The role of extracellular metabolites produced by bacteria in the process of fungi growth inhibition

• Autorzy: Nabrdalik M. , Grata K.

Identyfikatory

DOI

10.2429/proc.2014.8(2)074

Warianty tytułu

PL

Udział zewnątrzkomórkowych metabolitów bakteryjnych w zahamowaniu wzrostu grzybów

• Konferencja: ECOpole’14 Conference (15-17.10.2014, Jarnoltowek, Poland)
• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

In the process of biological control of plants pathogens, special biological preparations containing cells of microorganisms or their metabolites are applied. The aim of conducted research was to assess the effect of Bacillus subtilis culture or its supernatant on the mycelial growth of Fusarium culmorum. The antagonistic properties of B. subtilis were assessed with the culture-plate method. The research was conducted on two different media, containing glucose or sucrose, in order to consider the effect of the source of carbon on the inhibitory process. The culturing process was conducted at 25±2ºC for 7 days and every 2-3 days the diameter of the mycelium was measured while the fungistatic activity of B. subtilis was determined against the mycelial growth rate index. The obtained results showed that the measured values of the growth rate index in the control trials were similar regardless of the carbon source in the medium. In tested trials no significant inhibition of the mycelial growth have been noted in the presence of glucose. Measured values of the growth rate index in tested trials were lower of 0.2-1.7 units compared with the control trials. The growth inhibition in the cultures on the medium with sucrose obtained 20% with an addition of the supernatant and 40% with an addition of B. subtilis culture.

PL

W metodach biologicznej walki z fitopatogenami roślin stosuje się między innymi biopreparaty, które jako substancję czynną zawierają żywe komórki mikroorganizmów lub ich metabolity. Celem przeprowadzonych badań było określenie wpływ hodowli bakteryjnej Bacillus subtilis oraz jego supernatantu na wzrost grzybni Fusarium culmorum. Ocenę właściwości antagonistycznych B. subtilis przeprowadzono metodą hodowlano-płytkową. Badania przeprowadzono na dwóch różnych podłożach, zawierających glukozę lub sacharozę, uwzględniając w ten sposób wpływ źródła węgla na proces inhibicji. Hodowle prowadzono w temperaturze 25±2ºC przez 7 dni, dokonując co 2-3 dni pomiaru średnicy grzybni, a aktywność fungistatyczną B. subtilis określono w oparciu o indeks tempa wzrostu grzybni. Na podstawie uzyskanych wyników stwierdzono, iż w próbach kontrolnych indeks tempa wzrostu był na zbliżonym poziomie niezależnie od źródła węgla zawartego w podłożu. W próbach badanych nie odnotowano znaczącego zahamowania wzrostu grzybni w obecności glukozy. Wartości indeksu tempa wzrostu dla prób badanych były niższe jedynie o 0,2-1,7 jednostki w porównaniu do prób kontrolnych. Natomiast w hodowlach prowadzonych na podłożu zawierającym sacharozę uzyskano około 20% zahamowanie po zastosowaniu supernatantu i ponad 40% w obecności hodowli bakteryjnej B. subtilis.

Słowa kluczowe

EN

Bacillus subtilis; Fusarium culmorum; antifungal activity

PL

Bacillus subtilis; Fusarium culmorum; aktywność przeciwgrzybowa

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Proceedings of ECOpole
• Rocznik: 2014
• Tom: Vol. 8, No. 2
• Strony: 417--422
• Opis fizyczny: Bibliogr. 16 poz., wykr.

Twórcy

autor

Nabrdalik M.

• Independent Chair of Biotechnology and Molecular Biology, Opole University, ul. kard. B. Kominka 6a, 45-032 Opole, Poland, phone [phone]

autor

Grata K.

• Independent Chair of Biotechnology and Molecular Biology, Opole University, ul. kard. B. Kominka 6a, 45-032 Opole, Poland, phone [phone]

Bibliografia

• [1] Dziennik Urzędowy Unii Europejskiej. Dyrektywa Parlamentu Europejskiego i Rady 2009/128/We. 21.10.2009;L309/71-86.
• [2] Ahemad M, Kibret M. J King Saud Univ - Science. 2014;26:1-20. DOI: 10.1016/j.jksus.2013.05.001.
• [3] Grata K, Nabrdalik M. Proc ECOpole. 2012;6(1):151-156. DOI: 10.2429/proc.2012.6(1)020.
• [4] Grata K, Nabrdalik M. Proc ECOpole. 2013;7(1):75-80. DOI: 10.2429/proc.2013.7(1)009.
• [5] Utkhede RS, Smith EM. Australasian Plant Path. 2000;29(2):129-136. DOI: 10.1071/AP00021.
• [6] Burgieł Z. Acta Agrar et Silvestr Ser Agraria. 1984;23:187-199.
• [7] Tamehiro N, Okamoto-Hosoya Y, Okamoto S, Ubukata M, Hamada M, Naganawa H, et al. Antimicrobial Agents Ch. 2002;46:315-320. DOI: 10.1128/AAC.46.2.315-320.2002.
• [8] Stein T. Mol Microbiol. 2002;56:845-857. DOI: 10.1111/j.1365-2958.2005.04587.x.
• [9] Tan Z, Lin B, Zhang R. SpringerPlus. 2013;2:543. DOI: 10.1186/2193-1801-2-543.
• [10] Li J, Yang Q, Zhao LH, Zhang SM, Wang YX, Zhao XY. J Zhejiang Univ Sci B. 2009;10:264-272. DOI:10.1631/jzus.B0820341.
• [11] Oyedele AO, Ogunbanwo TS. Afr J Micro Res. 2014;8:1841-1849. DOI: 10.5897/AJMR2013.6162.
• [12] Basurto-Cadena MGL, Vazquez-Arista M, Garcia-Jimenez J, Salcedo-Hernandez R, Bideshi DK, Barboza-Corona JE. Scientific World J. 2012; 2012:384978. DOI: 10.1100/2012/384978.
• [13] Lin HF, Chen TH, Liu SD. Afr J Microbiol Res. 2011;5(14):1723-1728. DOI: 10.5897/AJMR10.169.
• [14] Youcef-Ali M, Kacem Chaouche N, Dehimat L, Bataiche I, Kara Ali M, Cawoy H, et al. Afr J Microbiol Res. 2014;8(6):476-484. DOI: 10.5897/AJMR2013.6327.
• [15] Zhao Y, Selvaraj JN, Xing F, Zhou L, Wang Y, Song H, et al. PLOS ONE. 2014;9(3):e92486. DOI: 10.1371/journal.pone.0092486.
• [16] Elkahoui S, Djébali N, Tabbene O, Hadjbrahim A, Mnasri B, Mhamdi R, et al. Afr J Biotech. 2012;11(18):4196-4201. DOI: 10.5897/AJB11.3354.