Oddziaływanie benzoesanu sodu na wybrane procesy fizjologiczne w kiełkujących nasionach rzodkiewki Raphanus sativus L.

• Autorzy: Święciło A.

Warianty tytułu

EN

Influence of sodium benzoate on some physiological processes taking place in germinating seeds of radish Raphanus sativus L.

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Zbadano wpływ benzoesanu sodu na proces kiełkowania nasion rzodkiewki Raphanus sativus L. Uzyskane wyniki sugerują, że benzoesan sodu w stężeniach mniejszych niż 0,03 mol • dm-3 obniżał energię, a w mniejszym stopniu zdolność kiełkowania nasion rzodkiewki. Nie modyfikował jednak dynamiki wzrostu siewek i nie indukował cech patomorfologicznych. Natomiast zastosowany w stężeniach większych niż 0.03 mol • dm-3 całkowicie hamował proces kiełkowania nasion. Zarodki tych nasion były żywe, ale charakteryzowały się małą aktywnością katalazy w porównaniu do nasion skiełkowanych.

EN

Derivatives of benzoate acid are produced at industrial level and are used as preservatives in food, pharmaceutical and cosmetic industries. They also occur naturally in some berries and are intermediates of metabolic trails. In over-physiological doses they have a destructive effect on human body and other living organisms. The aim of this study was determine the influence of sodium benzoate on germination processes of radish seeds Raphanus sativus L. The results that were obtained reveal that sodium benzoate in concentration lower than 0.03 mol • dm-3 decreases energy, and to a smaller extent germination ability of radish seeds. However, sodium benzoate does not modify growth dynamics of seedlings, nor does it induce pathomorphological features. In concentration higher than 0.03 mol • dm-3 sodium benzoate totally inhibits seed germination process. Despite the lack of signs of seed germination in the investigated samples, no decrease in germ vitality in the seeds was observed. The results suggest that biological tests based on seed germination process can be used to determine potential toxicity of preservatives.

Słowa kluczowe

PL

benzoesan sodu; kiełkowanie; rzodkiewka Raphanus sativus; katalaza

EN

sodium benzoate; seed germination; radish Raphanus sativus; catalase

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Proceedings of ECOpole
• Rocznik: 2007
• Tom: Vol. 1, No. 1/2
• Strony: 253--257
• Opis fizyczny: Bibliogr. 13 poz., tab.

Twórcy

autor

Święciło A.

• Katedra Biochemii i Chemii Środowiskowej, Wydział Nauk Rolniczych w Zamościu, Akademia Rolnicza w Lublinie, ul. Szczebrzeska 102, 22-400 Zamość

Bibliografia

• [1] Basile A.. Sorbo S.. López-Saez JA. i Castaldo Cobianchi R.: Effects of seven pure flavonoids from mosses on germination ami growth of Tortula muraiis HEDW (Bryophyta) and Raphanus sativus L. (Magnoliophyla) Phytochemistry. 2000. 62(7), 1145-1151.
• [2] Chiapusio C. Pellissier F. i Gallcl C: Uptake and translocation of phytochemical 2-henzoxazolinone (BOA) in radish seeds and seedlings. J. Exp. Bot, 2004, 55(402), 1587-1592.
• [3] Chen Y.X.. He Y.F.. Luo Y.M., Yu Y.L., Lin Q. i Wong M.H.: Physiological mechanism of plant roots exposed to cadmium. Chemosphere. 2003. 50(6). 789-793.
• [4] Nath K. Saini S. i Sharma Y.K.: Chromium in tannery industry effluent and its effect on plant metabolism and growth. J. Ens iron. Biol.. 2005. 26(2). 197-204.
• [5] Wieczorek J.. Wieczorek Z i Olszewski J.: Wrażliwość rzodkiewki (Raphanus sativus L.) i sałaty Lactuca sativa L.) na niskie stężenia antracenu podawanego dolistnie. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol., 2004, 496, 527-536.
• [6] Zhang K. i Zhou Q.: Toxic Effects of Al-Based Coagulants on Brassica chinensis and Raphanus sativus growing in acid and neutral conditions. Inc. Environ. Toxicol., 2005. 20. 179-187.
• [7] Blamowski Z.. Borowski E. i Blamowska M.: Wpfyw dlugolańcuchowych alkoholi alifatycznych na wzrost, wymianę gazową i rozdziai asymilatów w roślinach rzodkiewki. Acta Agrobot., 1998, 54, 5-10.
• [8] Yano A., Ohashi Y., Hirasaki T. i Fujiwara K.: Effects of a 60 Hz magnetic field on pholosynlhetic C02 uptake and early growth of radish seedlings. Bioelcctromagnetics, 2004, 25(8). 572-581.
• [9] Uziak Z. Przewodnik do ćwiczeń z fizjologii roślin. WAR. Lublin 1979.
• [10] Libik M., Konieczny R., Pater B., Slesak I. i Miszalski Z.: Differences in the activities of some antioxidant enzymes and in H202 content during rhizogenesis and somatic embrvogenesis in callus cultures of the ice plant. Plant Cell Rep., 2005.23(12). 834-841.
• [11] Lowry O.H.. Rosenbrough NJ., Farr A.L i Randall R.J.: Protein measurement with the Folin phenol reagent. Biol. Chem.. 1951, 193(1), 265-275.
• [12] Beers R.F. i Sizer I.W.: A spectropholometric method for measuring the breakdown of hydrogen peroxide by catalase. J. Biol. Chem., 1952. 195(1). 133-140.
• [13] Schopfer P.. Piachy C. i Frahry C: Release of reactive oxygen intermediates (superoxide radicals, hydrogen peroxide, and hydroxyl radicals) and peroxidase in germinating radish seeds controlled by light, gibberellin. and abscisic acid. Plant Physiol., 2001. 125(4). 1591-1602.