Właściwości inhibitujące i antyoksydacyjne ekstraktów wybranych rodzajów herbat

• Autorzy: Skrzypek Alicja , Czeczko Renata , Ciołek Anna

Identyfikatory

DOI

10.15199/62.2020.12.13

Warianty tytułu

EN

Inhibitory and antioxidant properties of selected tea extracts

• Języki publikacji: PL EN

Abstrakty

PL

Wyznaczono inhibicję aktywności acetylocho-linoesterazy (AChE) (zmodyfikowana metoda Ellmana), aktywność antyoksydacyjną (metoda wygaszania rodnika DPPH) oraz całkowitą zawartość polifenoli (metoda z odczynnikiem Folina i Ciocalteu) w wodnych ekstraktach herbaty zielonej, czerwonej, białej i czarnej. Ekstrakty były przygotowywane przez zaparzanie w temp. 100°C w różnym czasie. Wyniki wykazały, że wszystkie badane herbaty są inhibitorami AChE. Najsilniejszym inhibitorem AChE okazał się ekstrakt z zielonej herbaty bez dodatków, parzonej przez 30 min. Ekstrakty herbaty czerwonej charakteryzowały się najmniejszą aktywnością hamującą AChE, jak również najsłabszymi właściwościami przeciwutleniającymi i najmniejszą zawartością związków fenolowych. Zastosowanie dodatków w procesie produkcji herbaty spowodowało obniżenie wszystkich badanych parametrów.

EN

Aq. infusions of com. green, white, red and black teas were prepd. by flooding with boiling water and extg. for 1–30 min. The inhibition of acetylcholinesterase activity (AChE), the antioxidant activity and the total polyphenolic content in tea exts. were studied. The strongest inhibitor of AChE was pure green tea extd. for 30 min. Red tea exts. showed the lowest inhibiting activity.

Słowa kluczowe

PL

herbata; ekstrakt wodny; inhibitor; acetylocholinesteraza; inhibitory i reaktywatory AChE

EN

tea; water extract; inhibitor; acetylcholinesterase; AChE inhibitors and reactivators

• Wydawca: Wydawnictwo SIGMA-NOT
• Czasopismo: Przemysł Chemiczny
• Rocznik: 2020
• Tom: T. 99, nr 12
• Strony: 1758--1761
• Opis fizyczny: Bibliogr. 37 poz., tab., wykr.

Twórcy

autor

Skrzypek Alicja

• Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie

autor

Czeczko Renata

• Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie

autor

Ciołek Anna

• Katedra Chemii, Wydział Nauk o Żywności i Biotechnologii, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, 20-950 Lublin, ul. Akademicka 13

Bibliografia

• [1] J.V. Higdon, B. Frei, Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2003, 43, 89.
• [2] D. Kłódka, M. Bońkowski, A. Telesiński, Żywn. Nauka Technol. Jakość 2008, 1, 103.
• [3] K. Wei, L. Wang, J. Zhou, W. He, J. Zeng, Y. Jiang, H. Cheng, Food Chem. 2011, 125, 44.
• [4] G. Budryn, E. Nebesny, Bromatol. Chem. Toksykol. 2006, 2, 103.
• [5] C. Cabrera, R. Artacho, R. Giménez, J. Am. Coll. Nutr. 2006, 25, nr 2, 79.
• [6] N. Khan, H. Mukhtar, Life Sci. 2007, 81, 519.
• [7] U.J. Unachukwu, S. Ahmed, A. Kavalier, J.T. Lyles, E.J. Kennelly, J. Food Sci. 2010, 75, nr 6, 541.
• [8] J. Ostrowska, Gazeta Farmaceut. 2008, nr 1, 460.
• [9] W. Łuczaj, E. Skrzydlewska, Prev. Med. 2005, 40, 910.
• [10] B.N. Singh, S. Shankar, R.K. Srivastava, Biochem. Pharmacol. 2011, 82, 1807.
• [11] C.S. Yang, J.D. Lambert, S. Sang, Arch. Toxicol. 2009, 83, 11.
• [12] G. Yen, H.Y. Chen, H.H. Pemg, J. Agric. Food Chem. 1997, 45, 30.
• [13] M. Donejko, E. Galicka, M. Niczyporuk, J. Przylipiak, A. Przylipiak, Post. Fitoter. 2013, 3, 167.
• [14] I.A. Turek, J. Kozińska, W. Drygas, Kardiol. Pol. 2012, 70, nr 8, 848.
• [15] M. Stępień, M. Szulińska, P. Bogdański, Forum Zaburzeń Metabolicznych 2011, 2, nr 3, 184.
• [16] J. Kim, H.J. Lee, K.W. Lee, J. Neurochem. 2010, 112, 1415.
• [17] T. Pan, J. Jankovic, W. Le, Drugs Aging 2003, 20, 711.
• [18] H.L. Raghavendra, T.R.K. Prashith, F. Khanum, Sci. Technol. Arts Res. J. 2014, 3, nr 4, 141.
• [19] G. L. Ellman, K. D. Courtney, V. Andres, R. M. Featherstone, Pharmacology 1961, 7, 88.
• [20] V.L. Singleton, J.A. Rossi, Am. J. Enol. Vitic. 1965, 16, 144.
• [21] C. Sanchez-Moreno, J.A. Larrauri, F. Saura-Calixto, J. Sci. Food Agric. 1998, 79, 270.
• [22] S. Mandel, T. Amit, L. Reznichenko, O. Weinreb, M.B.H. Youdim, Mol. Nutr. Food Res. 2006, 50, 229.
• [23] G. Zheng, K. Sayama, T. Okubo, In Vivo 2004, 18, nr 1, 55.
• [24] M. Caruana, N. Vassallo, Malta Med. J. 2011, 23, 03.
• [25] D. Horžić, D. Komes, A. Belšcak, K. Kovacevic-Ganic, D. Iveković, D. Karlovic, Food Chem. 2009, 115, 441.
• [26] S. Khokhar, S.G.M. Magnusdottir, J. Agric. Food Chem. 2002, 50, 565.
• [27] A. Rusaczonek, F. Świderski, B. Waszkiewicz-Robak, Pol. J. Food Nutr. Sci. 2010, 60, nr 1, 33.
• [28] M. Chen, Y. Zhu, H. Zhang, J. Wang, X. Liu, Z. Chen, M. Zheng, B. Liu, Int. J. Food Prop. 2017, 20, nr 8, 1715.
• [29] M.P. Almajano, R.J. Carbó, A.L.A. Jiménez, M.H. Gordon, Food Chem. 2008, 108, 55.
• [30] L.S. Ramírez-Aristizabal, A. Ortíz, M.F. Restrepoaristizabal, J.F. Salinas-Villada, Vitae 2017, 24, nr 2, 132.
• [31] J. Klepacka, Przem. Chem. 2020, 99, nr 4, 609.
• [32] Q.V. Vuong, J.B. Golding, C.E. Stathopoulos, M.H. Nguyen, P.D. Roach, J. Sep. Sci. 2011, 34, 3099.
• [33] M. Fik, A. Zawiślak, Żywn. Nauka. Technol. Jakość 2004, 3, nr 40, 98.
• [34] S.D. Lin, E.H. Liu, J.L. Mau, LWT Food Sci. Technol. 2008, 41, 1616.
• [35] A. Yashin, Y. Yashin, B. Nemzer, Am. J. Biomed. Sci. 2011, 3, nr 4, 322.
• [36] Y. Zuo, H. Chen, Y. Deng, Talanta 2002, 57, 307.
• [37] M. Jeszka-Skowron, A. Zgoła-Grześkowiak, Food Anal. Methods 2014, 7, 2033.