Wpływ wybranych form miedzi na rozwój Sclerotinia sclerotiorum, Botrytis cinerea i Rhizoctonia cerealis w warunkach in vitro

• Autorzy: Danielewicz Jakub , Horoszkiewicz Joanna , Jajor Ewa , Korbas Marek , Grzanka Monika , Sobiech Łukasz , Idziak Robert

Identyfikatory

DOI

10.15199/62.2025.4.7

Warianty tytułu

EN

Effect of selected cooper forms on the inhibition of mycelium growth of Sclerotinia sclerotiorum, Botrytis cinerea and Rhizoctonia cerealis in vitro

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Testowano wpływ wybranych form miedzi oraz przykładowych fungicydów na hamowanie wzrostu grzybni grzybów chorobotwórczych. W badaniach zastosowano w różnych dawkach azoksystrobinę, protiokonazol, wodorotlenek miedzi, tlenochlorek miedzi oraz heptaglukonian miedzi. Wszystkie środki testowano w badaniach in vitro na pożywkach PDA (ziemniaczano-glukozowo-agarowa). Przeprowadzone oceny oraz wykonane pomiary wskazują na wysoki stopień hamowania wzrostu grzybni Sclerotinia sclerotiorum, Botrytis cinerea i Rhizoctonia cerealis dzięki zastosowaniu nowoczesnych form miedzi, przy skuteczności zbliżonej do obecnie stosowanych w rolnictwie substancji czynnych fungicydów.

EN

The effect of azoxystrobin, prothioconazole, copper hydroxide, copper oxychloride and copper heptagluconate at different doses on inhibiting the growth of mycelia of pathogenic fungi Sclerotinia sclerotiorum, Botrytis cinerea, Rhizoctonia cerealis was studied. All active substances were tested in vitro on PDA (potato-glucose-agar) medium. The conducted assessments and measurements showed a high level of inhibition of mycelia growth of Sclerotinia sclerotiorum, Botrytis cinerea and Rhizoctonia cerealis in combinations in which modern forms of copper were used, with an effectiveness similar to the active substances of fungicides currently used in agriculture.

Słowa kluczowe

PL

miedź; fungicydy; grzyby chorobotwórcze

EN

copper; fungicides; pathogenic fungi

• Wydawca: Wydawnictwo SIGMA-NOT
• Czasopismo: Przemysł Chemiczny
• Rocznik: 2025
• Tom: T. 104, nr 4
• Strony: 501--505
• Opis fizyczny: Bibliogr. 21 poz., tab.

Twórcy

autor

Danielewicz Jakub

• Zakład Mykologii, Instytut Ochrony Roślin - Państwowy Instytut Badawczy, ul. Władysława Węgorka 20, 60-318 Poznań

• https://orcid.org/0000-0003-0252-8573

autor

Horoszkiewicz Joanna

• Instytut Ochrony Roślin - Państwowy Instytut Badawczy, Poznań

• https://orcid.org/0000-0002-2964-4593

autor

Jajor Ewa

• Instytut Ochrony Roślin - Państwowy Instytut Badawczy, Poznań

• https://orcid.org/0000-0002-4412-1766

autor

Korbas Marek

• Instytut Ochrony Roślin - Państwowy Instytut Badawczy, Poznań

• https://orcid.org/0000-0002-5536-1853

autor

Grzanka Monika

• Uniwersytet Przyrodniczy, Poznań

• https://orcid.org/0000-0003-1470-7026

autor

Sobiech Łukasz

• Uniwersytet Przyrodniczy, Poznań

• https://orcid.org/0000-0002-2584-9911

autor

Idziak Robert

• Uniwersytet Przyrodniczy, Poznań

• https://orcid.org/0000-0002-1621-9184

Bibliografia

• [1] Z. Sawinska, M. Kotecka, Prog. Plant Prot. 2024, 64, nr 2, 97, https://doi.org/10.14199/ppp-2024-010.
• [2] L. Tamm, B. Thuerig, S. Apostolov, H. Blogg, E. Borgo, P. E. Corneo, S. Fittje, M. de Palma, A. Donko, C. Experton i in., Agronomy 2022, 12, 673, https://doi.org/10.3390/agronomy12030673.
• [3] S. Dagostin, H.-J. Schärer, I. Pertot, Crop Prot. 2011, 33, nr 6, 776, doi: 10.1016/j.cropro.2011.02.031.
• [4] F. Behlau, L. I. Canteros, J. B. Jones, J. H. Graham, Eur. J. Plant Pathol. 2012, 133, nr 4, 949, doi: 10.1007/s10658-012-0138-7.
• [5] I. Yruela, Braz. J. Plant Physiol. 2005, 17, nr 2, 145, doi: 10.1590/S1677-04202005000200010.
• [6] J. L. Burkhead, K. A. Gogolin Reynolds, S. E. Abdel-Ghany, C. M. Cohu, M. Pilon, New Phytol. 2009, 182, nr 4, 799, doi: 10.1111/j.1469-8137.2009.02846.x.
• [7] L. M. Ruiz, A. Libedinsky, A. A. Elorza, Front. Mol. Biosci. 2021, 8, 711227.
• [8] Z. Giczi, R. Kalocsai, V. Vona, T. Szakál, E. Lakatos, B. Ásványi, Cereal Res. Commun. 2021, 49, nr 2, 337, doi: 10.1007/s42976-020-00108-y.
• [9] M. Grzanka, Ł. Sobiech, A. Filipczak, J. Danielewicz, E. Jajor, J. Horoszkiewicz, M. Korbas, Agriculture 2024, 14, nr 1, 139, https://doi.org/10.3390/agriculture14010139.
• [10] F. Weihrauch, J. Schwarz, [w:] Angewandte Forschung und Beratung für den ökologischen Landbau in Bayern (red. K. Wiesinger, K. Cais, S. Obermaier), Bayerische Landesanstalt für Landwirtschaft, D-Freising, seria LfL, 2014, 2, 174.
• [11] O. Calicioglu, A. Flammini, S. Bracco, L. Bellù, R. Sims, Sustainability 2019, 11, nr 1, 222, https://doi.org/10.3390/su11010222.
• [12] A. Wójtowicz, E. Jajor, M. Wójtowicz, Prog. Plant Prot. 2016, 56, 241.
• [13] L. A. Rothmann, N. W. McLaren, S. Afr. J. Sci. 2018, 114, nr 3/4, https://doi.org/10.17159/sajs.2018/20170155.
• [14] M. Sarven, Q. Hao, J. Deng, F. Yang, G. Wang, Y. Xiao, X. Xiao, Pathogens 2020, 9, 213, https://doi.org/10.3390/pathogens9030213.
• [15] B. Cwalina-Ambroziak, A. Stępień, T. P. Kurowski, M. Głosek-Sobieraj, A. Wiktorski, Arch. Agron. Soil Sci. 2016, 62, 1722, https://doi.org/10.10 80/03650340.2016.1171851.
• [16] K. Pieczul, I. Świerczyńska, Prog. Plant Prot. 2014, 54, nr 2, 174.
• [17] J. R. Lamichhane, E. Osdaghi, F. Behlau, J. Köhl, J. B. Jones, J.-N. Aubertot, Agron. Sustain. Dev. 2018, 38, nr 2, https://doi.org/10.1007/s13593-018-0503-9.
• [18] S. Banik, S. A. Pérez-de-Luque, Span. J. Agric. Res. 2017, 15, nr 2, e1005, https://doi.org/10.5424/sjar/2017152-10305.
• [19] A. Oussou-Azo, T. Nakama, M. Nakamura, T. Futagami, M. Vestergaard, Nanomaterials 2020, 10, 1003.
• [20] S. Gaba, A. K. Rai, A. Varma, R. Prasad, A. Goel, Front. Chem. 2022, 10, 966396, https://doi.org/10.3389/fchem.2022.966396.
• [21] A. Hafeez, A. Razzaq, T. Mahmood, H. M. Jhanzab, J. Nanosci. Adv. Technol. 2015, 1, 6.

Uwagi

Opracowanie rekordu ze środków MNiSW, umowa nr POPUL/SP/0154/2024/02 w ramach programu "Społeczna odpowiedzialność nauki II" - moduł: Popularyzacja nauki (2025).