PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
Tytuł artykułu

Zastosowanie chromatografii cieczowej w odwróconym układzie faz (RP-LC) w rozdzielaniu i oznaczaniu polifenoli i naftochinonów w materiałach roślinnych

Treść / Zawartość
Identyfikatory
Warianty tytułu
EN
Reversed phase liquid chromatography (RP-LC) for separatio and quantitative determination of polyphenols and naphtoquinones in plant materials
Języki publikacji
PL
Abstrakty
PL
W pracy przedstawiono przegląd metod rozdzielania i oznaczania naftochinonów i polifenoli pochodzących z materiału roślinnego, z wykorzystaniem technik chromatografii w układzie faz odwróconych – RP-TLC (Reversed-Phase Thin Layer Chromatography) oraz RP-HPLC (Reversed-Phase High Performance Liquid Chromatography). Uwzględniono procedury przygotowania próbki, etap rozdzielania, a także kontroli czystości zbieranych frakcji. Próbki materiału roślinnego są z reguóły ekstrahowane rozpuszczalnikami organicznymi dla wydzielania składników nisko- i średniopolarnych, albo wodą dla wyodrębniania składników polarnych. Proces ekstrakcji najczęściej jest wspomagany ultradźwiękami. W ostatnich latach stosowane są do rozdzielania naftochinonów i polifenoli fazy stacjonarne typu RP18 oraz eluenty w postaci mieszaniny wody i metanolu lub acetonitrylu. W przypadku rozdzielania polifenoli, częściej niż przy rozdzielaniu naftochinonów, stosuje się elucję gradientową. Zastosowanie ortogonalnego rozdzielania, realizowanego poprzez rozdzielanie techniką TLC w układzie faz normalnych lub HILIC, składników frakcji uzyskanych techniką RP HPLC, pozwala skutecznie kontrolować efektywność rozdzielania oraz czystość frakcji.
EN
The paper presents a review of naphtoquinones and polyphenols separation and quantitative determination methods using reversed phase chromatographic techniques – Reversed- Phase Thin Layer Chromatography (RP-TLC) and Reversed-Phase High Performance Column Liquid Chromatography (RP-HPLC). The procedures of sample preparation, chromatographic separation, as well as fraction purity control, are described in details. Samples of the plant material are mostly extracted with organic solvents or with water. The extraction processes are usually assisted by sonication. The most popular separation systems include a RP18 stationary phase and eluent which consists water and methanol or acetonitrile. In the case of polyphenols separations, much more of G. Boczkaj, M. Jaszczołt, A. Leman, A. Skrzypczak, A. Królicka, M. Kamiński Camera Separatoria Vol. 3, No 1/2011 88 ten than during naphtoquinones separations, the gradient elution is used. The use of orthogonal separations by NP-TLC or HILIC-TLC separation of the fractions collected during RP-HPLC, gives a possibility for the separation effectiveness and fraction purity control.
Czasopismo
Rocznik
Strony
87--100
Opis fizyczny
Bibliogr. 21 poz., tab.
Twórcy
autor
  • Politechnika Gdańska, Wydział Chemiczny, Katedra Inżynierii Chemicznej i Procesowej, ul. G. Narutowicza 11/12, 80-233 Gdańsk
  • Politechnika Gdańska, Wydział Chemiczny, Katedra Inżynierii Chemicznej i Procesowej, ul. G. Narutowicza 11/12, 80-233 Gdańsk
autor
  • Politechnika Gdańska, Wydział Chemiczny, Katedra Inżynierii Chemicznej i Procesowej, ul. G. Narutowicza 11/12, 80-233 Gdańsk
  • Politechnika Gdańska, Wydział Chemiczny, Katedra Inżynierii Chemicznej i Procesowej, ul. G. Narutowicza 11/12, 80-233 Gdańsk
autor
  • Zakład Ochrony i Biotechnologii Roślin, Międzyuczelniany Wydział Biotechnologii UG-GUMed, ul. Kładki 24, 80-822 Gdańsk
autor
  • Politechnika Gdańska, Wydział Chemiczny, Katedra Inżynierii Chemicznej i Procesowej, ul. G. Narutowicza 11/12, 80-233 Gdańsk
Bibliografia
  • 1. A. Marston, Role of advances in chromatographic techniques in phytochemistry, Phytochem., 68(2007)2785.
  • 2. E. Leistner, Biosynthesis of plant quinones. The biochemistry of plants. Secondary plant products. (red. E.E. Conn), Academic Press, 7(1981)413.
  • 3. J. Budzianowski, Naphthohydroquinone glucoside od Drosera rotundifolia and D. intermedia drom in vitro cultures, Psychochem., 42(1996)1145.
  • 4. A. Albrehta, I. Vovka, B. Simonovskaa, M. Srbinoska, IdentiÞcation of shikonin and its ester derivatives from the roots of Echium Italicum L., J. Chromatogr. A, 1216(2009)3156.
  • 5. C. Oostende, J. R. Widhalm, G.J.C. Basset, Detection and quantiÞ- cation of vitamin K1 quinol in leaf tissues, Phytochem., 69(2008)2457.
  • 6. Y. Fujita, Y. Maeda, C. Suga, T. Morimoto, Production of shikonin derivatives by cell suspension cultures of lithospermum erythrorhizon. Comparison of shikonin derivatives of cultured cells and koshikon, Plant Cell Reports, 2(1983)192.
  • 7. B. Hazra, M. Das Sarma, U. Sanyal, Separation methods of quinonoids constituents of plants used in Oriental traditional medicines, J. Chromatogr. B, 812(2004)259.
  • 8. P.C. Wu, Y.B. Huang, I.C. Lin, Y.H. Tsai, A rapid, simple high performance liquid chromatography method for the determination of traditional chinese medicine ointment Shiunko, J. Food Drug Anal., 12(2004)311.
  • 9. P. Novotna, V. Pacáková, Z. Bosáková, K. Štulěk, High-performance liquid chromatographic determination of some anthraquinone and naphthoquinone dyes occurring in historical textiles, J. Chromatogr. A, 863(1999)235.
  • 10. P. Babula, V. Adam, L. Havel, R. Kizek, Noteworthy secondary metabolites naphthoquinones – their occurrence, pharmacological properties and analysis, Cur. Pharm. Anal., 5(2009)47.
  • 11. H. Chen, Y. Zuo, IdentiÞcation of ßavonol glycosides in American cranberry fruit, Food Chem., 101(2007)1374.
  • 12. R. Amarowicz, F. Shahidi, A rapid chromatographic method for separation of individual catechins from green tea, Food Res. Intern., 29(1996)71.
  • 13. R. Colombo, F.M. Lancas, J.H. Yariwake, Determination of ßavonoids in cultivated sugarcane leaves, bagasse, juice and in transgenic sugarcane by liquid chromatography-UV detection, J. Chromatogr. A, 1103(2006)118.
  • 14. T. Shoji, Y. Akazome, T. Kanda, M. Ikeda, The toxicology and safety of apple polyphenol extract, Food Chem. Toxicol., 42(2004)959.
  • 15. B. Suárez, N. Palacios, N. Fraga, R. Rodríguez, Liquid chromatographic method for quantifying polyphenols in ciders by direct injection, J. Chromatogr. A, 1066(2005)105.
  • 16. B. Mozetic, I. Tomažic, A. Škvarc, P. Trebše, Determination of polyphenols in white grape berries cv. Rebula, Acta Chim. Slov., 53(2006)58.
  • 17. O. Palomino, M.P. Gómez-Serranillos, K. Slowing, E. Carretero, A. Villar, Study of polyphenols in grape berries by reversed-phase highperformance liquid chromatography, J. Chromatogr. A, 870(2000)449.
  • 18. M. Natsume, N. Osakabe, M. Yamagishi, T. Takizawa, T. Nakamura, H. Miyatake, T. Hatano, T. Yoshida, Analyses of polyphenols in cacao liquor, cocoa, and chocolate by normal-phase and reversed-phase HPLC, Biosci. Biotechnol. Biochem., 64(2000)2581.
  • 19. E. Cienfuegos-Jovellanos, M. del Mar Quińones, B. Muguerza, L.Moulay, M. Miguel, A. Aleixandre, Antihypertensive effect of a polyphenol- rich cocoa powder industrially processed to preserve the original flavonoids of the cocoa beans, J. Agric. Food Chem., 57(2009)6156.
  • 20. M. Ding, H. Yang, S. Xiao, Rapid, direct determination of polyphenols in tea by reversed-phase column liquid chromatography, J. Chromatogr. A, 849(1999)637.
  • 21. D. Kołodziejski, praca magisterska, „Porównanie efektywnosci wybranych technik ekstrakcji ługowania metabolitów wtórnych z suchego materiału roślin owadożernych”, An effectiveness comparison of selected techniques for extraction/leaching of secondary metabolities for dry insectivorous plant material, Politechnika Gdańska, Gdańsk 2010.
Typ dokumentu
Bibliografia
Identyfikator YADDA
bwmeta1.element.baztech-10d40122-0a8b-4d4e-bff5-83145c7fe113
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.