Wrażliwość izolatów Trichoderma viride ze strefy produkcji zakładu spożywczego na Divosan Forte

• Autorzy: Kręcidło M. , Krzyśko-Łupicka T.

Identyfikatory

DOI

10.2429/proc.2016.10(1)022

Warianty tytułu

EN

The sensitivity of Trichoderma viride isolates with production surface area on Divosan Forte

• Konferencja: ECOpole’15 Conference (14-16.10.2015, Jarnoltowek, Poland)
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Zanieczyszczenia mikrobiologiczne mogą stanowić zagrożenie podczas wytwarzania żywności, dlatego istotne jest stosowanie odpowiednich środków dezynfekcyjnych pozwalających zredukować możliwość kontaminacji produktu gotowego mikrobiotą towarzyszącą procesowi produkcji. Celem badań była ocena wpływu preparatu Divosan Forte (DF) na szczepy Trichoderma viride, wyizolowane ze strefy produkcyjnej jednego z zakładów produkcji spożywczej. Materiał badawczy stanowiły szczepy T. viride 21 i T. viride 56 wyizolowane metodą selekcyjną z powierzchni technologicznej zakładu produkującego żywność. Stosowany do dezynfekcji linii technologicznej Divosan Forte (DF) testowano w przeliczeniu na czysty kwas nadoctowy w stężeniach objętościowych 0,15; 0,30 i 0,60% (v/v).. Aktywność fungistatyczną preparatu DF na testowane szczepy przeprowadzono metodą zatruwania podłoży. Wyniki przedstawiono jako przyrost grzybni badanych szczepów. Preparat DF niezależnie od zastosowanego stężenia, w porównaniu do kontroli, stymulował wzrost badanych szczepów T. viride. Po 4 dobach odnotowano większy o blisko 50% liniowy wzrost grzybni T. viride 56 w porównaniu do kontroli. Wolniejszy, ale wyższy o 30%, w porównaniu do kontroli, był także rozwój szczepu T. viride 21.

EN

Microbiological contamination may constitute a risk during food production. Therefore is highly important to apply appropriate disinfectant that reduces the possibility of contamination of the finished product by microorganisms associated with production process. The aim of this study was the assessment of influence of Divosan Forte disinfectant on resistant strains of Trichoderma viride isolated from production area of food facility. Microbial materials were two strains of Trichoderma viride collected from production surfaces in the food facility by selection method. Divosan Forte (DF) was the solution of peracetic acid, acetic acid and hydrogen peroxide which was applied to clean the production line. The activity of the disinfectant at volume concentrations [v/v] of 0.15, 0.30 and 0.60 percentages was evaluated with respect to the negative control (sterile distilled water). The antifungal activity of that preparation was tested by medium poisoning method. The result were shown as increase of growth [mm·day–1]. Disinfecting independently of the concentrations used, compared to the control, stimulated the growth of mycelium of the test strains. On the 4th day of the study reported a faster mycelial growth of T. viride 56 isolate by nearly 50% in comparison to control. Slower but 30% higher than control was growth of T. viride 21.

Słowa kluczowe

PL

przemysł spożywczy; Trichoderma viride; kwas nadoctowy; Divosan Forte

EN

food industry; Trichoderma viride; peracetic acid; Divosan Forte

• Wydawca: Towarzystwo Chemii i Inżynierii Ekologicznej
• Czasopismo: Proceedings of ECOpole
• Rocznik: 2016
• Tom: Vol. 10, No. 1
• Strony: 193--200
• Opis fizyczny: Bibliogr. 30 poz., wykr.

Twórcy

autor

Kręcidło M.

• Samodzielna Katedra Biotechnologii i Biologii Molekularnej, Uniwersytet Opolski, ul. kard. B. Kominka 6, 45-032 Opole

autor

Krzyśko-Łupicka T.

• Samodzielna Katedra Biotechnologii i Biologii Molekularnej, Uniwersytet Opolski, ul. kard. B. Kominka 6, 45-032 Opole

Bibliografia

• [1] Koszałkowska M, Krecidło Ł, Krzyśko-Łupicka T. Microbiological analysis of bioareosol in food industry. Proc ECOpole. 2014;8(1):43-47. DOI: 10.2429/proc.2014.8(1)005.
• [2] Larsena MH, Dalmassob M, Ingmera H, Langsrudc S, Malakauskasd M, Madere A, et al. Persistence of foodborne pathogens and their control in primary and secondary food production chains. Food Control. 2014;44:92-109. DOI: 10.1016/j.foodcont.2014.03.039.
• [3] Bonetta S, Mosso S, Sampò S, Carraro E. Assessment of microbiological indoor air quality in an Italian office building equipped with an HVAC system. Environ Monit Assess. 2010;161:473-483. DOI: 10.1007/s10661-009-0761-8.
• [4] Olesiak P, Stępniak L. Skuteczność wybranych związków dezynfekcyjnych wobec przetrwalników Bacillus. Inż Ochr Środ. 2012;15(1):41-45. https://is.pcz.pl/static/pdf/2012/zeszyt1/2012_1_4-OLESIAK.pdf.
• [5] Chapman JS, Characterizing bacterial resistance to preservatives and disinfectants. Int Biodet Biodeg. 1998;4:241-245. DOI: 10.1016/S0964-8305(98)00025-0.
• [6] Pakulska D, Czerniak S. Kwas nadoctowy. Dokumentacja dopuszczalnych wielkości narażenia zawodowego. Podst Met Oceny Środ Przyr. 2014;1(79):25-54.
• [7] Stratford M. Food and beverage spoilage yeasts. In: Querol A, Fleet G. editors. Yeast in Food and Beverages. Berlin Heidelberg: Springer. 2006;335-381.
• [8] Raats D, Offek M, Minz D, Halpern M. Molecular analysis of bacterial communities in raw cow milk and the impact of refrigeration on its structure and dynamics. Food Microbiol. 2011;28(3):465-471. DOI:10.1016/j.fm.2010.10.009.
• [9] Nussinovitch A, Rosen B. Influence of oxygen concentration and temperature on cloud-destroying molds in aseptically filled citrus juices. LWT-Food Sci Technol. 2014;55(2):674-679. DOI: 10.1016/j.lwt.2013.10.003.
• [10] Wagacha JM, Muthomi JW. Mycotoxin problem in Africa: Current status, implications to food safety and health and possible management strategies. Int J Food Microbiol. 2008;124:1-12. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2008.01.008.
• [11] Tchana AN, Moundipa PF, Tchouanguep FM. Aflatoxin contamination in food and body fluids in relation to malnutrition and cancer status in Cameroon. Int J Environ Res Public Health. 2010;7:178-188. DOI: 10.3390/ijerph7010178.
• [12] Perkowski J, Chełkowski J, Goliński P. Occurrence of mycotoxins in cereals, plants, foods and feeds in Poland. In: Logrieco A, Visconti A. editors. An Overview on Toxigenic Fungi and Mycotoxins in Europe. Dordrecht: Springer Science+Business Media. 2004;161-172. DOI: 10.1007/978-1-4020-2646-1_11.
• [13] Ibáñez-Vea M, González-Peñas E, Lizarraga E, López de Cerain A. Co-occurrence of aflatoxins, ochratoxin A and zearalenone in barley from a northern region of Spain. Food Chem. 2012;132:35-42. DOI:10.1016/j.foodchem.2011.10.023.
• [14] Jiang X, Geng A, He N, Li Q. New isolate of Trichoderma viride strain for enhanced cellulolytic enzyme complex production. J Biosci Bioeng. 2011;111:121-127. DOI: 10.1016/j.jbiosc.2010.09.004.
• [15] Crutcher FK, Parich A, Schuhmacher R, Mukherjee PK, Zeilinger S, Kenerley CM. A putative terpene cyclase, vir4, is responsible for the biosynthesis of volatile terpene compounds in the biocontrol fungus Trichoderma virens. Fungal Genet Biol. 2013;56:67-77. DOI: 10.1016/j.fgb.2013.05.003.
• [16] Saravanakumar K, Vivek R, Sithranga Boopath N, Yaqian L, Kathiresan K, Chen J. Anticancer potential of bioactive 16-methylheptadecanoic acid methyl ester derived from marine Trichoderma. J Appl Biomed. 2015;13:199-212. DOI: 10.1016/j.jab.2015.04.001.
• [17] Hageskal G, Lima N, Skaar I. The study of fungi in drinking water. Mycol Res. 2009;113:165-172. DOI: 10.1016/j.mycres.2008.10.002.
• [18] Hageskal G, Knutsen AK, Gaustad P, de Hoog GS, Skaar I. Diversity and significance of mold species in Norwegian drinking water. Appl Environ Microbiol. 2006;72:7586-7593. DOI: 10.1128/AEM.01628-06.
• [19] Vesper SJ, McKinstry C, Yang C, Haugland RA, Kercsmar CM, Yike I, et al. Specific molds associated with asthma in water-damaged homes. J Occup Environ Med. 2006;48:852-858. PMID: 16902378.
• [20] http://www.pesan.pl/karty/CHEMIA%20MYJACA/Divosan_Forte_leaflet_pol.pdf (dostęp w dniu 20.05.2016).
• [21] Kumar R, Dubey NK, Tiwari OP, Tripathi YB, Sinha KK. Evaluation of some essential oils as botanical fungitoxicants for the protection of stored food commodities from fungal infestation. J Sci Food Agric. 2007;87:1737-1742. DOI: 10.1002/jsfa.2906.
• [22] Kręcidło Ł, Krzyśko-Łupicka T. Sensitivity of molds isolated from warehouses of food production facility on selected essential oils. Inż Ekol. 2015;43:100-108. DOI: 10.12912/23920629/58910.
• [23] Książczyk M, Krzyżewska E, Futoma-Kołoch B, Bugla-Płońska G. Oddziaływanie związków dezynfekcyjnych na komórki bakteryjne w kontekście bezpieczeństwa higieny i zdrowia publicznego. Postępy Hig Med Dośw. 2015;69:1042-1055. www.phmd.pl/fulltxt.php?ICID=1170051.
• [24] Królasik J, Żakowska Z, Krępska M, Klimek L. Resistance of bacterial biofilms formed on stainless steel surface to disinfecting agent. Pol J Microbiol. 2010;59(4):281-287. http://www.pjm.microbiology.pl/archive/vol5942010281.pdf.
• [25] Jourdier E, Poughon L, Larroche Ch, Chaabane FB. Comprehensive study and modeling of acetic acid effect on Trichoderma reesei growth. Ind Biotechnol. 2013;9(3):132-138. DOI: 10.1089/ind.2013.0002.
• [26] Szengyel Z, Zacchi G. Effect of acetic acid and furfural on cellulase production of Trichoderma reesei RUT C30. Appl Biochem Biotechnol. 2000;89(1):31-42. DOI: 10.1016/j.biortech.2004.08.007802.
• [27] Chambergo FS, Valencia EY, Ferreira-Júnior JR, Camilo CM, Campana PT. Conformational stability of recombinant manganese superoxide dismutase from the filamentous fungus Trichoderma reesei. Int J Biol Macromol. 2012;50:19-24. DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2011.09.015.
• [28] Wang G, Wang H, Xiong X, Chen S, Zhang D, Mitochondria thioredoxin's backup role in oxidative stress resistance in Trichoderma reesei. Microbiol Res. 2015;171: 32-38. DOI: 10.1016/j.micres.2015.01.005.
• [29] Ezzi MI, Lynch J. M. Biodegradation of cyanide by Trichoderma spp. and Fusarium spp. Enzyme Microb Technol. 2005;36:849-854. DOI: 10.1016/j.enzmictec.2004.03.030.
• [30] Onilude AA, Adebayo-Tayo BC, Odeniyi AO, Banjo D, Garuba EO. Comparative mycelial and spore yield by Trichoderma viride in batch and fed-batch cultures. Ann Microbiol. 2013;63:547-553. DOI: 10.1007/s13213-012-0502-z.

Uwagi

PL

Opracowanie ze środków MNiSW w ramach umowy 812/P-DUN/2016 na działalność upowszechniającą naukę.