Wpływ metody suszenia na stabilność fitozwiązków i aktywność przeciwutleniającą owoców Rosa canina L.

• Autorzy: Klimek Kamila , Najda Agnieszka , Saadatian Mohamad , Wrzesińska-Jędrusiak Edyta , Piekarski Wiesław , Kapłan Magdalena , Święciło Agata

Identyfikatory

DOI

10.15199/62.2020.4.3

Warianty tytułu

EN

Effect of drying methods on the stability of phytochemicals and antioxidant activity of Rosa canina L.

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Zbadano wpływ suszenia owoców Rosa canina L. metodą konwekcyjną, mikrofalową i sublimacyjną na aktywność przeciwutleniającą (test DPPH) oraz na całkowitą zawartość kwasu askorbinowego (AA), flawonoidów i polifenoli (TPC), w przeliczeniu na kwas galusowy (GAL). Parametry procesu suszenia owoców róży wpływały na ich właściwości prozdrowotne. Wykazano, że zawartość AA w suszonych owocach była mniejsza niż w świeżych odpowiednikach, przy czym najmniejszą stratę zanotowano w przypadku sublimacji. Zwiększenie mocy mikrofal ze 100 do 200 W przyspieszyło utratę wilgoci i flawonoidów podczas suszenia. Podwyższenie temperatury procesu suszenia z 60 do 70°C w przypadku liofilizacji spowodowało znaczne zmniejszenie zawartości AA, a podczas suszenia konwekcyjnego istotnie zwiększyło ilość polifenoli w surowcu. Stwierdzono, że niezależnie od metody suszenia flawonoidy są bardziej stabilne podczas stabilizacji surowca. Aktywność przeciwutleniająca zależała od metody suszenia i zawartości polifenoli.

EN

Rosa canina L. fruits were dried by convective, microwave and sublimation methods to det. their effect on the total content of ascorbic acid (AA), polyphenols (TPC) and flavonoids, as well as on the antioxidant activity. The AA content in dried fruits was lower than in the fresh ones. The sublimation gave the highest AA content (242 mg/100 g). The increasing the microwave power from 100 to 200 W resulted in an accelerated loss of moisture and flavonoids during drying. The increasing the temp. of the freeze-drying from 60 to 70°C resulted in a drastic decrease in AA content. The increase in temp. from 60 to 70°C during convection drying resulted in a significant increase in the polyphenol content. Regardless of the drying method, flavonoids were more stable during the drying. The antioxidant activity depended on the drying method and polyphenol content.

Słowa kluczowe

PL

suszenie owoców; metody suszenia; susz roślinny; wartość biologiczna suszu; Rosa canina L.

EN

fruit drying; drying methods; dried plants; biological value of dried fruit; Rosa canina L.

• Wydawca: Wydawnictwo SIGMA-NOT
• Czasopismo: Przemysł Chemiczny
• Rocznik: 2020
• Tom: T. 99, nr 4
• Strony: 528--531
• Opis fizyczny: Bibliogr. 37 poz., tab., wykr.

Twórcy

autor

Klimek Kamila

• Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie

autor

Najda Agnieszka

• Katedra Warzywnictwa i Zielarstwa, Wydział Ogrodnictwa i Architektury Krajobrazu, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, ul. Akademicka 15, 20-950 Lublin

autor

Saadatian Mohamad

• Soran University, Kurdystan, Irak

autor

Wrzesińska-Jędrusiak Edyta

• lnstytut Technologiczno-Przyrodniczy Oddział Poznań

autor

Piekarski Wiesław

• Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie

autor

Kapłan Magdalena

• Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie

autor

Święciło Agata

• Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie

Bibliografia

• [1] S. Ercisli, E. Orhan, A. Esitken, Chem. Nat. Compd. 2007, 43 nr 5, 605.
• [2] W. Buhwald, J. Zieliński, A. Mścisz, A. Adamczak, P.M. Mrozikiewicz, Herba Pol. 2007, 33, nr 4, 85.
• [3] A. Cendrowski, S. Kalisz, M. Mitek, Żywn. Nauka Technol. Jakość 2012, 2, nr 63, 2.
• [4] J. Milala, M. Sójka, K. Król, M. Buczek, Żywn. Nauka Technol. Jakość 2013, 5, nr 90, 154.
• [5] M. Kobus, E. Pogorzelski, Przem. Ferm. Owoc. Warz. 2008, 5, 19.
• [6] M. Araya-Farias, O. Macaigne, C. Ratti, Drying Technol. 2014, 32, 813.
• [7] M. Saadatian, A. Najda, M.S. Jasour, Acta Sci. Pol. Hortorum Cultus 2016, 15, nr 4, 3.
• [8] A. Krzykowski, D. Dziki, R. Polak, S. Rudy, B. Biernacka, Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 2018, 593, 49.
• [9] A. Marzec, H. Kowalska, M. Zadrożna, J. Texture Stud. 2010, 41, nr 4, 417.
• [10] A. Ciurzyńska, A. Lenart, M. Siemiątkowska, Acta Agrophys. 2011, 17, nr 1, 17.
• [11] Association of Official Analytical Chemists, AOAC methods, Washington 1991.
• [12] A. Najda, Plonowanie i ocena fitochemiczna roślin w różnych fazach wzrostu dwu odmian selera naciowego (Apium graveolens L. var. dulce Mill./Pers.), Rozprawa doktorska, Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, Lublin 2004.
• [13] Farmakopea Polska VI, Wyd. PTF-arm, Warszawa 2002.
• [14] T. Swain, W.E. Hillis, J. Sci. Food Agric. 1959, 10, 63.
• [15] J.H. Chen, C.T. Ho, J. Agric. Food Chem. 1997, 45, 2374.
• [16] H. Wang, G. Cao, R.L. Prior, J. Agric. Food Chem. 1996, 44, 701.
• [17] A. Halder, A.K. Datta, R.M. Spanswick, Bioeng. Food Nat. Prod. 2015, 57, 2574.
• [18] S. Abasi, S.M. Mousavi, M. Mohebi, S. Kiani, Iran. J. Chem. Chem. Eng. 2009, 6, nr 3, 57.
• [19] L. Tussolini, J.S. De Oliveira E.F. Zanoelo, Drying Technol. 2014, 32, nr 12, 1457.
• [20] A.F.K. Correia, A.C. Loro, S. Zanatta, M.H.F. Spoto, T.M.F.S. Vieira, Int. J. Food Sci. 2015, 970724.
• [21] S. Ahmadi, M. Sheikh-Zeinoddin, S. Soleimanian-Zad, F. Alihosseini, H. Yadav, Int. J. Biol. Macromol. 2018, 119, 1137.
• [22] A. Piga, F.V. Romeo, M. Poiana, A. Del Caro, A.M. Sanguinetti, A. Piscopo, Eur. Food Res. Technol. 2009, 228, nr 3, 441.
• [23] P.H.S. Santos, M.A. Silva, Drying Technol. 2008, 26, nr 12, 1421.
• [24] S. Naggy, J. Agric. Food Chem., 1980, 28, 8.
• [25] H. Qing-Guo, Z. Min, A.S. Mujumdar, D. Wei-Hua, S. Jin-Cai, Drying Technol. 2006, 24, 1025.
• [26] Ö.A. Gümüsßay, A.A. Borazan, N. Ercal, O. Demirkol, Food Chem. 2015, 173, 156.
• [27] W. Gwala, R. Padmavati, Austin J. Nutr. Metab. 2015, 2, nr 1, 1014.
• [28] A.O.M. Veras, R. Béttega, F.B. Freire, M.A.S. Barrozo, J.T. Freire, Braz. J. Chem. Eng. 2012, 29, nr 4, 741.
• [29] Ş. Daǧhan, A. Yildirim, F.M. Yilmaz, H. Vardin, M. Karaaslan, Ital. J. Food Sci. 2018, 30, nr 3, 504.
• [30] M.A. Madrau, A. Piscopo, A.M. Sanguinetti, A. Del Caro, M. Poiana, F.V. Romeo, A. Piga, Eur. Food Res. Technol. 2009, 228, 441.
• [31] A. Wojdyło, A. Figiel, K. Lech, P. Nowicka, J. Oszmiański, Food Bioprocess. Technol. 2014, 7, 829.
• [32] A. Vega-Galvez, K. Di Scala, K. Rodrıguez, Food Chem. 2009, 117, 647.
• [33] A. Susana, M. Ana, Q. Andrés, S. Ivette, S. Erick, J. Food Res. 2014, 3, nr 5, 73.
• [34] K. Rodríguez, K. Ah-Hen, A. Vega-Galvez, J. López, I. Quispe-Fuentes, R. Lemus-Mondaca, L. Galvez-Ranilla, Int. J. Food Sci. Tech. 2014, 49, nr 4, 990.
• [35] K. Rodriguez, K. Ah-Hen, A. Vega-Galvez, V. Vásquez, I. Quispe, P. Rojas, R. Lemus-Mondaca, LWT Food Sci. Technol. 2016, 65, 537.
• [36] V. Savo, F. Salomone, E. Mattoni, D. Tofani, G. Caneva, Evid.-Based Complementary Altern. Med. 2019, 1-12, doi: 0.1155/2019/6782472.
• [37] A. Najda, K. Klimek, S. Balant, E. Wrześniak, W. Piekarski, Przem. Chem. 2019, 98, nr 8, 1286.

Uwagi

Opracowanie rekordu ze środków MNiSW, umowa Nr 461252 w ramach programu "Społeczna odpowiedzialność nauki" - moduł: Popularyzacja nauki i promocja sportu (2020).