Ocena stanu sanitarno-bakteriologicznego zbiornika wodnego „Balaton” zlokalizowanego w centrum Bydgoszczy

• Autorzy: Kubera Ł. , Małecka-Adamowicz M.

Warianty tytułu

EN

Evaluation of sanitary and bacteriological condition of the “Balaton” water reservoir located in the center of Bydoszcz

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Zbiorniki wodne coraz częściej stają się integralną infrastrukturą dużych miast, pełniąc ważne funkcje estetyczne i rekreacyjne. Nie są one jednak objęte systematycznym monitoringiem mikrobiologicznym. Celem niniejszej pracy była ocena stanu sanitarno-bakteriologicznego zbiornika wodnego „Balaton” położonego w centrum Bydgoszczy. Analizy sanitarne obejmujące liczebność wybranych grup mikroorganizmów wykonane zostały zgodnie ze standardami Polskich Norm. Dodatkowo badania poszerzono o oznaczenie ogólnej liczby bakterii (OLB) oraz ocenę aktywności błony cytoplazmatycznej komórek bakterioplanktonu, wykorzystując w tym celu zestaw barwników fluorescencyjnych LIVE/DEAD® BacLightTM Bacterial Viability Kit. Wykonane badania wykazały, że zasadniczy wpływ na ilość drobnoustrojów miała pora roku. Największą liczbę bakterii psychrofilnych, mezofilnych oraz enterokoków kałowych odnotowano latem, a najmniejszą jesienią. Wyjątek stanowiły bakterie z grupy coli oraz Escherichia coli, których najmniejszą liczbę odnotowano w sezonie wiosennym. Podobne zależności stwierdzono na podstawie analizy ogólnej liczby komórek bakterii, wśród których aktywność błony cytoplazmatycznej wynosiła od 91,5% latem do 72,3% wiosną. Analiza taksonomicznego zróżnicowania dominujących szczepów bakterii wykonana metodą BIOLOG® wykazała, że wszystkie badane izolaty należały do klasy Gammaproteobacteria.

EN

Water reservoirs have become increasingly an integral part of infrastructure of big cities. They play an important aesthetic and recreational functions, but aren’t covered by systematic microbiological monitoring. The aim of this study was evaluation of sanitary and bacteriological condition of the “Balaton” water reservoir located in Bydgoszcz. Sanitary analysis includes the number of selected groups of microorganisms were made in accordance with the Polish Standards recommendations. The study was expanded to determine the total number of bacteria (TNB) and assessment the activity of cytoplasmic membrane of bacterioplankton. In this case was used fluorescent dyes LIVE/DEAD® BacLightTM Bacterial Viability Kit. The studies showed, that the season has a major impact on the distribution of bacterial populations. The highest average number of psychrophilic and mesophilic bacteria and also fecal enterococci was recorded in summer. The exceptions were coliform bacteria and Escherichia coli, which the smallest average number was noted in spring. Similar relationship observed based on the total number bacteria, among which cytoplasmic membrane activity varied from 91.5% in summer to 72.3% in autumn. The taxonomic analysis of dominant bacterial strains prepared using BIOLOG® method showed, that all examinated isolates belonged to Gammaproteobacteria class.

Słowa kluczowe

PL

bakterioplankton; LIVE/DEAD; metoda BIOLOG®; zbiorniki wodne

EN

bacterioplankton; BIOLOG® method; LIVE/DEAD; water reservoirs

• Wydawca: Wydawnictwo ITP
• Czasopismo: Woda-Środowisko-Obszary Wiejskie
• Rocznik: 2017
• Tom: T. 17, z. 1
• Strony: 63--73
• Opis fizyczny: Bibliogr. 21 poz.

Twórcy

autor

Kubera Ł.

• Uniwersytet Kazimierza Wielkiego w Bydgoszczy, Wydział Nauk Przyrodniczych, Instytut Biologii Eksperymentalnej, Zakład Mikrobiologii, al. Powstańców Wielkopolskich 10, 85-090 Bydgoszcz

autor

Małecka-Adamowicz M.

• Uniwersytet Kazimierza Wielkiego w Bydgoszczy, Wydział Nauk Przyrodniczych, Instytut Biologii Eksperymentalnej, Zakład Mikrobiologii

Bibliografia

• AMANN R.I., WOLFGANG L., SCHLEIFER K.H. 1995. Phylogenetic identification and in situ detection of individual microbial cells without cultivation. Microbiological Revievs. Vol. 59. No. 1 s. 143– 169.
• COLWELL R.R. 2000. Viable but nonculturable bacteria: A survival strategy. Journal of Infection and Chemotherapy. Vol. 6. Iss. 2 s. 121–125.
• FRĄCZEK K., GRZYB J., CHMIEL M.J. 2015. Ocena zagrożenia bakteriologicznego w wodach powierzchniowych w rejonie eksploatowanego składowiska odpadów komunalnych [The evaluation of bacteriological hazard in surface waters near the operating municipal landfill site]. WodaŚrodowisko-Obszary Wiejskie. T. 15. Z. 1(49) s. 37–45.
• FRĄK M., NESTOROWICZ A. 2009. Ocena stanu sanitarnego wybranych zbiorników wodnych parków miejskich Warszawy [Sanitary assesment of selected water reservoir’s in Warsaw parks]. Przegląd Naukowy Inżynieria i Kształtowanie Środowiska. Nr 44 s. 3–10.
• FREESE H.M., KARSTEN U., SCHUMANN R. 2006. Bacterial abundance, activity, and viability in the eutrophic River Warnow, northeast Germany. Microbial Ecology. Vol. 51. Iss. 1 s. 117–127.
• GORĄCZKO M. 2004. Zbiorniki wodne na obszarze Bydgoszczy w ujęciu historycznym [Water reservoirs on the Bydgoszcz area in the historical approach]. Kronika Bydgoska. Nr 25 s. 13–36.
• HAGLUND A.L., LANTZ P., TÖRNBLOM E., TRANVIK L. 2003. Depth distribution of active bacteria and bacterial activity in lake sediment. FEMS Microbiology Ecology. Vol. 46. Iss. 1 s. 31–38.
• JAMIESON R.E., HEYWOOD J.L., ROGERS A.D., BILLETT D.S.M., PEARCE D.A. 2013. Bacterial biodiversity in deep-sea sediments from two regions of contrasting surface water productivity near the Crozet Islands, Southern Ocean. Deep Sea Research. Part I: Oceanographic Research Papers. Vol. 75 s. 67–77.
• KALWASIŃSKA A., DONDERSKI W. 2005. Neustonic versus planktonic bacteria in eutrophic lake. Polish Journal of Ecology. Vol. 53. No. 4 s. 571–577.
• KOTON-CZARNECKA M., CHRÓST R.J. 2003. Protozoans prefer large and metabolically active bacteria. Polish Journal of Environmental Study. Vol. 12. No. 3 s. 325–334.
• LEON C., CAMPOS V., URRUTIA R., MONDACA M.A. 2012. Metabolic and molecular characterization of bacterial community associated to Patagonian Chilean oligotrophic-lakes of quaternary glacial origin. World Journal of Microbiology and Biotechnology. Vol. 28. Iss. 4 s. 1511–1521.
• LLEÒ M.M., BENEDETTI D., TAFI M.C., SIGNORETTO C., CANEPARI P. 2007. Inhibition of the resuscitation from the viable but non-culturable state in Enterococcus faecalis. Environmental Microbiology. Vol. 9. Iss. 9 s. 2313–2320.
• MIKŠ M.H., WARMIŃSKA-RADYKO I. 2008. Wybrane techniki fluorescencyjne w badaniach stanu fizjologicznego i przeżywania komórek bakteryjnych w żywności [Selected fluorescent techniques in the research of the physiological state and viability of bacteria cells in food]. Medycyna Weterynaryjna. Nr 64(5) s. 623–627.
• OLIVER J.D. 2005. The viable but nonculturable state in bacteria. Journal of Microbiology. Vol. 43. Iss. 1 s. 93–100.
• OLIVER J.D. 2010. Recent findings on the viable but nonculturable state in pathogenic bacteria. FEMS Microbiology Revievs. Vol. 34. Iss. 4 s. 415–425.
• PN-EN ISO 7899-2:2004. Jakość wody – Wykrywanie i oznaczanie ilościowe enterokoków kałowych. Cz. 2: Metoda filtracji membranowej [Water quality – Detection and enumeration of intestinal enterococci. P. 2: Membrane filtration method].
• PN-EN ISO 8199:2010. Jakość wody – Ogólne wytyczne oznaczania liczby bakterii metodą hodowli [Water quality – General guidance on the enumeration of micro-organisms by culture].
• PN-EN ISO 9308-1:2014-12. Jakość wody – Oznaczanie ilościowe Escherichia coli i bakterii grupy coli. Cz. 1: Metoda filtracji membranowej do badania wód o małej ilości mikroflory towarzyszącej [Water quality – Enumeration of Escherichia coli and coliform bacteria. P. 1: Membrane filtration method for waters with low bacterial background flora].
• STOLLE C., LABRENZ M., MEESKE C., JÜRGENS K. 2011. Bacterioneuston community structure in the southern Baltic Sea and its dependence on meteorological conditions. Applied and Environmental Microbiology. Vol. 77. Iss. 11 s. 3726–3733.
• WAGNER A. 2005. Znaczenie zbiorników wodnych w rozwoju ekoturystyki i agroturystyki w wybranych rejonach wiejskich w okolicach Krakowa [The role of water bodies in the development of eco-tourism and agro-tourism in the selected rural regions near Cracow]. Przegląd Naukowy Inżynieria i Kształtowanie Środowiska. Nr 2(32) s. 140–146.
• ZWART G., CRUMP B.C., VAN AGTERVELD M.P.K., HAGEN F., HAN S.K. 2002. Typical freshwater bacteria: An analysis of available 16S rRNA gene sequences from plankton of lakes and rivers. Aquatic Microbial Ecology. Vol. 28. Iss. 2 s. 141–155.

Uwagi

PL

Opracowanie ze środków MNiSW w ramach umowy 812/P-DUN/2016 na działalność upowszechniającą naukę (zadania 2017).