Zaawansowane narzędzia optometrii i psychofizyki widzenia. Część 6, Dwufotonowa mikroskopia konfokalna w diagnostyce strukturalnej i funkcjonalnej tkanek oka

• Autorzy: Kowalczyk-Hernández Marek
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Na zamieszczonym w poprzednim odcinku cyklu zdjęciu jednej z warstw istoty właściwej rogówki (stromy) uzyskanym in vivo z użyciem laserowego skaningowego mikroskopu konfokalnego (LSMK) mogliśmy dostrzec jedynie jądra komórek keratocytowych znajdujących się w dużej odległości od siebie, a zatem komórki te nie tworzyły zwartej struktury tkankowej [1]. Z drugiej strony wiemy, że to głównie stroma odpowiada za właściwości rogówki, takie jak wytrzymałość mechaniczna, sprężystość i stabilność kształtu. Wynika stąd, że keratocyty muszą znajdować się w ośrodku o tych właśnie właściwościach, lecz jego struktura pozostaje niewidoczna przy obserwacji za pomocą LSMK.

Słowa kluczowe

PL

optometria; psychofizyka; widzenie; mikroskopia konfokalna

• Wydawca: MAGMONI Sp. z o.o.
• Czasopismo: Optyka
• Rocznik: 2021
• Tom: Nr 6
• Strony: 44--46
• Opis fizyczny: Bibliogr. 14 poz., fot., ryc.

Twórcy

autor

Kowalczyk-Hernández Marek

• Wolontariusz, Zakład Fotoniki, Instytut Geofizyki, Wydział Fizyki UW

Bibliografia

• 1. M. Kowalczyk-Hernández. Zaawansowane narzędzia optometrii i psychofizyki widzenia. Część V – laserowa skaningowa mikroskopia konfokalna. OPT YKA 5(71) 2021, 36-37
• 2. Y. Komai, T. Ushiki. The three-dimensional organization of collagen fibrils in the human cornea and sclera. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1991 Jul; 32(8): 2244-2258
• 3. H. Aghamohammadzadeh, R.H. Newton, and K.M. Meek. X-ray scattering used to map the preferred collagen orientation in the human cornea and limbus. Structure 2004; 12(2): 249-256
• 4. www.slideshare.net/ArunViswanathan3/the-cornea-199840828
• 5. K.M. Meek, C. Knupp. Corneal structure and transparency. Progress in Retinal and Eye Research vol. 49, November 2015: 1-16
• 6. M. Han, G. Giese, and J.F. Bille. Second harmonic generation imaging of collagen fibrils in cornea and sclera. Optics Express 2005; 13(15): 5791-5797
• 7. S. Preibisch, S. Saalfeld, and P. Tomancak. Globally optimal stitching of tiled 3D microscopic image acquisitions. Bioinformatics 2009; 25(11): 1463-1465
• 8. M. Winkler, D.J. Brown, J.V. Jester. Multiphoton imaging of the cornea [w]: Pablo Artal (redakcja) Handbook of Visual Optics, tom II: Instrumentation and Vision Correction (Taylor & Francis, 2017); s. 143-154
• 9. G. Latour, I. Gusachenko, L. Kowalczuk, I. Lamarre, and M.C. Schanne-Klein. In vivo structural imaging of the cornea by polarization-resolved second harmonic microscopy. Biomed. Opt. Express 2012; 3: 1-15
• 10. J. Szudy, A. Bielski. Aleksander Jabłoński (1898–1980). Fizyk, muzyk, żołnierz. Wydawnictwo Naukowe UMK, 2010
• 11. W.R. Zipfel, R.M. Williams, and W.W. Webb. Nonlinear magic: multiphoton microscopy in the biosciences. Nature Biotechnology 2003, vol. 21: 1369-1377
• 12. https://aria.cvs.rochester.edu/our_work/two_photon.html
• 13. O.I. Kolenc, K.P. Quinn. Evaluating Cell Metabolism Through Autofluorescence Imaging of NAD(P)H and FAD. Antioxidants & Redox Signaling 2019, vol. 30: 875-889
• 14. Z. Qin, S. He, C. Yang et al. Adaptive optics two-photon microscopy enables near-diffraction-limited and functional retinal imaging in vivo. Light Sci Appl 2020; 9, 79 https://doi.org/10.1038/s41377-020-0317-9

Uwagi

Opracowanie rekordu ze środków MNiSW, umowa Nr 461252 w ramach programu "Społeczna odpowiedzialność nauki" - moduł: Popularyzacja nauki i promocja sportu (2021).