Ocena wpływu nanocząstek tlenku żelaza na rozmieszczenie mezenchymalnych komórek macierzystych hodowanych w obecności statycznego pola magnetycznego

• Autorzy: Marędziak M. , Śmieszek A. , Basińska K. , Kornicka K.

Identyfikatory

DOI

10.15199/62.2015.9.35

Warianty tytułu

EN

Effect of paramagnetic iron oxide nanoparticles on distribution of mesenchymal stem cells cultured in the presence of static magnetic field

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Porównano wpływ różnych kombinacji dodatku nanocząstek żelaza i hodowli w obecności statycznego pola magnetycznego na wzrost i dystrybucję mezenchymalych komórek macierzystych. Oceniono również, czy dodatek tlenku żelaza umożliwia przyciąganie komórek wzdłuż przebiegu linii pola magnetycznego.

EN

Fe₂O₃ nanoparticles were pptd. with NH₃ from aq. soln. of Fe(NO₃)₂, dispersed in UV field and added to a mesenchymal stem cell culture to move the cells in magnetic field. The orientation of the cells in magnetic field was obsd.

Słowa kluczowe

PL

nanotechnologia; nanocząstki; tlenek żelaza; mezenchymalne komórki macierzyste; pole magnetyczne

EN

nanotechnology; iron oxide; nanoparticles; mesenchymal stem cells; static magnetic field

• Wydawca: Wydawnictwo SIGMA-NOT
• Czasopismo: Przemysł Chemiczny
• Rocznik: 2015
• Tom: T. 94, nr 9
• Strony: 1598--1601
• Opis fizyczny: Bibliogr. 22 poz., wykr.

Twórcy

autor

Marędziak M.

• Pracownia Mikroskopii Elektronowej, Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu, ul. Kożuchowska 5B, 51-631 Wrocław

autor

Śmieszek A.

• Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu

autor

Basińska K.

• Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu

autor

Kornicka K.

• Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu

Bibliografia

• 1. S.D. Caruthers, S.A. Wickline, G.M. Lanza, Current Opin. Biotechnol. 2007, 18, 26.
• 2. M. Mahmoudi, S. Sant, B. Wang, S. Laurent, T. Sen, Adv. Drug Deliv. Rev. 2011, 63, nr 1–2, 24.
• 3. S.R. Dave, X. Gao, Wiley Interdiscip. Rev. Nanomed. Nanobiotechnol. 2009, 1, nr 6, 583.
• 4. R.H. Kodama, J. Magn. Magn. Mater. 1999, 200, nr 1-3, 359.
• 5. F. Caruso, Adv. Materials 2001, 13, nr 1, 11.
• 6. E. Amstad, S. Zurcher, A. Mashaghi, J.Y. Wong, M. Textor, E. Reimhult, Small 2009, 5, nr 11, 1334.
• 7. H. Kempe, M. Kempe, Biomaterials 2010, 31, 9499.
• 8. P.A. Johnson, H.J. Park, A.J. Driscol, Methods Mol. Biol. 2011, 679, 183.
• 9. M. Di Marco, C. Sadun, M. Port, I. Guilbert, P. Couvreur, C. Dubernet, Int. J. Nanomed. 2007, 2, nr 4, 609.
• 10. S.F. Medeirosa, A.M. Santosa, H. Fessi, A. Elaissar, Intern. J. Pharmaceutics 2011, 403, nr 1–2, 139.
• 11. E. Amstad, M. Textor, E. Reimhult, Nanoscale 2011, 3, nr 7, 2819.
• 12. S. Kango, S. Kalia, A. Celli, J. Njuguna, Y. Habibi, R. Kumar, Progr. Polym. Sci. 2013, 38, nr 8, 1232.
• 13. K. Marycz, J. Krzak-Roś, A. Śmieszek, J. Grzesiak, A. Donesz-Sikorska, Przem. Chem. 2013, 92, nr 6, 1000.
• 14. K. Marycz, J. Grzesiak, K. Wrzeszcz, J. Nicpoń, Veterinari Med. 2012, 57, 610.
• 15. K. Marycz, A. Śmieszek, J. Grzesiak, A. Donesz-Sikorska, J. Krzak-Roś, Biomed. Mater. 2013, 8, nr 6, 065004.
• 16. M. Kania, D. Mikołajewska, K. Marycz, M. Kobielarz, Acta Bioeng. Biomech. 2009, 11, nr 3, 53.
• 17. J. Nicpoń, K. Marycz, J. Grzesiak, Pol. J. Vet. Sci. 2013, 16, nr 4, 753.
• 18. M. Marędziak, K. Marycz, D. Lewandowski, A. Siudzińska, A. Śmieszek, In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. 2014, DOI: 10.1007/s11626-014-9828-0.
• 19. K. Marycz, N.Y. Toker, J. Grzesiak, K. Wrzeszcz, P. Golonka, J. Animal Vet. Adv. 2012, 11, nr 23, 4324.
• 20. I. Michalak, K. Marycz, K. Basińska, K. Chojnacka, Sci. World J. 2014, 2014, 891928.
• 21. K. Kaliński, K. Marycz, J. Czogała, E. Serwa, W. Janeczek, J. Electron. Microsc. (Tokyo) 2012, 61, nr 1, 47.
• 22. M. Marędziak, K. Marycz, A. Śmieszek, D. Lewandowski, N.Y. Toker, In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. 2014, 50, nr 6, 562.