Transestryfikacja enzymatyczna oleju słonecznikowego z wykorzystaniem promieniowania mikrofalowego

• Autorzy: Narowska B. , Kułażyński M. , Łukaszewicz M.

Identyfikatory

DOI

10.15199/62.2015.8.36

Warianty tytułu

EN

Microwave-assisted transesterification of sunflower oil

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Olej słonecznikowy poddano reakcji transestryfikacji z udziałem metanolu oraz biokatalizatora enzymatycznego (Lipaza B z Candida antarctica immobilizowana na Immobead 150) lub homogenicznego katalizatora zasadowego (KOH). W reakcji transestryfikacji stosunek molowy metanolu do oleju wynosił odpowiednio 4:1 i 6:1. Proces prowadzono w układzie tradycyjnego ogrzewania oraz w układzie reaktora przepływowego z ogrzewaniem mikrofalowym. Ogrzewanie energią mikrofalową znacząco skraca czas reakcji przy jednoczesnym wzroście jej wydajności.

EN

Sunflower oil was transesterified with MeOH to biodiesel on homogenous KOH catalyst or on an enzymatic catalyst (lipase B from Candida antarctica immobilized on Immobead 150) in microwave and conventionally heated reactors. The microwave irradiation resulted in an acceleration of the reaction and increasing the product yield.

Słowa kluczowe

PL

olej słonecznikowy; promieniowanie mikrofalowe; transestryfikacja enzymatyczna

EN

sunflower oil; microwave; transesterification

• Wydawca: Wydawnictwo SIGMA-NOT
• Czasopismo: Przemysł Chemiczny
• Rocznik: 2015
• Tom: T. 94, nr 8
• Strony: 1424--1427
• Opis fizyczny: Bibliogr. 20 poz., tab., wykr.

Twórcy

autor

Narowska B.

• Zakład Chemii i Technologii Paliw, Wydział Chemiczny, Politechnika Wrocławska, ul. Gdańska 7/9, 50-344 Wrocław

autor

Kułażyński M.

• Politechnika Wrocławska

autor

Łukaszewicz M.

• Uniwersytet Wrocławski

Bibliografia

• 1. L.C. Meher, V.D. Sagar, S.N. Naik, Renew. Sustain. Energy Rev. 2006, 10, nr 3, 248.
• 2. Y. Wang, J. Liu, H. Gerken, C. Zhang, Q. Hu, Y.T. Li, Biores. Technol. 2014, 172, 143.
• 3. G. Vicente, A. Coteron, M. Martinez, J. Aracil, Ind. Crops Prod. 1998, 8, nr 1, 29.
• 4. H. Fukuda, H. Noda, Pat. USA US 6982155 B1 (2006).
• 5. J.V. Gerpen, Fuel Process. Technol. 2005, 86, nr 10, 1097.
• 6. F.R. Ma, M.A. Hanna, Biores. Technol. 1999, 70, nr 1, 1.
• 7. M. Mittelbach, Biores. Technol. 1996, 27, nr 5, 435.
• 8. T. Samukawa, M. Kaieda, T. Matsumoto, K. Ban, A. Kondo, Y. Shimada, H. Noda, H. Fukuda, J. Biosci. Bioeng. 2000, 90, nr 2, 180.
• 9. Y. Shimada, Y. Watanabe, T. Samukawa, A. Sugihara, H. Noda, H. Fukuda, Y. Tominaga, J. Am. Oil Chem. Soc. 1999, 76, nr 7, 789.
• 10. P.C.M. Da Ros, L. Freitas, V.H. Perez, H.F. De Castro, Bioprocess Biosystems Eng. 2013, 36, nr 4, 443.
• 11. M. Iso, B.X. Chen, M. Eguchi, T. Kudo, S. Shrestha, J. Mol. Catal. B: Enzymatic 2001, 16, nr 1, 53.
• 12. H. Noureddini, X. Gao, R.S. Philkana, Biores. Technol. 2005, 96, nr 7, 769.
• 13. Ö. Köse, M. Tüter, H.A. Aksoy, Biores. Technol. 2002, 83, nr 2, 125.
• 14. L.A. Nelson, T.A. Foglia, W.N. Marmer, J. Am. Oil Chem. Soc. 1996, 73, nr 9, 1191.
• 15. Y. Watanabe, Y. Shimada, A. Sugihara, H. Noda, H. Fukuda, Y. Tominaga, J. Am. Oil Chem. Soc. 2000, 77, nr 4, 355.
• 16. C. Mazzocchia, G. Modica, A. Kaddouri, R. Nannicin, Comp. Rend. Chim. 2004, 7, nr 6–7, 601.
• 17. M.P.C. Da Ros, W.C.E. Silva, D. Grabauskas, V.H. Perez, H.F. de Castro, Ind. Crops Prod. 2014, 52, 313.
• 18. D.H. Yu, L. Tian, D.X. Ma, H. Wu, Z. Wang, L. Wang, X.X. Fang, Green Chem. 2010, 12, nr 5, 844.
• 19. H. Fukuda, A. Kondo, H. Noda, J. Biosci. Bioeng. 2001, 92, nr 5, 405.
• 20. S.V. Ranganathan, S.L. Narasimhan, K. Muthukumar, Biores. Technol. 2008, 99, nr 10, 3975.