Lipolytic Activity of Bacillus sp. Isolated from the Natural Environment

• Autorzy: Nabrdalik M. , Grata K.

Warianty tytułu

PL

Aktywność lipolityczna Bacillus sp. wyizolowanych z środowiska naturalnego

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

In the study 10 bacterial strains of Bacillus kind were screened (B. cereus, B. firmus, B. mycoides, B. pumilus i B. subtilis) for their ability to synthesize lipases on the media containing the following fatty substrates as carbon sources: tributyrin and Tween 40, 60, 80. The growth media were incubated for 15 days and the results were recorded after 2, 4, 8 and 15 days. The results were presented as the amount of liberated moles of fatty acids [mol] and the units of lipolytic activity U/cm3. Tested bacterial strains displayed different levels of activity of extracellular lipases depending on the type of the fatty substrate source and the time of culturing. For most of the tested strains the maximum production of lipases took place on the 15th day of culturing. The most effective growth medium in the process of enzymes biosynthesis was the medium with tributyrin, and both B. cereus A96 and G10 strains distinguished from the others by the highest activity liberating on average 97.5 and 69.375 moles of fatty acids. The value of lipolytic activity was increasing during the experiment from the value of 0.958 to 1.375 U/cm3 for A96 strain and from 0.625 to 3.125 U/cm3 for G10 strain. Taking into account all tested growth media, the lowest lipolytic activity was displayed by B. pumilus Tw3 strain.

PL

W pracy przebadano 10 szczepów bakterii z rodzaju Bacillus (B. cereus, B. firmus, B. mycoides, B. pumilus i B. subtilis) pod względem możliwości syntezy lipaz w podłożach zawierających jako źródło węgla substraty tłuszczowe: tributyrynę oraz Tween 40, 60 i 80. Inkubację podłoży prowadzono przez 15 dni, a odczyty wykonano po 2, 4, 8 i 15 dniach. Wyniki podano jako ilość uwolnionych _moli kwasów tłuszczowych [_mol] oraz w jednostkach aktywności lipolitycznej U/cm3. Wśród badanych szczepów wykazano zróżnicowanie w poziomie aktywności zewnątrzkomórkowych lipaz w zależności od źródła substratu tłuszczowego i czasu hodowli. Dla większości badanych szczepów maksymalna produkcja lipaz występowała w 15 dniu hodowli. Najefektywniejsze w biosyntezie enzymów okazało się podłoże zawierające tributyrynę, a szczepy B. cereus A96 i G10 wyróżniały się najwyższą aktywnością, uwalniając średnio 97,5 oraz 69,375 _moli kwasów tłuszczowych. Wartość aktywności lipolitycznej wzrastała w trakcie doświadczenia z 0,958 do 1,375 U/cm3 dla szczepu A96 oraz z 0,625 do 3,125 U/cm3 dla szczepu G10. Natomiast, uwzględniając wszystkie testowane podłoża, najmniejszą aktywnością lipolityczną charakteryzowa ł się szczep B. pumilus Tw3.

Słowa kluczowe

EN

Bacillus sp.; lipases; tributyrin; Tween

PL

Bacillus sp.; lipazy; tributyryna; Tween

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Ecological Chemistry and Engineering. A
• Rocznik: 2013
• Tom: Vol. 20, nr 6
• Strony: 653--661
• Opis fizyczny: Bibliogr. 9 poz., tab., wykr.

Twórcy

autor

Nabrdalik M.

• Department of Biotechnology and Molecular Biology, Opole University, ul. kard. B. Kominka 6a, 45–032 Opole, Poland, phone: [phone]

autor

Grata K.

• Department of Biotechnology and Molecular Biology, Opole University, ul. kard. B. Kominka 6a, 45–032 Opole, Poland, phone: [phone]

Bibliografia

• [1] Mrozik A, Hubert-Kocurek K, Łabużek S. Lipazy bakterii Pseudomonas i Burkholderia oraz ich wykorzystanie w biotechnologii. Post Mikrobiol. 2006;45(1):19-26.
• [2] Gupta R, Gupta N, Rathi P. Bacterial lipases: an overview of production, purification and biochemical properties. App Microbiol Biotechnol. 2004;64(6):763-781. DOI: 10.1007/s00253-004-1568-8.
• [3] Salihu A, Alama MZ, AbdulKarim MI, Salleh HM. Lipase production: An insight in the utilization of renewable agricultural residues. Resour Conserv Recy. 2012;58(1):36-44. DOI: 10.1016/j.resconrec.2011.10.007.
• [4] Dahiya P, Purkayastha S. Isolation, screening and production of extracellular alkaline lipase from a newly isolated Bacillus sp. PD-12. J Biol Sci. 2011;11(5):381-387. DOI: 10.3923/jbs.2011.381.387.
• [5] Sharma R, Chisti Y, Banerjee UCh. Production, purification, characterization, and applications of lipases. Biotechnol Advanc. 2001;19:627-662. DOI:10.1016/S0734-9750(01)00086-6.
• [6] Ertugrul S, Dönmez G, Takaç S. Isolation of lipase producing Bacillus sp. From olive mill wastewater and improving its enzyme activity. J Hazard Mater. 2007;149:720-724. DOI: 10.1016/j.jhazmat.2007.04.034.
• [7] Shah KR, Bhatt SA. Purification and characterization of lipase from Bacillus subtilis Pa2. J Biochem Tech. 2011;3(3):292-295.
• [8] Hasan F, Shah AA, Hameed A. Methods for detection and characterization of lipases: A comprehensive review. Biotech Adv. 2009;27(6):782-798. DOI: 10.1016/j.biotechadv.2009.06.001.
• [9] Eggert T, Brockmeier U, Dröge MJ, Quax WJ, Jaeger KE. Extracellular lipases from Bacillus subtilis: regulation of gene expression and enzyme activity by amino acid supply and external pH. FEMS Microbiol Lett. 2003;225(2):319-324. DOI: 10.1016/S0378-1097(03)00536-6.