Effect of Vegetable and Mineral Oils on the Development - of Diplocarpon rosae Wolf. the Causal Agent of Black Spot of Rose

• Autorzy: Wojdyła A. T.

Warianty tytułu

PL

Wpływ olei roślinnych i mineralnych na rozwój Diplocarpon rosae Wolf. sprawcę czarnej plamistości róży

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Experiments were carried out to determine the effect of vegetable oils: corn, olive, rapeseed, sunflower, soybean, and grape; vegetable oils recommended as adjuvants: Dedal 90 EC (90 % vegetable oil) and Olejan 80 EC (85 % rapeseed oil); and mineral oils: Atpolan 80 EC (76 % SN oil), Ikar 95 EC (95 % SAE petroleum oil), Olemix 84 EC (84 % DSA petroleum oil), Promanal 60 EC (60 % petroleum oil), used at a concentration of 1 % for spraying rose bushes 9 times at 7-day intervals in order to control the black spot disease caused by Diplocarpon rosae. The results do not allow the drawing of a clear conclusion as to which of the tested vegetable or mineral oils showed the highest effectiveness in inhibiting the development of the symptoms of black spot and the fungus D. rosae. It was found that the percentage effectiveness of the tested oils relative to the control depended on the type of oil, the time of observation and the experiment. Depending on the experiment and the time of observation, different percentage rates of the inhibition in the development of disease symptoms were obtained. After spraying the roses 3 times, the effectiveness of the tested oils ranged from 35.8 % (sunflower oil) to 77.8 % (Atpolan 80 EC); after 6 applications, it was from 26.8 % (olive oil) to 55 % (Olejan 85 EC); and after a total of 9 treatments, it was from 29.5 % (corn oil, soybean oil and Olemix 84 EC) to 58.6 % (olive oil). There was no evidence of phytotoxicity of the tested oils to the variety of rose on which the experiments were conducted.

PL

W przeprowadzonych badaniach polowych określano wpływ olei roślinnych (kukurydziany, olej z oliwek, rzepakowy, słonecznikowy, sojowy, winogronowy) lub olei roślinnych polecanych jako adjuwanty: Dedal 90 EC (90 % vegetable oil), Olejan 80 EC (85 % rape oil) oraz olei mineralnych Atpolan 80 EC (76 % SN oil), Ikar 95 EC (95 % SAE petroleum oil), Olemix 84 EC (84 % DSA petroleum oil), Promanal 60 EC 184 Adam T. Wojdyła (60 % petroleum oil) stosowanych w stęż. 1 % do 9-krotnego opryskiwania krzewów róż w odstępach 7-dniowych w zwalczaniu czarnej plamistości powodowanej przez Diplocarpon rosae. Uzyskane wyniki nie pozwalają na wyciągnięcie jednoznacznego wniosku, który z badanych olei roślinnych lub mineralnych wykazywał najwyższą skuteczność w ograniczaniu rozwoju objawów czarnej plamistości oraz grzyba D. rosae. Stwierdzono, że procentowa skuteczność badanych olei względem kontroli była uzależniona od rodzaju oleju, terminu obserwacji oraz doświadczenia. W zależności od doświadczenia i terminu obserwacji stwierdzono zróżnicowane procentowe ograniczanie rozwoju objawów chorobowych. Po 3-krotnym opryskiwaniu róż skuteczność badanych olei wahała się od 35,8 % (sunflower oil) do 77,8 % (Atpolan 80 EC), po 6-krotnym opryskiwaniu od 26,8 % (olive oil) do 55 % (Olejan 85 EC) oraz po 9-krotnym opryskiwaniu od 29,5 % (corn oil, soybean oil and Olemix 84 EC) do 58,6 % (olive oil). Nie stwierdzono fitotoksyczności badanych olei w stosunku do odmiany róż, na której prowadzono doświadczenia.

Słowa kluczowe

EN

Diplocarpon rosae; vegetable and mineral oils; control; rose

PL

Diplocarpon rosae; oleje roślinne i mineralne; zwalczanie; róża

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Ecological Chemistry and Engineering. A
• Rocznik: 2013
• Tom: Vol. 20, nr 2
• Strony: 175--185
• Opis fizyczny: Bibliogr. 36 poz., tab.

Twórcy

autor

Wojdyła A. T.

• Department of Ornamental Plant Protection, Research Institute of Horticulture, ul. Konstytucji 3 Maja 1/3, 96–100 Skierniewice, Poland

Bibliografia

• [1] Wiśniewska-Grzeszkiewicz H, Wojdyła AT, Rejman S. Zesz Nauk Inst Sad. i Kwiac. 1999;6:189-199.
• [2] Rongai D, Cerato C, Lazzeri L. Eur J Plant Pathol. 2009;124:613-619. DOI 10.1007/s10658-009-9448-9.
• [3] Dobrzański A, Pałczyński J, Anyszka Z. Materiały XXXV Sesji Nauk Inst Ochr Rośl. Część I: Referaty. 1995:73-79.
• [4] Matysiak R, Woźnica Z, Pudełko J, Skrzypczak G. Materiały XXXV Sesji Nauk Inst Ochr Rośl. Część I:Referaty. 1995:67-72.
• [5] Grayson BT, Webb JD, Batten DM, Edwards D. Pestic Sci. 1996;46:199-206.
• [6] Vawdrey LL, Peterson RA, DeMarchi L, Grice KE. Australasian Plant Pathol. 2004;33(3):379-384. DOI 10.1071/AP04043.
• [7] Wojdyła A. J Fruit Ornam Plant Res. 1998;VI(3-4):147-156.
• [8] Ratajkiewicz H, Woźnica Z, Sikorski M. Progr Plant Protect/Post Ochr Roślin. 2007;47(1):352-354.
• [9] Horst RK, Kawamoto SO, Porter LL. Plant Disease. 1992;76(3):247-251.
• [10] Jamar L, Lefrancq B, Lateur M. J Plant Diseases and Protect. 2007;114(5):221-227.
• [11] Osnaya-Gonzales M, Scholösser E. Med Fac Landbouww Univ Gent. 1998;63(3b):995-998.
• [12] Osnaya-Gonzales M, Scholösser E. Med Fac Landbouww Univ Gent. 2000;65(2b):725-729.
• [13] Northover J, Schneider KE. Plant Dis. 1996;80:544-550. DOI 1996-0308-04R.
• [14] Wojdyła AT. Med Fac Landbouww Univ Gent. 2002;67(2):369-376.
• [15] Northover J, Schneider KE. Plant Dis. 1993;77:152-157.
• [16] Wojdyła AT. J Plant Protect Res. 2010;50(2):164-171.
• [17] Wojdyła AT. Comm App Biol Sci Ghent University. 2005;70(3):193-198.
• [18] Wojdyła AT. Scientific Work of The Lithuanian Institute of Horticulture and Lithuanian University of Agriculture. Sodininkystë Ir Darţininkystë. Mokslo darbai. 2009;28(3):243-248.
• [19] Wojdyła A. Bulletin of the Polish Academy of Science – Biological Sciences. 2003;51(2):153-158.
• [20] Grossman J.: The IPM Practioner, 1990;12:1-10.
• [21] Jee HJ, Shim CK, Ryu KY, Park JH, Lee BM, Choi DH, Ryu GH. Plant Pathol J. 2009;25(3):280-285.
• [22] Lewis D. Horticulture and Home Pest news 1999 February 16. www.ipm.iastste.edu/ipm/hortnews/1999/2-19-1999/oilsprays.html
• [23] http://www.scientificpsychic.com/fitness/fattyacidsl.html
• [24] Kuć J. European J Plant Pathol. 2001;107:7-12.
• [25] Cohen Y, Gisi U, Mosinger E. Physiological and Molecular Plant Pathol. 1991;38(4):255-263. DOI 10.1016/S0885-5765(05)80117-1.
• [26] Clayton EE, Smith TE, Shaw KJ, Gaines JG, Graham TW, Yeager CC. J Agric Res. 1943;66:261-276.
• [27] Calpouzos L, Theis T, Rivera CM, Colberg C. Phytopathology. 1959;27:119-122.
• [28] Whiteside JO. Phytopathology. 1973;63:262-266.
• [29] Roszyk J, Nowosielski O, Komosa A. Acta Agrophys. 2006;7(3):709-720.
• [30] Brooks C, Cooley JS, Fisher DF. J Agric Res. 1979;18:211-240.
• [31] Wedding RT, Riehl LA, Rhoads WA. Plant Physiol. 1951;27(2):269-278.
• [32] Goszczyński W, Tomczyk A. Progr Plant Protect/Post Ochr Roślin. 2003;43(2):648-650.
• [33] Borecki Z: Materiały do zajęć specjalizacyjnych z fitopatologii. Część IV: Fungicydy stosowane w ochronie roślin. Warszawa: Skrypt SGGW AR; 1981.
• [34] Wojdyła AT. Acta Sci Pol Hortorum Cultus. 2012;11(4):143-156.
• [35] Osnaya-Gonzales M, Steinhauer B, Scholösser E. Med Fac Landbouww Univ Gent. 1997;62(3b):1041-1048.
• [36] Wojdyła AT, Jankiewicz D. Comm Appl Biol Sci Ghent University. 2004;69(4):697-703.