Zastosowanie dwuskładnikowego nawozu bakteryjno-mineralnego w uprawie roślin ozdobnych

Krawczyk, A.; Supel, P.; Kaszycki, P.; Lis-Krzyścin, A.

doi:10.15199/62.2015.7.22

Artykuł - szczegóły

Tytuł artykułu

Zastosowanie dwuskładnikowego nawozu bakteryjno-mineralnego w uprawie roślin ozdobnych

Autorzy

Krawczyk A. , Supel P. , Kaszycki P. , Lis-Krzyścin A.

Wybrane pełne teksty z tego czasopisma

https://przemyslchemiczny.com/

Identyfikatory

DOI

10.15199/62.2015.7.22

Warianty tytułu

Use of a two-component, mineral-bacterial biofertilizer in cultivation of ornamental plants

Języki publikacji

Abstrakty

Opracowany na bazie modyfikowanej krzemionki i bakterii glebowych Rhizobium sp. bionawóz zastosowano jako środek wspomagający uprawę roślin ozdobnych: begonii stale kwitnącej (Begonia xsemperflorens) i aksamitki rozpierzchłej (Tagetes patula L.). Określano wpływ bionawozu na wzrost, rozwój i kwitnienie roślin, analizowano stężenie rozpuszczalnych form wybranych składników pokarmowych w podłożu, zawartość tych składników w liściach, badano również dynamikę populacji bakterii glebowych, w tym zaszczepionych drobnoustrojów rodzaju Rhizobium. Bionawóz i jego poszczególne składniki pozytywnie działały na wzrost i kondycję badanych roślin, a także polepszały warunki uprawowe zastosowanego podłoża torfowego. Obserwowano przypadki współdziałania zmodyfikowanej krzemionki oraz komponentu mikrobiologicznego, dającego skumulowany, korzystny efekt poprawiający wybrane parametry upraw. Zastosowany bionawóz wydaje się być dogodną alternatywą dla konwencjonalnych metod mineralnego nawożenia roślin.

Peat substrate was doped with modified SiO₂ (up to 25% by vol.) and Rhizobium sp. soil bacteria (up to 1% by vol.) sep. or jointly and used for the cultivation of marigold and begonia. The nos. of bacteria in the soil and the plant height were detd. at weekly intervals. After 8 weeks, mass of plants, no. of flowers and the concs. of P, K, Fe and N in the substrates and in the leaves were detd. for each variant of cultivation. For 2-component fertilizer, any adverse effect of SiO₂ on bacterial viability was not obsd. Two-component fertilizer showed a particularly positive influence on the no. of flowers of marigold and begonia plants. The joint action of the bacteria and 5% SiO₂ on begonia culture resulted in increased concn. of sol. forms of P, K and Fe in the substrate.

Słowa kluczowe

bionawóz bakteryjno-mineralny uprawa roślin ozdobnych rośliny ozdobne efektywność nawożenia

mineral-bacterial biofertilizer ornamental plants plant cultivation fertilizing effectiveness

Wydawca

Wydawnictwo SIGMA-NOT

Czasopismo

Przemysł Chemiczny

Rocznik

2015

Tom

T. 94, nr 7

Strony

1183--1189

Opis fizyczny

Bibliogr. 50 poz., tab., wykr.

Twórcy

autor

Krawczyk A.

Uniwersytet Rolniczy im. Hugona Kołłątaja w Krakowie, al. 29 Listopada 54, 31-425 Kraków

autor

Supel P.

Uniwersytet Rolniczy im. Hugona Kołłątaja w Krakowie, al. 29 Listopada 54, 31-425 Kraków

autor

Kaszycki P.

Uniwersytet Rolniczy im. Hugona Kołłątaja w Krakowie, al. 29 Listopada 54, 31-425 Kraków

autor

Lis-Krzyścin A.

a.lis@ogr.ur.krakow.pl

Zakład Żywienia Roślin, Instytut Biologii i Biotechnologii, Wydział Biotechnologii i Ogrodnictwa, Uniwersytet Rolniczy w Krakowie, al. 29 Listopada 54, 31-425 Kraków

Bibliografia

1. X.M. Martin, C.S. Sumathi, V.R. Kannan, Eurasia J. Biosci. 2011, 5, 19.
2. Z. Li, Micropor. Mesopor. Mat. 2003, 61, 181.
3. J. Saxena, G. Rana, M. Pandey, Scientia Hort. 2013, 162, 351.
4. L.E. Datnoff, G.H. Snyder, G.H. Korndorfer, Silicon in agriculture, Elsevier, Amsterdam 2001.
5. E. Epstein, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1994, 91, 11.
6. J.M. Frantz, J.C. Locke, D. Sturtz, S. Leisner, Anais do V Simpósio Brasileiro Sobre Silicio na Agriculture 2010, 6, 111.
7. Z.G. Guo, H.X. Liu, F.P. Tian, Z.H. Zhang, S.M. Wang, Aust. J. Exp. Agric. 2006, 46, 1161.
8. S. Kamenidou, T.J. Cavins, S. Marek, Hort. Sci. 2008, 43, nr 1, 236.
9. J.F. Ma, E. Takahasi, Soil, fertilizer and plant silicon research in Japan, Elsevier, Amsterdam 2002.
10. N.S. Mattson, W.R. Leatherwood, Hort. Sci. 2010, 45, nr 1, 43.
11. F. Toresano-Sánchez, M. Díaz-Pérez, F. Diánez-Martínez, F. Camacho-Ferre, J. Plant Nutr. 2010, 33, nr 10, 1411.
12. S.J. Hwang, H.M. Park, B.R. Jeong, J. Japan. Soc. Hort. Sci. 2005, 74, nr 3, 242.
13. S. Kamenidou, T.J. Cavins, S. Marek, J. Plant Nutr. 2011, 34, 217.
14. S. Kamenidou, T.J. Cavins, S. Marek, Scientia Hort. 2009, 119, 297.
15. L.E. Trenholm, L.E. Datnoff, R.T. Nagata, Hort. Technol. 2004, 14, 487.
16. S. Reezi, M. Babalar, S. Kalantari, African J. Biotechnol. 2009, 8, nr 8, 1502.
17. G.B. Buck, G.H.Korndörfer, L.E. Datnoff, J. Plant Nutr. 2011, 34, 272.
18. S.T. Peireira, A.K. da Silva Lobato, D.K.Y. Tan, D.V. da Costa, E.B. Uchoa, R. do Nascimento Ferreira, E. Dos Santos Pereira, F.W. Avila, D.J. Marques, E.M. Silva Guedes, Australian J. Crop Sci. 2013, 7, nr 8, 1064.
19. M. Albareda, D.N. Rodriguez-Navarro, M. Camacho, F.J. Temprano, Soil Biol. Biochem. 2008, 40, 2771.
20. N. Bakonyi, S. Bott, E. Gajdos, A. Szabo, A. Jakab, B. Toth, P. Makleit, S. Veres, Pol. J. Environ. Stud. 2013, 22, nr 6, 1595.
21. D.K. Choudhary, B.N. Johri, Microbiol. Res. 2009, 164, 493.
22. A. Daza, C. Santamaria, D.N. Rodriguez-Navarro, M. Camacho, R. Orive, F. Temprano, Soil Biol. Biochem. 2000, 32, 567.
23. Y. Mercado-Flores, I.O. Cardenas-Alvarez, A.V. Rojas-Olvera, J.P. Perez-Camarillo, S.G. Leyva-Mir, M.A. Anducho-Reyes, Biol. Control. 2014, 76, 36.
24. P. Sobiczewski, [w:] Biotechnologia roślin (red. S. Malepszy), Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 2009.
25. S.A. Wani, S. Chand, T. Ali, Curr. Agri. Res. 2013, 1, nr 1, 35.
26. D. Egamberdiyeva, Appl. Soil Ecol. 2007, 36, 184.
27. Minaxi, J. Saxena, Appl. Soil Ecol. 2011, 48, nr 3, 301.
28. Y. Farzana, R.O.S. Saad, S. Kamaruzaman, Aus. J. Basic Appl. Sci. 2009, 3, nr 2, 1461.
29. S.P. Saikia, Vanita Jain, Curr. Sci. 2007, 92, nr 3, 317.
30. H. Kumar, R.C. Dubey, D.K. Maheshwari, Crop Protection 2011, 30, 1396.
31. M. Roy, R.C. Srivastava, Curr. Sci. 2013, 104, nr 3, 326.
32. B. Lugtenberg, T. Chin-A-Woeng. G. Bloemberg, Antonie van Leeuwenhoek 2002, 81, 373.
33. Ustawa z dnia 10 lipca 2007 r. o nawozach i nawożeniu, Dz.U. z 2007 nr 147, poz. 1033.
34. J.K. Vessey, Plant Soil 2003, 255, 571.
35. D. Burk, H. Lineweaver, J. Bacteriol. 1930, 19, nr 6, 389.
36. A.O.A.C. Officials methods of analysis, Association of Official Analytical Chemists, Washington D.C., USA, 1984.
37. P. Pasławski, Z.M. Migaszewski, Polish J. Environ. Stud. 2006, 15, nr 2a, 154.
38. O. Nowosielski, Zasady opracowywania zaleceń nawozowych w ogrodnictwie, PWRiL, Warszawa 1988.
39. A. Ostrowska, S. Gawliński, Z. Szczubiałka, Metody analiz i oceny właściwości gleb i roślin – katalog, Wydawnictwo IOŚ, Warszawa 1991.
40. PN-EN ISO 13395:2001, Jakość wody. Oznaczanie azotu azotynowego i azotanowego oraz ich sumy metodą analizy przepływowej (CFA i FIA) z detekcją spektrometryczną.
41. P. Kaszycki, P. Supel, P. Petryszak, J. Ecol. Eng. 2014, 15, nr 3, 14.
42. J.H.G. Stephens, H.M. Rask, Field Crop Res. 2000, 65, 249.
43. G. Höflich, H.J. Wolf, A. Rupprich, Zentralblatt für Mikrobiologie 1987, 142, nr 8, 581.
44. H.P. Kahindi, P. Woomer, T. George, F.M. de Souza Moreira, N.K. Karanja, K.E. Giller, Appl. Soil Ecol. 1997, 6, nr 1, 55.
45. I. Sivanesan, M.S. Son, J.P. Lee, B.R. Jeong, Propagation of Ornamental Plants 2010, 10, nr 3, 136.
46. K.D. Noel, [w:] Encyclopedia of microbiology (red. M. Schaechter), Academic Press, Oxford 2009.
47. A.A. Nel, South African J. Plant Soil 2014, 31, nr 4, 233.
48. C. Exley, J. Inorg. Biochem. 1998, 69, 139.
49. C.W. Deren, J. Plant Nutr. 1997, 20, 765.
50. S. Kamenidou, T.J. Cavins, S. Marek, Scientia Hort. 2010, 123, nr 3, 390.

Uwagi

Praca zrealizowana w ramach tematu nr 3500, sfinansowana z dotacji na naukę przyznanej przez MNiSW.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.baztech-82ded378-2b04-4354-8166-fd87568b8b85