Wykorzystanie antagonistycznych właściwości Bacillus subtilis wobec Rhizoctonia solani

• Autorzy: Nabrdalik M. , Moliszewska E.

Identyfikatory

DOI

10.2429/proc.2017.11(1)025

Warianty tytułu

EN

Application of antagonistic properties of Bacillus subtilis against Rhizoctonia solani

• Konferencja: ECOpole’16 Conference (5-8.10.2016 ; Zakopane, Poland)
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Celem badań była ocena antagonistycznych właściwości, wyizolowanego z ryzosfery korzenia buraka cukrowego, szczepu Bacillus subtilis EM1 wobec Rhizoctonia solani ID105. Aktywność przeciwgrzybową określono w badaniach in vitro na podstawie zahamowania wzrostu grzybni patogenu oraz w doświadczeniu wazonowym, w którym określono wpływ B. subtilis EM1 na wzrost roślin porażonych tym patogenem. W pracy określono zdolność bakterii B. subtilis EM1 do biosyntezy kwasu indolilo-3-octowego (IAA). Na podstawie przeprowadzonych badań stwierdzono, że testowany szczep zahamowuje w 85,0% wzrost grzybni fitopatogenu, jednak nie ogranicza jego wpływu na wzrost i porażenie roślin. B. subtilis EM1 wykazuje zdolność do biosyntezy IAA. Największe stężenie 67,6 μg/cm³ IAA stwierdzono po 7 dniach inkubacji szczepu w obecności 2000 μg/cm³ L-tryptofanu. Badany szczep stymulował wzrost siewek buraka cukrowego.

EN

The aim of the research was an assessment of antagonistic properties of strain Bacillus subtilis EM1, isolated from the rhizosphere of sweet beetroot, against Rhizoctonia solani ID105. Antifungal activity was determined in in vitro test on the basis of the mycelial growth inhibition of the pathogen in a pot test, in which the influence of B. subtilis EM1 on the growth of infected plants was evaluated. The paper also determines the ability of B. subtilis EM1 to synthesize indole-3-acetic acid (IAA). Conducted research proved that tested strain inhibits the mycelial growth of the pathogen by 85.0%, however, it does not affect the plant’s growth or the infection process. B. subtilis EM1 shows the ability to synthesize IAA. The highest concentration of IAA amounting 67.6 μg/cm³ was noted after 7 days of strain incubation in the presence of 2000 μg/cm³ L-tryptophan. The strain under study stimulated the growth of sugar beetroot seedlings.

Słowa kluczowe

PL

Bacillus subtilis; Rhizoctonia solani; aktywność przeciwgrzybowa; auksyny

EN

Bacillus subtilis; Rhizoctonia solani; antifungal activity; auxin

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Proceedings of ECOpole
• Rocznik: 2017
• Tom: Vol. 11, No. 1
• Strony: 231--240
• Opis fizyczny: Bibliogr. 31 poz., wykr., tab.

Twórcy

autor

Nabrdalik M.

• Samodzielna Katedra Biotechnologii i Biologii Molekularnej, Uniwersytet Opolski, ul. kard. B. Kominka 6, 45-032 Opole, tel. [phone]

autor

Moliszewska E.

• Samodzielna Katedra Biotechnologii i Biologii Molekularnej, Uniwersytet Opolski, ul. kard. B. Kominka 6, 45-032 Opole, tel. [phone]

Bibliografia

• [1] Directive 2009/128/EC of the European Parliament and of the Council of 21 October 2009 establishing a framework for Community action to achieve the sustainable use of pesticides. http://eur-lex.europa.eu/ legal-content/EN/TXT/PDF/?uri=CELEX:32009L0128&from=PL.
• [2] Ahemad M, Kibret M. J King Saud University - Sci. 2014;26(1):1-20. DOI: 10.1016/j.jksus.2013.05.001
• [3] Gupta G, Parihar SS, Ahirwar NK, Snehi SK, Singh V. J Microb Biochem Technol. 2015;7:096-102. DOI: 10.4172/1948-5948.1000188.
• [4] Noumavo PA, Agbodjato NA, Baba-Moussa F, Adjanohoun A, Baba-Moussa L. Afr J Biotechnol. 2016;15(27):1452-1463. DOI: 10.5897/AJB2016.15397.
• [5] Vacheron J, Desbrosses G, Bouffaud ML, Touraine B, Moënne-Loccoz Y, Muller D, et al. Front Plant Sci. 2013;17(4):356. DOI: 10.3389/fpls.2013.00356.
• [6] Kundan R, Pant G, Jadon N, Agrawal PK. J Biofertil Biopestici. 2015;6:155. DOI: 10.4172/2471-2728.1000155.
• [7] Dąbrowska G, Zdziechowska E. Progress Plant Protect. 2015;55(4):498-506. DOI: 10.14199/ppp-2015-083
• [8] Saha D, Purkayastha GD, Ghosh A, Isha M, Saha A. J Plant Pathol. 2012;94(1):109-118. DOI: 10.4454/jpp.fa.2012.020.
• [9] Lin HF, Chen TH, Liu SD. Afr J Microbiol Res. 2011;5(14):1723-1728. DOI: 10.5897/AJMR10.169.
• [10] Li B, Li Q, Xu Z, Zhang N, Shen Q, Zhang R. Front Microbiol. 2014;5:636. DOI: 10.3389/fmicb.2014.00636.
• [11] Compant S, Duffy B, Nowak J, Clément C, Barka EA. Appl Environ Microbiol. 2005;71(9):4951-4959. DOI: 10.1128/AEM.71.9.4951-4959.2005.
• [12] Raj SN, Lavanya SN, Amruthesh KN, Niranjana SR, Reddy MS, Shett HS. Biol Control. 2012;60(2):90-102. DOI: 10.1016/j.biocontrol.2011.10.011.
• [13] Yang P, Sun ZX, Liu SY, Lu HX, Zhou Y, Sun M. Crop Protect. 2013;47:17-23. DOI: 10.1016/j.cropro.2012.12.020.
• [14] Nabrdalik M, Grata K. Proc ECOpole. 2014;8(1):65-69. DOI: 10.2429/proc.2014.8(1)008.
• [15] Grata K, Nabrdalik M. Proc ECOpole. 2014;8(1):37-41. DOI: 10.2429/proc.2014.8(1)004.
• [16] Kiewnick S, Jacobsen BJ, Braun-Kiewnick A, Eckhoff JLA, Bergman JW. Plant Disease. 2001;85(7):718-72. DOI: 10.1094/PDIS.2001.85.7.718.
• [17] Strausbaugh CA, Eujayl IA, Panella LW. Plant Disease. 2013;9(9):1175-1180. DOI: 10.1094/PDIS-11-12-1078-RE.
• [18] Rocznik Statystyczny Rolnictwa. Warszawa: Główny Urząd Statystyczny; 2015. http://stat.gov.pl/obszarytematyczne/roczniki-statystyczne/roczniki-statystyczne/rocznik-statystyczny-rolnictwa-2015,6,9.html.
• [19] Moliszewska EB. Etiologia wybranych chorób korzeni buraka cukrowego. Studia i Monografie nr 412, Opole: Uniwersytet Opolski; 2009.
• [20] Burgieł Z. Wpływ niektórych herbicydów na występowanie i rozwój patogenów powodujących choroby podsuszkowe pszenicy ozimej. Cz. II. Rozwój patogenów. Acta Agraria et Silvestria, Series Agraria. 1984;28:187-196.
• [21] Townsend GR, Heuberger JW. Methods for estimating losses caused by diseases in fungicides experiments. Plant Dis Rep. 1943;27(17):340-343.
• [22] Mohite B. J Soil Sci Plant Nutr. 2013;13(3):638-649. DOI: 10.4067/S0718-95162013005000051.
• [23] Elkahoui S, Djébali N, Tabbene O, Hadjbrahim A, Mnasri B, Mhamd R, et al. Afr J Biotechnol. 2012;11(18): 4196-4201. DOI: 10.5897/AJB11.3354.
• [24] Hernández CFD, Castillo FR, Gallegos GM, Rodríguez RH, Aguilar C. Biological Control of Root Pathogens by Plant- Growth Promoting Bacillus spp. In: Soloneski S, Larramendy M, editors. Weed and Pest Control - Conventional and New Challenges: InTech. 2013. DOI: 10.5772/54229.
• [25] Imran H, Darine TH, Mohamed ELG. Afr J Biotechnol. 2012;11(81):14660-14670. DOI: 10.5897/AJB10.2508.
• [26] Kai M, Effmert U, Berg G, Piechulla B. Arch Microbiol. 2007;187:351-360. DOI: 10.1007/s00203-006-0199-0.
• [27] Wahyudi A, Astuti RP, Widyawati A, Meryandini A, Nawangsih AA. J Microbiol Antimicrob. 2011;3(2):34-40. http://repository.ipb.ac.id/handle/123456789/54530.
• [28] Moliszewska EB. Proc ECOpole. 2011;5(2):401-405. http://tchie.uni.opole.pl/PECO11_2/PECO_2011_2p1.pdf.
• [29] Hussein KA, Kadhum NH, Yasser YK. J Contemp Med Sci. 2016;2(7):88-92. http://www.jocms.org/index.php/jcms/article/view/82/57.
• [30] Huu Dat TT, Kim Cuc NT, Cuong PV. Int J Develop Res. 2015;5(4):4036-4042. http://www.journalijdr.com/sites/default/files/3180.pdf.
• [31] Swain MR, Naskar SK, Ray RC. Pol J Microbiol. 2007;56(2):103-100.

Uwagi

PL

Opracowanie rekordu w ramach umowy 509/P-DUN/2018 ze środków MNiSW przeznaczonych na działalność upowszechniającą naukę (2018).