Analiza oddziaływania nadtlenku wapnia na aktywność wybranych enzymów oksydoredukcyjnych w glebie lekkiej skażonej przepracowanym olejem silnikowym

• Autorzy: Węgrzynowski Ł. , Curyło K. , Konieczna D. , Telesiński A.

Identyfikatory

DOI

10.16926/cebj.2018.21.03

Warianty tytułu

EN

Analysis of calcium peroxide effect on some oxidoreductive enzyme activities in soil contaminated with spent engine oil

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Celem podjętych badań było określenie oddziaływania nadtlenku wapnia na aktywność dehydrogenaz oraz oksydazy o-difenolowej w glebie zanieczyszczonej przepracowanym olejem silnikowym. Doświadczenie laboratoryjne przeprowadzono na piasku gliniastym o zawartości Corg 8.71 g·kg-1. Do próbek gleby wprowadzono w różnych kombinacjach przepracowany olej silnikowy (w ilościach: 0, 10 i 50 g·kg-1s.m. gleby) oraz nadtlenek wapnia (w ilościach: 0, 200 i 400 mg·kg-1s.m. gleby). Wilgotność próbek gleby doprowadzono do 60% maksymalnej pojemności wodnej i przechowywano w szczelnie zamkniętych szklanych pojemnikach w temperaturze 20°C. We wszystkich kombinacjach oznaczono w 1., 7., 14. i 28. dniu doświadczenia aktywność dehydrogenaz oraz oksydazy o-difenolowej. Na podstawie przeprowadzonych badań stwierdzono, że aktywność dehydrogenaz w glebie zanieczyszczonej przepracowanym olejem silnikowym uległa podwyższeniu w stosunku do gleby kontrolnej, podczas gdy aktywność oksydazy o-difenolowej była hamowana. Aplikacja nadtlenku wapnia do gleby niezawierającej przepracowanego oleju silnikowego w niewielki sposób oddziaływała na aktywność oznaczanych oksydo-reduktaz. Trudno jednoznacznie ocenić kierunek zmian aktywności dehydrogenaz oraz oksydazy o-difenolowej w glebie skażonej przepracowanym olejem silnikowym po aplikacji nadtlenku wapnia.

EN

The aim of study was to assess the effect of calcium peroxide on the activity of dehydrogenases and o-diphenol oxidase in soil contaminated with spent engine oil. The laboratory experiment was carried out on loamy sand with Corg content 8.71 g·kg-1. For the soil samples, various combinations of spent engine oil (at the doses of: 0, 10 and 50 g·kg-1DW soil) and calcium peroxide (at the doses of: 0, 200 and 400 mg·g-1DW soil) were added. Samples were adjusted to 60% maximum water holding capacity, and they were incubated in tightly closed glass containers at 20°C. In all combinations, the activity of dehydrogenases and o-diphenol oxidase was determined on days 1., 7., 14., and 28. Obtained results showed that activity of dehydrogenases in the soil contaminated with spent engine oil was increased, compared to the control, while the o-diphenol oxidase activity was inhibited. The application of calcium peroxide to soil without spent engine oil resulted in a small effect on the activity of the oxidoreductases. It is difficult to unambiguously assess the direction of changes in the activity of dehydrogenases and o-diphenol oxidase in soil contaminated with spent engine oil after the treatment of calcium peroxide.

Słowa kluczowe

PL

dehydrogenazy; oksydaza o-difenolowa; gleba; substancje ropopochodne

EN

dehydrogenases; o-diphenol oxidase; soil; petroleum products

• Wydawca: Wydawnictwo Uniwersytetu Humanistyczno-Przyrodniczego im. Jana Długosza w Częstochowie
• Czasopismo: Chemistry, Environment, Biotechnology
• Rocznik: 2018
• Tom: Vol. 21
• Strony: 14--18
• Opis fizyczny: Bibliogr. 27 poz., rys., tab.

Twórcy

autor

Węgrzynowski Ł.

• Katedra Fizjologii Roślin i Biochemii, Zachodniopomorski Uniwersytet Technologiczny w Szczecinie, 71-434 Szczecin, Słowackiego 17, Polska

autor

Curyło K.

• Katedra Fizjologii Roślin i Biochemii, Zachodniopomorski Uniwersytet Technologiczny w Szczecinie, 71-434 Szczecin, Słowackiego 17, Polska

autor

Konieczna D.

• Katedra Architektury Współczesnej, Teorii i Metodologii Projektowania, Zachodniopomorski Uniwersytet Technologiczny w Szczecinie, 71-210 Szczecin, Żołnierska 50, Polska

autor

Telesiński A.

• Katedra Fizjologii Roślin i Biochemii, Zachodniopomorski Uniwersytet Technologiczny w Szczecinie, 71-434 Szczecin, Słowackiego 17, Polska

Bibliografia

• [1] M. Stręk, A. Telesiński, Acta Agrophys., 2016, 23(3), 505-513.
• [2] F.I. Achuba, P.N. Okoh, Open J. Soil Sci., 2014, 4, 399-406. doi: 10.4236/ojss.2014.412040.
• [3] G. Kaczyńska, A. Borowik, J. Wyszkowska, Water Air Soil Pollut., 2015, 226(11), 372. doi: 10.1007/s11270-015-2642-9.
• [4] M. Stręk, A. Telesiński, Environ. Protect. Engin., 2017, 43(1), 151-160. doi: 10.5277/epe170112.
• [5] M.M.A. Blessing, A.A. Abdulrahman, Asian J. Sci. Technol., 2015, 6(2), 1032-1035.
• [6] J.N. Nwite, M.O. Alu, J. Soil Sci. Environ. Manag., 2015, 5(4), 44-51. doi: 10.5897/JSSEM12.070.
• [7] A. Gałązka, Kosmos, 2015, 64(1),145-164.
• [8] A. Małachowska-Jutsz, W. Janosz, J. Rudek, Ochr. Środ., 2012, 34(1), 15-20.
• [9] A. Małachowska-Jutsz, M. Gumińska, Z. Bernaś, Ochr. Środ., 2014, 36(3), 37-42.
• [10] M. Stręk, A. Telesiński, Chem. Environ. Biotechnol., 2016, 19, 7-11. doi: 10.16926/cebj.2016.19.01.
• [11] A. Thalmann, Landwirtsch. Forsch., 1968, 21, 249-258.
• [12] M. Brzezińska, T. Włodarczyk, Acta Agrophys., 2005, 3,11-26.
• [13] R. Perucci, C. Casucci, S. Dumonet, Soil Biol. Biochem., 2000, 32, 1927-1933.
• [14] G. Kaczyńska, A. Borowik, J. Wyszkowska, Water Air Soil Pollut., 2015, 226, 372. doi: 10.1007/s11270-015-2642-9.
• [15] K.H. Orwin, D.A. Wardle, Soil Biol. Biochem., 2004, 36(11), 1907-1912. doi: 10.1016/j.soilbio.2004.04.036.
• [16] F.I. Achuba, B.O. Peretiemo-Clarke, Int. Agrophys., 2008, 22, 1-4.
• [17] F.I. Achuba, P.N. Okoh, Open J. Soil Sci., 2014, 4, 399-406.
• [18] K. Ramadass, M. Megharaj, K. Venkateswarlu, R. Naidu, Soil Biol. Biochem., 2015, 85, 72-81. doi: 10.1016/j.soilbio.2015.02.026.
• [19] M. Stręk, A. Telesiński, Plant Soil Environ., 2016, 62(4), 157-163. doi: 10.17221/740/2015-PSE
• [20] J. Wyszkowska, E. Boros-Lejszner, W. Lejszner, J. Kucharski, Environ. Earth Sci., 2017, 76, 403. doi: 10.1007/s12665-017-6742-2.
• [21] A. Małachowska-Jutsz, M. Niesler, Water Air Soil Pollut., 2015, 226, 365. doi: 10.1007/s11270-015-2632-y.
• [22] M. Stręk, A. Płatkowski, Folia Pomer. Univ. Technol. Stetin., Agric., Aliment., Pisc., Zootech. 2016, 328(39)3, 211-218. doi: 10.21005/AAPZ2016.39.3.18.
• [23] M. Kostecki, J. Mazierski, Przem. Chem., 2008, 87(3), 278-283
• [24] A. Northup, D. Cassidy, J. Hazard. Mat., 2008, 152, 1164-1170. doi: 10.1016/j.jhazmat.2007.07.096A.
• [25] A. Goi, M. Viisimaa, M. Trapido, R. Munter, Chemosphere, 2011, 82, 1196-1201. doi: 10.1016/j.chemosphere.2010.11.053.
• [26] J. Khodaveisi, H. Banejad, A. Afkhami, E. Olyaie, S. Lashgari, R. Dashti, J. Hazard. Mat., 2011, 192, 1437-1440. doi: 10.1016/j.jhazmat.2011.06.060.
• [27] A. Griffiths, L. Philippot, FEMS Microbiol. Rev., 2013,37(2), 112-129. doi: 10.1111/j.1574-6976.2012.00343.x.

Uwagi

Opracowanie rekordu w ramach umowy 509/P-DUN/2018 ze środków MNiSW przeznaczonych na działalność upowszechniającą naukę (2018).