Zastosowanie cytometrii przepływowej w immunohematologii

Fabijańska-Mitek, J.

Artykuł - szczegóły

Tytuł artykułu

Zastosowanie cytometrii przepływowej w immunohematologii

Autorzy

Fabijańska-Mitek J.

Identyfikatory

Warianty tytułu

Application of flow cytometry in immunohaematology

Języki publikacji

Abstrakty

Cytometria przepływowa może być stosowana w następujących badaniach immunohematologicznych: wykrywanie przecieku płodowo-matczynego, ocena ilościowa cząsteczek Ig wolnych i związanych z erytrocytami oraz miejsc antygenowych, ocena starzenia się erytrocytów, erytrofagocytozy przez monocyty, a także oporności osmotycznej.

Flow cytometry can be applied to the following immunohaematological tests: detection of fetomaternal haemorrhage, assessment of free and RBC-bound Ig molecules and number of antigen sites per RBC, evaluation of RBC senescence, erythrophagocytosis by monocytes and also osmotic fragility.

Słowa kluczowe

cytometria przepływowa immunohematologia erytrofagocytoza przeciek płodowo-matczyny

flow cytometry immunohaematology erythrophagocytosis fetomaternal haemorrhage

Wydawca

ELAMED Media Group

Czasopismo

Laboratorium - Przegląd Ogólnopolski

Rocznik

2017

Tom

nr 7-8

Strony

23--26

Opis fizyczny

Bibliogr. 22 poz., rys.

Twórcy

autor

Fabijańska-Mitek J.

Zakład Immunohematologii, Centrum Medyczne Kształcenia Podyplomowego, Warszawa

Bibliografia

1. Kopeć-Szlęzak J.: Immunofenotypowanie komórek białaczkowych i chłoniakowych. Zastosowanie w diagnostyce – przewodnik. Fundacja Pro Pharmacia Futura, Warszawa 2011.
2. Piątosa B., Klaudel-Dreszler M.: Zastosowanie cytometrii przepływowej w diagnostyce neutropenii. „Post. N. Med.”, 2012, 25, 569-575.
3. Borowitz M.J., Craig F.E., DiGiuseppe J.A., et al: Guidelines for the diagnosis and monitoring of paroxysmal nocturlan hemoglobinuria and related disorders by flow cytometry. [In:] Cytometry Part B. 2010, 78B, 211-230.
4. Adamowicz-Salach A.: Sferocytoza wrodzona u dzieci - badania diagnostyczne i postępowanie terapeutyczne. „Post. N. Med.”, 2013, 9, 646-650.
5. Kumpel B.M., MacDonald A.P., Bishop D.R. et al: Quantitation of fetomaternal haemorrhage and F cells in unusual maternal blood samples by flow cytometry using anti-D and anti-HbF. „Transfus. Med.”, 2013, 23, 175-186.
6. Campbell T.A., Ware R.E., Mason M.: Detection of Fetal Hemoglobin in Erythrocytes by Flow Cytometry. Ann. New York Acad. Sci.”, 1998, 850, 446-448.
7. Gieleżyńska A., Stachurska A., Fabijańska-Mitek J. et al: Feto-maternal haemorrhage assessment in a woman with a large population of red blood cells containing fetal hemoglobin. „Ginekol. Pol.”, 2014, 85, 614-618.
8. Prus E., Fibach E.: Heterogenity of F cells in β-thalasemia. „Transfusion”, 2013, 53, 499-504.
9. Fong E.A., Finlayson J., Robins F. et al: Evaluation of a new rapid anti-HbF FITC assay, Trillium QuickQuant for detection and quantitation of fetomaternal haemorrhage. „Int. J. Lab. Hem.”, 2013, 35, 106-110.
10. Kennedy G.A., Shaw R., Just S. et al: Quantification of feto-maternal haemorrhage (FMH) by flow cytometry: anti-fetal hemoglobin labelling potentially underestimates massive FMH in comparison to labelling with anti-D. „Transfus. Med.”, 2002, 13, 25-33.
11. Gieleżyńska A., Stachurska A., Fabijańska-Mitek J. et al: Quantitative fetomaternal hemorrhage assessment with the use of five laboratory tests. „Int. J. Lab. Hematol.”, 2016, 38, 419-425.
12. Stachurska A., Gmerek K., Fabijańska-Mitek J.: Application of flow cytometry and microscopy methods in erythrophagocythosis measurement. „Centr. Eur. J. Immunol.”, 2013; 38: 208-213.
13. Stachurska A., Król T., Trybus T. et al.: 3D visualization and quantitative analysis of human erythrocyte phagocytosis. „Cell Biol. Int.”, 2016, 40, 1195-1203.
14. Wang Z., Shi J., Zhou Y.: Detection of red blood cell-bound immunoglobulin G by flow cytometry and its application in the diagnosis of autoimmune hemolytic anemia. „Int. J. Hematol”, 2001, 2, 188-193.
15. Christenson M., Bremme K., Shanwell A. et al: Flow cytometric quantitation of serum anti-D in pregnancy. „Transfusion”, 1996, 36, 500-505.
16. Fibach E., Sharon R.: Changes in ABH antigen expression on red cells during in vivo aging: A flow cytometric analysis. „Transfusion”, 1994, 34, 328-332.
17. Nicholson G., Lawrence A., Ala F.A., Bird G.W.: Semi-quantitative assay of D antigen site density by flow cytometric analysis. „Transfus. Med.”, 1991, 1, 87-90.
18. Luten M., Roerdinkholder-Stoelwinder B., Schaap N.P.: Survival of red blood cells after transfusion: a comparison between red cells concentrates of different storage periods. „Transfusion”, 2008, 7, 1478-1485.
19. Gmerek K., Fabijańska-Mitek J.: Zmiany zachodzące w krwinkach czerwonych przechowywanych w bankach krwi. „Post. N. Med.”, 2016, 29, 119-125.
20. Stachurska A.: Possible diagnostic role of cell membrane microparticles. „Post. N. Med.”, 2016, 29, 132-136.
21. Ciepiela O., Adamowicz-Salach A., Zgodzińska A. et al.: Flow cytometric osmotic fragility test: increased assay sensitivity for clinical application in pediatric hematology. [In:] Cytometry Part B. 2017 [doi: 10.1002/cyto.b.21511].
22. Arndt P.A., Garratty G.: A critical review of published methods for analysis of red cell antigen-antibody reactions by flow cytometry, and approaches for resolving problems with red cell agglutination. „Transfus. Med. Rev.”, 2010, 24, 172-194.

Uwagi

Opracowanie ze środków MNiSW w ramach umowy 812/P-DUN/2016 na działalność upowszechniającą naukę (zadania 2017).

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.baztech-8fd3278c-2caa-4cee-a2bf-1705124edd5a