republic. A review. Czech Mycology. Vol. 61. Iss. 2 s. 163–167.
  • 20. SUBASH C.B., PERIASAMY A., LAKSHMIPRIYA T., AZARIACH H. 2013. Strategies of characterize fungal lipases for applications in medicine and dairy industry. Biomed Research International. Vol. 2013. Z. 1 s. 1–10.
  • 21. SUZUKI T., ENDO K., ITO M., TSUJIBO H., MIYAMOTO K., INAMORI Y. 2003. Thermostable laccase from Streptomyces lavendulae REN-7: Purification, characterization, nucleotide sequence, and expression. Bioscience, Biotechnology and Biochemistry. Vol. 67. Iss. 10 s. 2167–2175.
  • 22. THURSTON CH.F. 1994. The structure and function of fungal laccases. Microbiology. Vol. 140 s. 19– 26.
  • 23. TOKARZEWSKA-ZADORA J., ROGALSKI J., SZCZODRAK J. 2005. Enzymy rozkładające ksylan – charakterystyka i zastosowanie w biotechnologii. BioTechnologia. T. 2 (69) s. 163–182.
  • 24. ÜLKER S., ÖZEL A., ÇOLAK A., KARAOGLU S. 2011. Isolation, production, and characterization of an extracelluar lipase from Trichoderma harzianum isolated from soil. Turkish Journal of Biology. Vol. 35 s. 543–550.
  • 25. WILLERDING A. L., OLIVEIRA L. A., MOREIRA F. W., GERMANO M. G., CHAGAS A. F. 2011. Lipase activity among bacteria Isolated from amazonian soils. Enzyme Research. Vol. 2011 s. 1–5.
  • 26. ZAMPIERI E., GUZZO F., COMMISSO M., MELLO A., BONFANTE P., BALESTRINI R. 2014. Gene expression and metabolite changes during Tuber magnatum fruiting body storage. Current Genetic. Vol. 60 s. 285–294.
Typ dokumentu
Bibliografia
Identyfikator YADDA
bwmeta1.element.baztech-a55e2643-a51c-431f-8246-f2fb5a9841cd
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.