Dobroczynne owady w zrównoważonym rozwoju. Chrząszcze i motyle w lecznictwie

• Autorzy: Knutelski Stanisław , Kuryło Adrianna , Knutelska Emilia

Identyfikatory

DOI

10.15584/pjsd.2019.23.1.3

Warianty tytułu

EN

Benficial insects in sustainable development. Beetles and butterfly in treatment

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Owady spełniają kluczową rolę w ekosystemach. Ich zróżnicowana obecność jest ważna dla zrównoważonego rozwoju cywilizacji. Przedstawiono przykłady zastosowania chrząszczy (Coleoptera) i motyli (Lepidoptera) w lecznictwie. Szczególną uwagę poświęcono niektórym biologicznie aktywnym substancjom mającym działanie przeciwdrobnoustrojowe, przeciwgrzybiczne, przeciwwirusowe i przeciwnowotworowe.

EN

Insects play a key role in ecosystems. Their diverse presence is important for the sustainable development of civilization. Examples of the use of beetles (Coleoptera) and butterflies (Lepidoptera) in treatment are presented. Particular attention has been given to certain biologically active substances that have antimicrobial, antifungal, antiviral and anticancer effects.

Słowa kluczowe

PL

medycyna; lecznictwo; entomoterapia; chrząszcz; motyle; AMPs

EN

medicine; treatment; entomotherapy; beetles; butterflies; AMPs

• Wydawca: Polskie Towarzystwo Inżynierii Ekologicznej w Rzeszowie, Oddział Południowo-Wschodni ; Polskie Towarzystwo Gleboznawcze Oddział w Rzeszowie
• Czasopismo: Polish Journal for Sustainable Development
• Rocznik: 2019
• Tom: T. 23, cz. 1
• Strony: 25--34
• Opis fizyczny: Bibliogr. 50 poz., tab.

Twórcy

autor

Knutelski Stanisław

• Uniwersytet Jagielloński, Wydział Biologii, Instytut Zoologii i Badań Biomedycznych, Zakład Entomologii

autor

Kuryło Adrianna

• Uniwersytet Jagielloński, Wydział Biologii, Instytut Zoologii i Badań Biomedycznych, Zakład Entomologii

autor

Knutelska Emilia

• Uniwersytet Jagielloński, Wydział Biologii, Instytut Zoologii i Badań Biomedycznych, Zakład Entomologii

Bibliografia

• 1. Ahn M.Y., Shim S.H., Jeong H.K., Ryu K.S. 2008. Purification of a dimethyladenosine compound from silkworm pupae as a vasorelaxation substance. J. Ethnopharmacol. 117. 115-122.
• 2. Alves R.R.N., Alves H.N. 2011. The faunal drug store: animal-based remedies used in traditional medicines in Latin America. J Ethno biol Ethnomed. 7(9). 1-43.
• 3. Alzoubi K., Egler J., Briglia M., Fazio A., Faggio C., Lang F. 2015. Induction of suicidal erythrocyte death by cantharidin. Toxins. 7. 2822-2834.
• 4. Andrade H. 2000. São Cipriano: O Bruxo. 14th eds. Pallas. Rio de Janeiro.
• 5. Barbault F., Landon C., Guenneugues M., Meyer J., Schott V., Dimarcq J., Vovelle F. 2003. Solution Structure of Alo-3: A New Knottin-Type Antifungal Peptide from the Insect Acrocinus longimanus. Biochemistry. 42(49). 14434-14442.
• 6. Benítez G. 2011. Animals used for medicinal and magico-religious purposes in western Granada Province, Andalusia (Spain). J. Ethnopharmacol. 137. 1113-1123.
• 7. Bouchard P., Smith A.B.T., Douglas H., Gimmel M.L., Brunke A.J., Kanda K. 2017. Biodiversity of Coleoptera, pp 337-417. In: Foottil R.G., Adler P.H. (Eds). Insect Biodiversity. Science and Society. Vol. 1. Wiley-Blackwell. New Yersey. USA.
• 8. Buszko J., Nowacki J. 2000. The Lepidoptera of Poland. A distributional checklist. Polish Entomological Monographs. 1. 1-178.
• 9. Chakravorty J., Ghosh S., Meyer-Rochow V.B. 2011. Practices of entomophagy and entomotherapy by members of the Nyishi and Galo tribes, two ethnic groups of the state of Arunachal Pradesh (North-East India). J. Ethnobiol. Ethnomed. 7(5). 3-14.
• 10. Costa-Neto E.M. 2005. Entomotherapy or the medicinal use of insects. Journal of Ethnobiology. 25(1). 93-114.
• 11. Crespo R., Villaverde M.L., Girotti J.R., Güerci A., Juárez M.P., De Bravo M.G. 2011. Cytotoxic and genotoxic effects of Demence secretion of Ulomoides dermestoides on A549 cells. J. Ethnopharmacol. 136. 204-209.
• 12. Cytryńska M., Mak P., Zdybicka-Barabas A., Suder P., Jakubowicz T. 2007. Purification and characterization of eight peptides from Galleria mellonella immune hemolymph. Peptides. 28(3). 533-546.
• 13. Dong Q.F., Wang J.L., Zhang S.F., Wang Z., Zhang C.X., Gao H., Zhang H.M., Zhang M. 2008. Antifungal activity of crude extracts and fat-soluble constituents of Holotrichia diomphalia larvae. Bioresource Technol. 99(11). 8521-8523.
• 14. Dossey A.T. 2010. Insects and their chemical weaponry: new potential for drug discovery. Nat. Prod. Rep. 27. 1737-1757.
• 15. Flejter-Wojciechowicz A. 2015. Wykorzystanie bezkręgowców w medycynie i kosmetyce. Hylostet. Internetowa gazeta medyczna. Nr 79 [dok. elektr.: http://hylostet.pl/igm/article/wykorzystanie-bezkregowcow-w-medycynie-i-kosmetyce].
• 16. Galvis C.E., Méndez L.Y., Kouznetsov V.V. 2013. Cantharidin-based small molecules as potential therapeutic agents. Chem. Biol. Drug Des. 82. 477-499.
• 17. Govorushko S. 2017. Human-Insect Interactions. CRC Press. Taylor & Francis Group.
• 18. Hirose Y., Ohta E., Kawai Y., Ohta S. 2013. Dorsamin-A's, glycerolipids carrying adehydrophenylalanine ester moiety from the seed-eating larvae of the bruchid beetle Bruchidius dorsalis. J. Nat. Prod. 76. 554-558.
• 19. Hsia T.C., Yu C.C., Hsu S.C., Tang N.Y., Lu H.F., Huang Y.P., Yang J.H., Chung J.G. 2014. Cantharidin induces apoptosis of H460 human lung cancer cells through mitochondria-dependent pathways. Int. J. Oncol. 45. 245-254.
• 20. Hsieh C.H., Huang Y.C., Tsai T.H., Chen Y.J. 2011. Cantharidin modulates development of human monocyte-derived dendritic cells. Toxicol. in Vitro. 25(8). 1740-1747.
• 21. Hsieh C.H., Chao K.S.C., Liao H.F., Chen Y.J. 2013. Norcantharidin, derivative of cantharidin, for cancer stem cells. Hindawi Publishing Corporation. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine. Vol. 2013. Article ID 838651. 1-11.
• 22. Khan M.S., Singh M., Khan M.A., Arya D.S., Ahmad S. 2014. Scientific validation of cardioprotective attribute by standardized extract of Bombyx mori against doxorubicin-induced cardiotoxicity in murine model. Excli J. 13. 1043-1054.
• 23. Knutelski S. 2018. Różnorodność biotyczna dobrostanem ludzkości. Polish Journal for Sustainable Development. 2(1). 27-38.
• 24. KSIB (Krajowa Sieć Informacji o Bioróżnorodności). Coleoptera Poloniae. [dok. elektr.: http://coleoptera.ksib.pl., data wejścia: 25.04.2019].
• 25. KSIB (Krajowa Sieć Informacji o Bioróżnorodności). Lepidoptera Poloniae. [dok. elektr.: http://lepidoptera.ksib.pl., data wejścia: 25.04.2019].
• 26. Kunin W.E., Lawton J.H. 1996. Does biodiversity matter? Evaluating the case for conserving species, pp. 283–308. In: Gaston (Ed). 1996. Biodiversity: a biology of numbers and differences. Blackwell Science. Oxford.
• 27. Lazarev V.N. 2009. The genes of antimicrobial peptides for the therapy of intracellular infections. Acta Naturae. 1. 121-123.
• 28. Lee J.E., Jo D.E., Lee A.J., Park H.K., Youn K., Yun E.Y., Hwang J.S., Jun M., Kang B.H. 2014. Hepatoprotective and antineoplastic properties of Protaetia brevitarsis larvae. Entomol. Res. 44. 244-253.
• 29. Lee J.E., Jo D.E., Lee A.J., Park H.K., Youn K., Yun E.Y., Hwang J.S., Jun M., Kang B.H. 2015. Hepatoprotective and anticancer activities of Allomyrina dichotoma larvae. J. Life Sci. 25. 307-316.
• 30. Lokeshwari R.K., Shantibala T. 2010. A review on the fascinating world of insect resources: reason for thoughts. Hindawi Publishing Corporation. Psyche. Vol. 2010. Article ID 207570. 1-11.
• 31. Lu S., Wang G., Bacolla A., Zhao J., Spitser S. and Vasquez K.M. 2015. Short Inverted Repeats Are Hotspots for Genetic Instability: Relevance to Cancer Genomes. Cell Reports. 10. 1674-1680.
• 32. Mebs D., Pogoda W., Schneider M., Kauerta G. 2009. Cantharidin and demethylcantharidin (palasonin) content of blister beetles (Coleoptera: Meloidae) from southern Africa. Toxicon. 53(4). 466-468.
• 33. Meloni M., Candusso S., Galeotti M., Volpatti D. 2015. Preliminary study on expression of antimicrobial peptides in European sea bass (Dicentrarchus labrax) following in vivo infection with Vibrio anguillarum, A time course experiment. Fish Shellfish Immunology. 43. 82-90.
• 34. Meyer-Rochow V.B. 2017. Therapeutic arthropods and other, largely terrestrial, folk-medicinally important invertebrates: a comparative survey and review. Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine. 13(9). 1-31.
• 35. Narsinghani T., Sharma R. 2014. Lead optimization on conventional non-steroidal anti-inflammatory drugs: an approach to reduce gastrointestinal toxicity. Chem. Biol. Drug De. 84.1-23.
• 36. Numata K., Kaplan D.L. 2010. Silk-based delivery systems of bioactive molecules. Adv. Drug Deliv. Rev. 62. 1497-1508.
• 37. Pemberton R.W. 1998. Insects and other arthropods used as drugs in Korean traditional medicine. Journal of Ethnopharmacology. 65. 207-216.
• 38. Pettit G.R., Ye Q.H., Herald D.L., Hogan F., Pettit R.K. 2010. Anti-neoplastic Agents. 573. Isolation and Structure of Papilistatin from the Papilionid Butterfly Byasa polyeuctestermessa. J. Nat. Prod. 73(2). 164-166.
• 39. Qian Y., Li G.J., Wang R., Zhou Y.L., Sun P., Zhao X. 2014. In vitro anticancer effects of insect tea in TCA8113 cells. J. Cancer Res. Ther. 10. 1045-51.
• 40. Seabrooks L., Hu L. 2017. Insects: an underrepresented resource for the discovery of biologically active natural products. Acta Pharm. Sinica B. 7(4). 409-426.
• 41. Suh H.J., Kim S.R., Hwang J.S., Kim M.J., Kim I. 2011. Antioxidant activity of aqueous metanol extracts from the lucanid beetle, Serrognathus platymelus castanicolor Motschulsky (Coleoptera: Lucanidae). J. Asia Pac. Entomol. 14. 95-98.
• 42. Tassanakajon A., Somboonwiwat K., Amparyup P. 2015. Sequence diversity and evolution of antimicrobial peptides in invertebrates. Dev. Comp. Immunol. 48. 324-341.
• 43. Tulp M., Bohlin L. 2004. Unconventional natural sources for future drug discovery. Drug Disc. Today. 9(10). 450-458.
• 44. Weis S.M., Cheresh D.A. 2011. Tumor angiogenesis: molecular pathways and therapeutic targets. Nat. Med. 7. 1359-1370.
• 45. Xie J., Xu Y., Huang X., Chen Y., Fu J., Xi M., Wang L. 2015. Berberine induced apoptosis in human breast cancer cells is mediated by reactive oxygen species generation and mitochondrial‐related apoptotic pathway. Tumour Biol. 36. 1279-1288.
• 46. Yan L., Xiong J., Lu H., Lv Q-Z., Ma Q.-y., Côte P, Whiteway M., Jiang Y. 2015. The Role of Mms22p in DNA Damage Response in Candida albicans. G3. Genes. Genomes. Genetics. 5. 2567-2578.
• 47. Yue W.F., Deng W., Li X.H., Roy B., Li G.L., Liu J.M., Wu X.F., Sun H., Yao M.L., Miao J.G., Wan D.C. 2009. Silkworm powder containing manganese superoxide dismutase regulated the immunity and inhibited the growth of Hepatoma 22 cell in mice. Mol. Biol. Rep. 36. 323-328.
• 48. Zadurska O. 2013. Każdy ma swego robaka. O owadach w polskiej medycynie ludowej. Tekstura. Rocz. Fillog.-Kult. 4(1). 27-37.
• 49. Zdybicka-Barabas A., Stączek S., Cytryńska M. 2017. Różnorodność peptydów przeciwdrobnoustrojowych bezkręgowców. Kosmos. 66(4). 563-574.
• 50. Zimian D., Yonghua Z. and Xiwu G. 1997. Medicinal insects in China. Ecol. of Food and Nutr. 36(2-4). 209-220.

Uwagi

Opracowanie rekordu ze środków MNiSW, umowa Nr 461252 w ramach programu "Społeczna odpowiedzialność nauki" - moduł: Popularyzacja nauki i promocja sportu (2020).